植物光合作用受光质变化的影响明显
[1],波长为400~700 nm的光对于植物光合作用效果显著
[2]。然而远红光(700~800 nm)由于其波长长故而穿透力极强,易引起植物“避荫反应”(SAS)
[3],这一现象多见于植被密度过高,低矮处植株光照不足时
[4]。植物体内的光敏色素主要以红光吸收型(Pr)和远红光吸收型(Pfr)这2种不同的形式存在,光敏色素通过这2种构型之间的转换影响植物的形态建成和生理反应
[5]。2种形式之间的转化与不同红光与远红光比值密切相关。在高R∶FR下,光平衡向活性Pfr形式移动,SAS响应受到抑制;在低R∶FR下,光平衡向非活性Pr形式重新平衡,并诱导SAS响应
[6]。在拟南芥(
PHYA-
PHYE)中编码光敏色素的5个基因中,
PHYA和
PHYB在SAS响应中起着关键作用
[7]。
已有众多研究表明,添加远红光对植物形态特征、光合色素含量及相关营养指标有显著影响。艾楷棋等
[8]报道,在低R∶FR环境下,西红柿的干鲜生物量分别显著增加了28.46%和33.26%。大豆和生菜的生物量在高远红光条件下显著增加
[9-10]。Li等
[1]研究发现,远红光通过提高植物体内赤霉素的含量,从而增加节间长度和植株高度。Paponov等
[11]指出补充远红光到红蓝光的照明中可加快冬季温室甜椒的生长并增加产量。但鲜少有研究完整探究不同远红光下对植物光合能力相关参数、叶绿素荧光和叶片结构的整体影响。
黄瓜(
Cucumis sativus L
.)作为我国栽培的主要瓜菜之一
[12],在设施园艺中广为栽培,更快更好地培育出健壮的黄瓜幼苗对于黄瓜栽培起着关键作用。多项研究表明,远红光对于植物形态调控起着关键作用,在植物伸长生长方面影响显著,但过高的远红光强度同样使得植物陷入“避荫”胁迫中,导致其光合能力下降,影响正常生长发育。本试验以黄瓜幼苗为试验材料,通过对黄瓜幼苗形态指标、光合速率及光合产物的测定,遴选出添加远红光的适宜强度,以期为设施内工厂化LED补光育苗提供参考。
1 材料与方法
试验于2022年在西北农林科技大学园艺学院设施农业生物与环境工程实验室进行。
1.1 试验材料
供试材料为黄瓜‘新津优1号’,种子购置于山东泰安华益种业有限责任公司。将黄瓜种子催芽后播于10 cm×10 cm营养钵中,在人工气候箱内生长。光强150 μmol/(m2·s),昼夜温度25 ℃/20 ℃,光周期12 h/12 h,相对湿度60%,适量浇灌水分。在生长至子叶完全展开后,移植到装有LED光源的栽培架中,浇灌1/4 Hoagland黄瓜营养液(pH为6.5±0.1,EC值为2.2~2.5 ms/cm),其中昼夜温度28 ℃/25 ℃,相对湿度40%~50%,长至25 d约4叶1心时测定相关指标。
1.2 试验设计
光源采用西安因变光电科技有限公司生产的LED灯板和LED控制系统V1.0,可调节LED光质配比及光照强度。设置试验光合有效辐射(400~700 nm)范围内的光照强度为200 μmol/(m
2·s),光周期12 h/12 h,控制各处理光质中红光∶蓝光=4∶1,各处理中远红光光强分别设置为16、133和192 μmol/(m
2·s)(
表1),使处理间R∶FR比例分别为10、1.2和0.8,各处理光谱图如
图1所示。
1.3 项目测定
1.3.1 形态指标
在黄瓜幼苗生长至4叶1心时随机选取6株,使用刻度尺测定地上部高度;使用游标卡尺测定茎粗;使用叶面积仪(AM350便携式叶面积仪,英国)测定各叶片面积,用电子天平测定地上部鲜重,短暂杀青后60 ℃烘至恒重测其干重。
1.3.2 气孔特征
每个处理随机选取3株黄瓜幼苗,取第3片叶的相同叶位制作临时装片。将所取叶片放置于透明胶带上,轻压使之结合紧密后用刀片轻刮去叶肉组织;将装片粘贴至载玻片,切片于显微镜下(奥林巴斯BX63,日本)观察。于20×观察测定气孔密度,于40×下观察测定气孔大小,每个装片选取10个视野,每个视野选取20个气孔,通过ImageJ软件测量气孔长、气孔宽、孔隙长及孔隙宽。孔隙面积=π×孔隙长/2×孔隙宽/2。
1.3.3 叶片结构测定
选取各处理中的3株黄瓜幼苗的第3片真叶,在避开主叶脉的相同叶位取10 mm×10 mm的叶片,放入FAA固定液中,再经乙醇脱水、二甲苯透明、番红-固绿染色和石蜡包埋切片等步骤,最终制成石蜡切片,置于显微镜下(奥林巴斯BX63,日本)观察。每个装片选取10个视野,通过ImageJ软件测量叶片、上下表皮、栅栏组织和海绵组织厚度。
1.3.4 光合色素及光合特性的测定
选取各处理中的3株黄瓜幼苗的第3片真叶,参照高俊凤
[13]的方法测定叶绿素a、叶绿素b及类胡萝卜素的含量。
选取各处理中的3株黄瓜幼苗的第1片真叶,使用植物光合测定仪6800(LI-6800,美国)测定其蒸腾速率(E)、净光合速率(Pn)、胞间CO2浓度(Ci)及气孔导度(Gsw)。设置叶室温度为24 ℃,CO2水平为400 µmol/mol,相对湿度为60%,设定测定光源为R90B10,光强为1 000 μmol/(m2·s)。
1.3.5 Rubisco酶活性的测定
使用植物1,5-二磷酸核酮糖羧化酶ELISA检测试剂盒(江苏酶免实业有限公司)测定各处理植株中的Rubisco酶活。
1.3.6 叶绿素荧光的测定
使用双通道调制叶绿素荧光仪(DUAL-PAM-100,德国)测定叶绿素荧光相关参数。每个处理随机取3株黄瓜幼苗,选取第3片真叶进行测定。测量前植株叶片需暗适应30 min,然后打开测量光,记录暗适应后的最小荧光Fo;紧接着打开1个持续时间0.3 s的饱和脉冲光,测量并记录暗适应后的最大荧光Fm;饱和脉冲光关闭后荧光迅速回到Fo附近;然后打开光化光,记录叶绿素荧光从黑暗转到光照的响应过程,待荧光曲线达到稳态后关闭光化光,结束整个测量过程,记录并保存荧光数据。
1.3.7 总碳和总氮含量的测定
将烘干后的地上部植株整株打碎研磨,过0.15 mm筛后,称取0.2 g置于全自动碳氮分析仪(荷兰)测定总碳和总氮含量。
1.3.8 碳水化合物的测定
每个处理随机选取3株黄瓜幼苗,取第1片至第4片共4片真叶,充分研磨后测定相关指标。可溶性蛋白含量测定采用考马斯亮蓝G-250染色法
[13],淀粉含量的测定采用淀粉含量检测试剂盒(北京索莱宝生物科技有限公司)。
每个处理随机选取3株黄瓜幼苗,取第1片至第4片共4片真叶,将样本短暂杀青后60 ℃烘干至恒重,研磨后过0.15 mm筛测定可溶性糖及蔗糖含量。可溶性糖质量分数的测定采用蒽酮比色法
[11],蔗糖含量采用张志良等
[14]的方法测定。
1.3.9 实时定量RT-PCR检测
取顶端幼嫩组织2 g,放入2 mL离心管并迅速液氮冷冻,后使用高通量研磨仪高频震荡。选取气孔发育相关基因
EPF1[15]和
MUTE[16],通过Primer Premier 5.0设计引物,引物序列见
表2。用RBA提取试剂盒(Aidab,中国)按照试剂标准步骤提取叶片总RNA。使用反转录试剂盒(Cofitt,中国),按照试剂标准步骤将提取的RNA反转录成cDNA。按照2×qPCR SmArt Mix(SYBR Green)试剂盒(上海笛医生物科技有限公司)进行Real-time PCR反应,反应体系为20 μL,基因相对表达量使用2
-ΔΔCt分析。
1.4 统计分析
用Microsoft Office Excel 2020整理数据并绘制图表,用IBM SPSS Statistics 25分析显著性差异。
2 结果与分析
2.1 远红光强度对黄瓜幼苗生理形态的影响
对不同强度处理下黄瓜幼苗的株高、鲜重、干重及总叶面积进行测定可知(
表3),3个处理组间的株高差异显著。随着远红光强度的增加,各处理组的株高也显著增加,其中H-FR和M-FR处理株高较L-FR分别增加246.43%和200.63%。较高的远红光强度不利于茎的横向生长,L-FR处理较H-FR茎粗增加19.62%。较高远红光比例促进黄瓜幼苗鲜重的增长,其中M-FR和H-FR处理的鲜重较L-FR有显著增加,分别增加60.04%和56.60%。随着远红光强度的增加,总叶面积也随之减少,L-FR处理较M-FR和H-FR总叶面积分别增加7.48%和8.60%。
2.2 远红光强度对黄瓜幼苗气孔特征的影响
对各处理下气孔结构进行观察(
图3)并测定数据(
表4)。随着远红光强度的增加,各处理间气孔宽度呈现上升趋势,但L-FR与M-FR处理间无显著性差异,H-FR处理气孔宽度较L-FR和M-FR分别增加9.26%和7.91%。高远红光强度增大了孔隙宽度,H-FR处理孔隙宽度较L-FR和M-FR分别增加7.63%和12.39%。随着远红光强度的增加,气孔长度随之增加,H-FR处理气孔长度较L-FR和M-FR分别增加5.31%和2.61%。3个处理组的气孔密度也随之显著性增加,H-FR处理气孔密度较L-FR和M-FR分别增加45.56%和11.30%,且M-FR和L-FR处理差异显著。H-FR处理气孔孔隙面积较L-FR和M-FR分别显著增加11.30%和19.11%。
2.3 远红光强度对黄瓜幼苗叶片结构的影响
对不同处理的叶片石蜡切片(
图4)进行观察所得数据见
表5,远红光强度对黄瓜幼苗叶片上表皮、栅栏组织、海绵组织和叶片厚度均产生显著性影响。随着远红光强度的增加,上表皮、栅栏组织、海绵组织及叶片厚度均呈现下降趋势。L-FR处理上表皮厚度较M-FR和H-FR分别增加8.45%和21.68%,栅栏组织厚度较M-FR和H-FR分别增加8.92%和23.79%,海绵组织厚度较M-FR和H-FR显著增加17.27%和37.24%,叶片厚度较M-FR和H-FR显著增加15.50%和33.27%。各处理间下表皮厚度无显著性差异。
2.4 远红光强度对黄瓜幼苗光合色素及光合特性的影响
对不同处理的黄瓜幼苗叶片叶绿素的含量进行测定(
表6)。随着远红光强度的增加,其叶绿素a、叶绿素b及类胡萝卜素含量均出现下降趋势。其中L-FR和M-FR两处理间叶绿素a和叶绿素b含量均无显著差异。L-FR处理较H-FR叶绿素a和叶绿素b含量分别增加42.76%和30.53%。M-FR与H-FR处理类胡萝卜素无显著性差异,L-FR处理较M-FR和H-FR显著增加15.50%和33.27%。
对各处理下黄瓜幼苗光合相关性状进行测定,得到结果如
图5所示。不同强度远红光对黄瓜幼苗光合特性相关指标影响差异显著。随着远红光强度的增加,其蒸腾速率、胞间CO
2浓度及气孔导度随之增加,H-FR处理较L-FR和M-FR蒸腾速率显著增加151.08%和113.31%,胞间CO
2浓度分别显著增加33.14%和31.02%,气孔导度分别显著增加48.60%和38.81%;但净光合速率随之降低,L-FR较H-FR处理净光合速率显著增加43.75%。
2.5 远红光强度对黄瓜幼苗Rubisco酶活性的影响
对各处理下黄瓜幼苗Rubisco酶活性进行测定(
图6)。M-FR处理较L-FR和H-FR的Rubisco酶活显著增加86.00%和81.59%,但L-FR和H-FR两处理间无显著性差异。
2.6 远红光强度对黄瓜幼苗叶绿素荧光参数的影响
对各处理下黄瓜幼苗叶绿素荧光参数进行测定,得到数据如
表7所示。随着远红光强度的增加,PSII最大光量子效率(Fv/Fm)值呈现下降趋势,但各处理间无显著性差异。ΦPSⅡ和ETR随着远红光强度的增加呈现上升趋势,H-FR处理较L-FR的PSⅡ和ETR分别增加201.43%和154.13%。ΦNO与ΦNPQ变化趋势一致,均为M-FR>L-FR>H-FR,其中ΦNO值M-FR处理较H-FR显著增加84.36%。
2.7 远红光强度对黄瓜幼苗总碳、总氮的影响
对各处理下黄瓜幼苗总碳、总氮含量进行测定,得到数据如
表8所示。H-FR处理较L-FR和M-FR的总碳含量显著增加。但随着远红光强度的增加,各处理黄瓜幼苗的总氮含量显著下降,碳氮比变化趋势与总氮含量变化趋势相同,L-FR处理较M-FR和H-FR总氮含量分别增加3.97%和4.74%,碳氮比分别增加2.50%和19.92%。
2.8 远红光强度对黄瓜幼苗碳水化合物的影响
对各处理下黄瓜幼苗碳水化合物含量进行测定,得到数据如
表9所示。各处理下黄瓜幼苗的可溶性糖、可溶性蛋白及蔗糖含量变化均为L-FR>H-FR>M-FR。可溶性蛋白含量各处理间无显著性差异;可溶性糖和蔗糖含量L-FR与H-FR处理无显著差异,L-FR较M-FR可溶性糖和蔗糖含量分别增加23.04%和20.62%。随着远红光比例的增加,淀粉含量呈下降趋势,L-FR处理较M-FR和H-FR分别显著增加了65.39%和115.06%。
2.9 远红光强度对黄瓜幼苗气孔发育基因相对表达量的影响
对各处理下黄瓜幼苗气孔发育基因相对表达量进行测定(
图7)。随着远红光强度的增加,基因
MUTE相对表达量呈现上升趋势,H-FR处理较L-FR和M-FR分别上升118.31%和111.28%。基因
EPF1呈现下降趋势,M-FR和H-FR处理较L-FR分别下降32.76%和28.78%。
3 讨论
3.1 远红光强度对黄瓜幼苗生理形态的影响
植物具有感受红光与远红光的光感受器,这些光感受器被称为光敏色素,由发色团和载脂蛋白组成
[17]。植物冠层红光/远红光比值的降低会改变发色团结构
[18],一些光敏色素从具有生物活性的远红光吸收状态(Pfr)变为无生物活性红光吸收形式(Pr)
[19-20],并且通过相关基因的表达来调节植物的内源激素水平,以调节植物形态发生并捕获更多的光能
[21-23]。随着远红光强度的增加,各处理间的株高随之显著性增加,这与前人研究结果一致
[21]。
3.2 远红光强度对黄瓜幼苗细胞形态的影响
远红光对于植物细胞形态影响差异较大。本试验得出,随着远红光强度增加,3个处理组气孔密度也随之显著性增加,H-FR处理气孔密度较L-FR和M-FR分别增加45.56%和11.30%。前人研究表明,高远红光比例增加了菊花
[24]和千屈菜科植物
[25]的气孔密度,但却降低了拟南芥
[26]和小麦
[27]的气孔密度。Shibuya等
[28]研究表明,随着远红光比例的升高,黄瓜气孔密度随之降低,本试验结果与此不一致。有研究结果表明,低红光/远红光比值通过改变光敏色素
phyB的生物活性形式和气孔发育基因表达来改变气孔密度
[29]。故而猜测远红光通过改变黄瓜叶片气孔发育基因表达,从而影响气孔发育。
本试验选取气孔发育关键基因
EPF1和
MUTE进行验证。
EPF1编码在气孔细胞和前体中表达的小分泌肽,并通过控制不对称细胞分裂调节气孔发育;过表达
EPF1拟南芥植株气孔数量显著下降
[15],因此
EPF1表达水平与气孔密度呈负相关。通过实时定量RT-PCR检测得出,随着远红光强度的增加,
EPF1呈现下降趋势,M-FR和H-FR处理较L-FR分别下降32.76%和28.78%。
MUTE将细胞周期模式从增殖不对称分裂切换到终端对称分裂,并编排单个对称分裂事件的执行
[30],在气孔分化发育过程中起着重要作用
[16],其表达量与气孔密度呈正相关。随着远红光强度的增加,
MUTE相对表达量呈现显著上升趋势,H-FR处理较L-FR和M-FR分别上升118.31%和111.28%。由此可得,随着远红光强度的增加,黄瓜叶片气孔密度呈现上升趋势。
叶片是高等植物光合作用的主要器官。在叶片内部,叶肉组织调节光传输以进行光合作用。通过调节叶片结构中栅栏和海绵状组织厚度,以减少叶片背腹面的光接收差异
[31]。植物叶片可以通过改变叶肉组织结构,调节光能的捕获及交换气体以应对光胁迫
[32]。已有研究表明,添加远红光会使得叶片厚度下降
[33-34],主要是由于低红光/远红光比值处理下植物通过降低栅栏组织的细胞大小和细胞数量来减少厚度,从而使得叶片厚度下降
[35-36]。本试验结果与前人研究结果一致,随着远红光强度的增加,上表皮、栅栏组组、海绵组织及叶片厚度均呈现下降趋势。
3.3 远红光强度对黄瓜幼苗叶绿素含量、光合相关参数及叶绿素荧光参数的影响
叶绿素在光能的吸收、传输和转化中起重要作用,叶绿素的含量和组成直接影响叶片的光合能力
[31]。随着远红光强度的增加,叶绿素a、叶绿素b及类胡萝卜素含量均出现下降趋势,这与Kasperbauer等
[37]对烟草、Kim等
[38]对番茄的研究结果一致。
随着远红光强度的增加,蒸腾速率、胞间CO
2浓度及气孔导度随之增加,推测是由于气孔密度的增加,故而随之增加。由于远红光强度的增加,引起植物“避荫反应”
[3],故净光合速率随远红光强度的增加而降低。
Fv/Fm表示PSII利用吸收的光能来减少PSII的主要醌受体(Q
A)的效率
[39],该指标可评价植物受到非生物胁迫的水平。当Fv/Fm低于0.83时,表示植物受到胁迫而使得光合能力下降
[40]。本研究表明随着远红光强度的增加,Fv/Fm值呈现下降趋势,且H-FR和M-FR两处理组该值小于0.83,表示处理下的植株受到“避荫”胁迫影响。ΦPSII表示PSII实际光合能力,ETR表示光合电子传递速率。本研究表明随着远红光强度的增加,ΦPSⅡ呈现显著上升趋势,因为远红光增加了光系统I(PSI)活性,导致质体醌的再氧化更快,并促进PSII反应中心的重新开放
[41],故而光合电子传递速率上升。
3.4 远红光强度对黄瓜幼苗碳同化能力及碳水化合物的影响
已有研究表明,Rubisco酶活性受到植物所处光环境的影响
[42-43],前人研究表明,连续的远红光照射增加了野生型烟草中的Rubisco酶活性
[44]。也有学者研究得出,Rubisco酶活化水平与光质影响不大,主要受到其所处的光环境强度影响,弱光条件下各光质处理均低于高光强处理
[45]。故而在适宜光强下增加一定的远红光可提高Rubisco酶活化水平。
随着远红光强度的增加,各处理黄瓜幼苗的总氮含量和碳氮比均呈现显著性下降趋势;相比L-FR处理,H-FR和M-FR处理可溶性糖、可溶性蛋白、淀粉及蔗糖含量均呈现下降趋势。远红光对植物光合作用产物的影响可能与物种有关,前人研究表明,与正常光相比,增加远红光强度会增加大豆
[9]和菊花
[46]中的蔗糖和淀粉含量,在草莓中显示出增加蔗糖含量和降低淀粉含量
[46]。然而远红光对光合产物产生和降解的影响机制尚不清楚,也鲜有报道。
4 结论
在3个处理组中,随着远红光强度的增加,其株高显著上升;气孔密度显著上升,且气孔发育基因EPF1与MUTE表达量变化显著;上表皮、栅栏组组、海绵组织及叶片厚度均呈现下降趋势;光合色素呈现下降趋势;但在一定程度内添加远红光将提高Rubisco酶活化水平。随着远红光强度的增加,各处理黄瓜幼苗的总氮含量和碳氮比均呈现显著性下降趋势;H-FR处理下黄瓜碳水化合物含量低于L-FR处理。综上,添加适当远红光有利于黄瓜幼苗伸长生长,提高电子传递速率,以M-FR处理更适宜工厂化育苗。
陕西省技术创新引导专项(2021QFY08-02)
2021年陕西省千亿级设施农业专项(K3030821094)
西藏高原设施蔬菜关键技术创新与集成项目(XZ202202YD0002C)
设施蔬菜瓜果名优品种引进与标准化示范基地建设项目(QYXTZX-AL2023-07)