近年来,中国家禽业发展迅速,据国家统计局数据显示,2022年中国禽肉产量2 443万t,增长2.6%, 禽蛋产量3 456万t,已连续多年保持家禽饲养量、禽蛋产量世界第一和禽肉产量世界第二的水平
[1]。然而,近年来随着人们生活水平的提高,消费者对禽肉的质量和风味要求也越来越高。肌肉是畜禽提供的主要产品,而肌内脂肪是影响肉品质的重要因素,其含量与动物肉产品的风味、嫩度和多汁性密切相关
[2]。肌肉发育和脂肪积累是家禽的2个重要经济特征,探索/挖掘影响这两类性状的候选基因/miRNA具有重要的理论和实践意义。
MicroRNAs(miRNAs)是真核生物中的一类内源性的具有调控功能的非编码RNA,其大小长约20~25个核苷酸,它在脂肪沉积和肌肉发育等众多生理过程中均发挥着重要作用。在猪上,circSETBP1通过调节miR-3-3p/CRTCs轴来控制猪肌内(IM)前脂肪细胞的增殖和分化
[3];Myomaker在猪成肌细胞融合和骨骼肌再生过程中发挥作用,而miR-205通过靶向调控Myomaker的表达来抑制成肌细胞融合
[4]。在牛上,miR-195通过靶向甲状腺激素反应蛋白(THRSP)的3'非翻译末端区域降低其表达,表明miR-195可能通过调节
THRSP抑制脂肪细胞中的脂质积累
[5];miR-183/96/182簇通过抑制
FoxO1的表达,在牛成肌细胞的增殖和分化中起到正调节作用
[6]。在绵羊上,oar-miR-432通过
DDI1的过表达抑制绵羊前脂肪细胞的分化
[7];miR-192通过下调
RB1影响绵羊卫星细胞(SC)的增殖和肌源性分化
[8]。在鸡上,gga-miR-140-5p通过靶向视黄醇X受体γ促进了肌肉内脂肪细胞的分化
[9];miR-21-5p通过靶向
KLF3促进骨骼肌卫星细胞(SMSC)的增殖和分化
[10];miR-15a可以通过靶向
ACAA1、ACOX1和
SCP2来减少脂肪酸氧化,从而间接促进鸡肌内前脂肪细胞的分化
[11]。miR-214和TRMT61A通过在CPM诱导的不同分化时间点的表达模式,表明miR-214抑制了鸡原代成肌细胞(CPMs)的增殖,促进了鸡原代成肌细胞(CPMs)的分化
[12]。miR-17家族,亦可称为miR-106b家族,是由6个序列相似,结构相仿,物种间高度保守的成熟体miRNA组成,其成员包括miR-17-5p、miR-20a、miR-106b、miR-93、miR-106a和miR-20b。研究表明,miR-148a与miR-17-5p协同作用,通过抑制山羊乳腺上皮细胞(GMEC)中的PPARGC1A和
PPARA来调节脂肪酸代谢
[13]。miR-20a-5p、miR-20b-5p和E2F1通过E2F1和miR-20a-5p/20b-5p之间的自动调节参与成肌细胞的增殖和分化
[14]。miR-106b是卫星细胞静止的重要调节剂,miR-106b可能是开发促进肌肉再生的治疗策略的新靶点,从而提高受损营养不良肌肉的再生能力
[15]。miR-93是脂肪生成的负调节因子,也是肥胖和代谢综合征的潜在治疗选择
[16]。miR-106a通过靶向
p21和
BAMBI促进猪前脂肪细胞增殖和分化
[17]。
miR-17-5p在家禽肌肉发育和脂肪沉积研究中未见报道,因此,本研究拟通过研究gga-miR-17-5p在性连锁矮小品系S3系和隐性白羽鸡脂肪、肝脏、肌肉组织、脂肪细胞和成肌细胞中的表达变化,初步阐明gga-miR-17-5p在鸡脂肪沉积和肌肉发育中的调控作用,进一步通过生物信息学分析筛选出gga-miR-17-5p作用的关键靶基因,为深入研究gga-miR-17-5p在脂肪沉积和骨骼肌发育过程中的作用及机制提供理论和数据支撑。
1 材料与方法
1.1 试验动物
以江苏省家禽科学研究所培育的S3系(性连锁矮小品系,具有黄羽、矮小、肉质佳等特点)和隐性白羽肉鸡(RR)为研究对象,分别在0、2、8、14和16周龄时解剖取其腿肌、腹脂和肝脏组织,每个周龄取6只鸡的组织样,然后将其放入液氮中迅速冷冻,并保存在-80 ℃,以便后续提取总RNA。
1.2 细胞的提取和培养
1.2.1 肌内脂肪细胞和腹脂脂肪细胞的提取和培养
选取7~14日龄的雏鸡用于提取腹脂脂肪和肌内脂肪细胞。胸大肌中肌内脂肪细胞、腹脂脂肪细胞提取和培养参照文献[
18]进行。
1.2.2 成肌细胞的提取和培养
将孵化13 d的胚蛋,用酒精喷洒后用镊子敲碎气室,取出鸡胚后剪下胸肌组织。然后使用D-HANKS清洗胸肌组织2~3次,将清洗好的组织剔除筋膜和软骨,充分剪碎后转移到15 mL离心管中。加入D-HANKS至10 mL体积后静置3~5 min,去除上清液并留下沉淀,然后加入2~3倍的Ⅰ型胶原酶,在37 ℃ CO2培养箱中消化15 min。每隔3 min取出离心管充分摇晃,消化结束后加入完全培养基终止消化。然后将内容物按顺序导入100目、400目和600目过滤筛中进行过滤,收集滤液到15 mL离心管中。以1 000 g的速度离心10 min,去除上清液留下沉淀,加入15 mL完全培养基后混匀,倒入10 cm培养皿中。将培养皿放入37 ℃含5%CO2培养箱中进行培养。采用差速贴壁法对细胞进行纯化,将培养40 min后的细胞取出上清液至新的培养皿中,继续培养。重复上述步骤2~3次。24 h后进行换液,用PBS清洗2次,换入新的完全培养基,得到原代的成肌细胞。待细胞融合至70%后,进行传代铺板。
1.2.3 诱导分化
肌内脂肪细胞和腹脂脂肪细胞融合至70%左右,用0.1%油酸诱导其分化,诱导分化当天定义为分化0 d,未加油酸组定义为增殖期细胞;成肌细胞融合至70%左右,用2%的马血清诱导其分化,全培养基组定义为增殖期细胞,诱导分化当天定义为分化0 d。
1.3 总RNA提取和miRNA反转录
总RNA提取参照RNAsimple Total RNA Kit说明书进行。RNA浓度和纯度采用紫外分光光度计检测,OD260/OD280在1.8~2.1,RNA样本保存在-80 ℃。cDNA反转录根据Fast Kingg DNA Dispelling RT Super Mix试剂盒说明书进行,反应程序为42 ℃ (15 min),95 ℃(3 min),-20 ℃保存备用。
1.4 荧光实时定量PCR
根据miRcute Plus miRNA qPCR(SYBR Green)试剂盒的说明,进行实时荧光定量PCR(Real-timefluorescentquantitativePCR,RT-qPCR)。试验采用20 μL体系,其中包括2×Super Real PreMix Plus 10 μL、正向引物0.6 μL、反向引物0.6 μL、ddH2O 7.3 μL和cDNA 1.5 μL。反应程序为:95 ℃预变性15 min,然后40个循环(95 ℃:10 s;60 ℃:25 s)。
1.5 靶基因的预测及功能富集分析
利用Targetscan数据库(
https://www.targetscan.org/vert_80/)和miRDB数据库(
https://mirdb.org/)分别预测miR-17-5p的靶基因,并对这2个在线软件的结果进行了交叉验证以排除假阳性。随后,利用DAVID(
https://david.ncifcrf.gov/tools.jsp)对靶基因进行了GO功能分析;利用KOBAS3.0在线数据平台(
http://kobas.cbi.pku.edu.cn/)对靶基因进行了KEGG通路分析,然后应用微生信(
https://www.bioinformatics.com.cn/)对结果进行了可视化处理。
1.6 蛋白相互作用分析
本研究利用STRING数据库(
https://cn.string-db.org/)进行靶基因编码蛋白之间的相互作用分析,设定了最低作用分数为0.4。随后,利用cytoscape软件生成了蛋白相互作用的PPI图。为了筛选出稳定的蛋白互作网络图中的关键基因,使用了cytoscape插件中的degree算法。
1.7 统计分析
基因表达量数据均使用Excel整理完成,所有数据以平均值±标准误表示,并应用SPSS软件进行单因素方差分析和多重比较(Duncan法),定义P>0.05表示差异不显著,P<0.05表示差异显著。
2 结果与分析
2.1 gga-miR-17-5p在腹脂组织中的表达情况
通过对腹脂组织的表达量进行分析,研究发现gga-miR-17-5p的表达具有明显的品种特异性。在0周腹脂组织中,gga-miR-17-5p在RR品种的表达水平显著高于DW(
P<0.05)。与其他周龄组相比,2个品种中0周时的gga-miR-17-5p表达水平显著较高(
P<0.05)。在DW品种中,随着发育周龄的增长,gga-miR-17-5p的表达量逐渐减少;而在RR品种中,gga-miR-17-5p的表达量在0~8周期间下降,在14周时上升,然后在14~16周期间再次下降(
图1)。
2.2 gga-miR-17-5p在肝脏组织的中表达
通过对肝脏组织的表达量进行分析,研究发现gga-miR-17-5p的表达受到品种的影响。在16周肝脏组织中,相对于RR品种,gga-miR-17-5p的表达水平显著较高(
P<0.05)。与其他周龄组相比,2个品种中16周时的gga-miR-17-5p表达水平均高于其它周龄(
P<0.05)。在2个品种中,gga-miR-17-5p的表达量在0~2周期间呈上升趋势,随后在8周时下降,然后在8和16周再次上升(
图2)。
2.3 gga-miR-17-5p在腿肌组织中的表达
研究发现腿肌组织中gga-miR-17-5p的表达受到品种的影响。在0周腿肌组织中,与RR品种相比,gga-miR-17-5p的表达水平显著较高(
P<0.05)。在2个品种中,与其他周龄组相比,0周时的gga-miR-17-5p表达水平显著较高(
P<0.05)。在DW品种中,随着年龄的增长,gga-miR-17-5p的表达量逐渐减少;而在RR品种中,0~8周期间gga-miR-17-5p的表达量下降,在14周时上升,然后在14~16周期间再次下降(
图3)。
2.4 gga-miR-17-5p在细胞中的表达
2.4.1 gga-miR-17-5p在肌内脂肪细胞中的表达
利用RT-qPCR技术检测gga-miR-17-5p在肌内脂肪细胞增殖期和分化期的表达,根据
图4的结果显示,肌内细胞中,在诱导分化1 d后,gga-miR-17-5p的表达量有短暂地下降,在分化4 d后上升,并在分化6 d达到最高水平,且分化6 d的表达量显著高于增殖期和分化1 d(
P<0.05)。
2.4.2 gga-miR-17-5p在腹脂脂肪细胞中的表达
在腹脂脂肪细胞中,gga-miR-17-5p在诱导分化1 d后表达显著下降(
P<0.05),在分化4 d显著上升(
P<0.05),而在分化6 d又下降(
图5)。
2.4.3 gga-miR-17-5p在成肌细胞中的表达
在成肌细胞中,gga-miR-17-5p的表达量在增殖期最低,并随着分化时间的延长逐渐升高,在分化第7天达最高,且分化5 d的表达量显著高于增殖期、分化1和3 d(
P<0.05),显著低于分化7 d (
P<0.05);分化7 d的表达量显著高于其他增殖期及分化1、3和5 d的表达量(
P<0.05)(
图6)。
2.5 gga-miR-17-5p的保守性分析
通过比较鸡、人和其他物种的gga-miR-17-5p序列发现,gga-miR-17-5p在进化过程中相对保守,成熟体的序列基本相同(
表1)。
2.6 gga-miR-17-5p靶基因预测及功能分析
Targetscan数据库预测了598个gga-miR-17-5的靶基因,miRDB数据库预测了1 077个的gga-miR-17-5p靶基因。为减少假阳性,取两者的交集,共得到379 个交集靶基因(
图7)。
利用David数据库对gga-miR-17-5p靶基因进行了GO富集分析。在生物过程(BPs)方面,靶基因主要参与调控生物合成和代谢等相关条目,如细胞大小的正向调节和泛素依赖蛋白分解代谢等过程。在细胞组分(CCs)方面,靶基因在核、细胞内解剖结构和细胞内细胞器等方面显著富集。在分子功能(MFs)方面,靶基因最丰富的富集术语是结合,包括蛋白质结合和序列特异性DNA结合等(
图8)。
对靶基因进行KEGG通路富集(
表2),极显著富集包括20条通路。其中与肌肉发育、脂肪沉积和细胞周期等密切相关的通路被富集到,如细胞衰老、胰岛素信号通路、肌动蛋白细胞骨架调节、ErbB信号通路、mTOR信号通路、磷脂酰肌醇信号系统和FoxO等信号通路。
2.7 gga-miR-17-5p靶基因的蛋白相互作用
为进一步筛选到gga-miR-17-5p关键靶基因,将富集到KEGG的靶基因,提交到STRING数据库,分析靶基因编码蛋白质的相互作用,构建蛋白互作图。从
图9可以看出,
PTEN、MAPK3和
PIK3R1等基因在整个蛋白互作中起关键的作用,
PTEN不但在靶基因的蛋白互作中起核心的作用,且在KEGG富集的6条通路中都富集到了该基因。结合相关文献报道,
PTEN和
PIK3R1可能是gga-miR-17-5p发挥作用的关键靶基因。
2.8 PIK3R1和PTEN在成肌细胞中的表达分析
利用RT-qPCR技术对
PIK3R1和
PTEN基因在成肌细胞上的表达进行分析,
PIK3R1在成肌细胞的表达量随分化时间呈下降趋势,且增殖期显著高于其他分化期(
P<0.05);分化1 d显著高于分化3、5和7 d(
P<0.05);分化3 d显著高于分化5和7 d(
P<0.05)(
图10(a))。而
PTEN在成肌细胞的表达量也是随分化时间一直下降,其中,增殖期显著高于分化的其他时期(
P<0.05)(
图10(b))。
3 讨论与分析
S3系鸡是江苏省家禽科学研究所经导入性连锁矮小基因,并经15个世代的持续选育而成的性连矮小品系(SLD)。性连锁矮小鸡与正常鸡相比体重降低了40%左右,胸大肌的重量降低了约40.6%
[19-20],SLD鸡是公认地研究肌肉发育和脂肪沉积的一个理想模型。隐性白羽肉鸡生长速度快,与S3系鸡在体重、胸肌率和腿肌率等都具有显著差异。因此,本研究以S3系鸡和隐性白羽鸡为试验素材,探讨miR-17-5p在脂肪沉积和肌肉发育的作用,在试验素材选择上是具有代表性的。
本研究发现,miR-17-5p在2个鸡种不同发育阶段的肝脏、腹部脂肪和腿部肌肉组织中均有表达,进一步地研究表明,miR-17-5p在不同组织类型和不同发育阶段的表达存在显著差异。在肝脏组织中,miR-17-5p在16周时表现出显著的品种差异性,S3品系的表达量明显高于隐性白羽鸡。在腹部脂肪和腿部肌肉组织中,miR-17-5p的表达在0周的2个鸡种之间也存在显著差异,S3品系在腹部脂肪组织中的表达明显低于隐性白羽鸡,而腿部肌肉相反,本结果提示miR-17-5p在鸡的脂肪沉积或肌肉发育的不同时期发挥了的作用有所不同,且在不同品种中的贡献有差异。miR-17-5p在肌内脂肪细胞分化6 d的表达显著高于增殖期,提示miR-17-5p可能促进鸡肌内脂肪细胞脂滴生成,本结果与前期报道的肌内前脂肪细胞中miR-17-5p的过表达抑制了NCOA3的表达,降低了猪前脂肪细胞的分化呈相反趋势
[21],miR-17-5p对鸡脂肪生成是抑制还是促进作用,本研究后期利用基因功能验证方法将进一步验证;成肌细胞中gga-miR-17-5p的表达随着分化时间的延长而增加,提示gga-miR-17-5p也可能在促进成肌细胞分化方面发挥作用。
本研究通过TargetScan和miRDB在线软件预测gga-miR-17-5p的靶基并对2个软件得到的靶基因进行交集分析,得到了379个交集靶基因,进一步对交集靶基因进行GO、KEGG及蛋白互作分析发现,
PTEN、MAPK3、PIK3R1、BECN1和
PLCB4可能是gga-miR-17-5p发挥作用的重要靶基因。结合相关文献报告,MiR-26b在啮齿动物模型、人类肥胖受试者和胰岛素抵抗性脂肪细胞中通过抑制其靶基因
PTEN来调节胰岛素刺激的AKT激活,并通过PTEN/PI3K/AKT通路显著增加胰岛素敏感性
[22]。肌肉中
PTEN基因的差异表达在调节骨骼肌衰老和寿命中起着重要作用,并且由于它决定了肌肉Pten/Akt通路和Pten/Sirt1/PGC-1α通路的活性,因此也影响了衰老骨骼肌对体育锻炼的适应性
[23]。miR-17-5p降低并通过靶向
PTEN抑制甲状腺癌的增殖、自噬和促进细胞凋亡
[24]。本研究利用RT-qPCR检测了
PTEN在成肌细胞中的表达,结果发现
PTEN在增殖期的表达显著高于分化期,并呈现出随着分化时间的延长逐渐下降的趋势,而miR-17-5p在成肌细胞中的表达表现为随着分化时间的延长逐渐升高,miR-17-5p和预测靶基因
PTEN的表达呈相反趋势,符合miRNA和其靶基因的作用规律。结合文献和本研究结果提示
PTEN可能是miR-17-5p的靶基因。miR-F4-C12通过靶向
PIK3R1调节猪的皮下脂肪组织的积累
[25];上调
PIK3R1可增强成骨细胞的分化,相反,
PIK3R1的下调降低了成骨细胞相关基因的水平,增加了破骨细胞相关基因水平
[26]。本研究结果表明
PIK3R1在成肌细胞增殖期的表达显著高于分化期,也呈现出随着分化时间的延长逐渐下降的趋势,与miR-17-5p在成肌细胞中的表达也呈相反趋势,同样符合miRNA和其靶基因的作用规律。结合文献和本试验结果提示
PIK3R1也有可能是miR-17-5p的关键靶基因。
4 结 论
在鸡的肝脏、腹脂、腿肌组织、脂肪细胞和成肌细胞中都有gga-miR-17-5p的表达,且存在品种差异性和组织差异性。gga-miR-17-5p可能是通过PTEN、MAPK3、PIK3R1、BECN1和PLCB4来影响肌肉发育和脂肪沉积,其中PTEN和PIK3R1尤为关键。
国家重点研发计划“农业生物种质资源挖掘与创新利用”重点专项资助(2021YFD1200803)
现代农业产业技术体系建设专项(CARS-41-Z05)
江苏省种业振兴揭榜挂帅项目(JBGS(2021)109
JBGS[2021]029
国家自然科学基金项目(32102538)
广东省基础与应用基础研究基金项目(2022A1515012014)
扬州市现代农业项目(YZ2023054)