灰霉病是由葡萄孢属(
Botrytis spp.)真菌引起的一种重要的世界性病害。目前已知葡萄孢属真菌包含30多个种属
[1],其中灰葡萄孢的寄主范围十分广泛,能侵染包括番茄、黄瓜、茄子、葡萄和烟草等在内的200多种经济作物。除此之外,灰葡萄孢在作物的储藏、运输期间也会造成巨大的产量和经济损失
[2-4]。目前,由于缺乏有效的商业化抗病品种,灰霉病的防治仍主要依赖喷施化学杀菌剂。化学杀菌剂在使用过程中普遍存在过量喷施,容易造成药物残留及环境污染等问题
[5-7]。
利用有益微生物进行作物病害防治是绿色防控的重要发展方向之一
[8]。研究表明,木霉菌(
Trichoderma spp
.)、酵母菌(
Saccharomyces spp.)、芽孢杆菌(
Bacillus spp.)、链霉菌(
Streptomyces spp.)等在抑制病原真菌和细菌上具有良好的效果
[9-10]。生防菌株的作用机制主要包括抗生作用,定殖位点、营养或矿物质的竞争,寄生和噬菌体,其中通过分泌抗真菌代谢物质(Antifungal Metabolites, AFMs)来发挥对病原真菌的抗生作用是最常见的策略,目前研究较多的抗真菌代谢物质主要有抗生素、酶和挥发物
[11]。挥发性有机化合物是一种低分子量含碳化合物,易扩散到土壤孔隙、液体及大气中,是一种理想的化学介质,目前已被应用于植物病害防治。木霉菌作为研究最多,并且在商业实践中应用最广泛的一种生防真菌,具有广谱性高、适应性强和多机制等特点,且能够分泌大量具有抗菌作用的次生代谢产物
[12]。在这些抗菌物质中,挥发性有机化合物因其高效的抗菌活性和低环境残留性成为研究热点。围绕木霉菌属产生挥发物的抗菌活性已开展了广泛的研究,20世纪70年代,Colins等
[13]已开始研究木霉菌气体挥发物的成分,近来又陆续有文献报道了木霉菌产生的挥发性有机化合物在防治植物真菌病害中的应用;张铭等
[14]报道了森吉木霉(
Trichoderma songyi)M75产生的VOCs可以有效抑制松球壳孢菌(
Sphaeropsis sapinea)的生长,经过气相色谱-质谱联用法(GC-MS)分析,以及各挥发物纯品的体外菌丝生长抑制试验结果显示,挥发性物质中的芳樟醇的抑菌效果最好,其可以抑制金黄壳囊菌(
Cytospora chrysosperma)、栗疫菌(
Cryphonectria parastica)和链格孢(
Alternria sp)等多种病原真菌。
前期研究在健康葡萄果实(青岛胶州采摘)中分离得到一株对灰葡萄孢有较强拮抗作用的木霉菌,命名为GUI12,其发挥抑菌作用的关键代谢产物和对灰霉病的防治效果尚未明确。因此,本研究拟以GUI12菌株为研究对象,采用形态学及分子生物学对菌株进行鉴定,并研究其在不同时间产生的VOCs对灰葡萄孢的抑制情况,以及VOCs对灰葡萄孢形态和结构的影响及其对灰霉病害的防治效果,分析GUI12产生的VOCs的组成成分以及对灰葡萄孢的有效抑菌物质,并针对有效抑菌物质开展药效试验,验证其实际应用效果,以期为该菌株应用于灰霉病的防治提供依据。
1 材料与方法
1.1 试验材料及主要仪器
试验于2023年11月—2024年9月完成于中国农业科学院烟草研究所。供试病原真菌灰葡萄孢菌株0201,生防真菌菌株GUI12均保藏于中国农业科学院烟草研究所。所用PDA及PDB培养基,购自北京索莱宝科技有限公司(中国)。培养箱为上海一恒LRH-250生化培养箱,振荡培养箱型号为上海知楚ZQZY-CF9.9振荡培养箱(中国),气相色谱质谱仪型号为安捷伦7890B-5975C气相色谱质谱仪(美国)。
1.2 试验方法
1.2.1 GUI12菌株和灰葡萄孢菌0201对扣培养
参照Kong等
[12]的平板对扣方法并略加修改:选取活化状态良好的GUI12菌株以及0201菌株,利用无菌打孔器(
Φ=5 mm)在其菌丝边缘处打孔,分别接种于预先制备好的2个PDA培养基(90 mm×15 mm的培养皿中加入15 mL的PDA)中央,随后将这2个培养基去盖对扣,用 Parafilm 封口膜进行密封,接种GUI12菌株的培养基置下,接种0201菌株的培养基置上, 以未接种GUI12菌饼的 PDA 培养基对扣0201培养基作为对照,每个处理重复3次。置于 25 ℃恒温培养箱中黑暗培养,并在接种后24、48、72、96 h时使用游标卡尺精确测量0201菌株菌落的直径(mm)。抑菌率计算公式如下:
抑菌率=(1-[(处理组菌落直径-5)/
(对照组菌落直径-5)]×100%
1.2.2 GUI12菌株的鉴定
GUI12菌株的形态学鉴定:用打孔器(Φ=5 mm)取菌饼倒置于PDA培养基将GUI菌株活化后,28 ℃培养3 d,待长出菌落后,用接种针挑取菌丝置于载玻片上,在显微镜下观察菌丝形态特征,并对其进行初步鉴定。
GUI12菌株的分子生物学鉴定:菌株GUI12 ITS1/ITS4基因扩增及测序采用CTAB法进行基因组总DNA提取。PCR扩增体系为50 μL: 模板DNA(36 ng/μL)2 μL,引物ITS1(5'-TCCGTAGGTGAACCTGCGG-3')和ITS4(5'-TCCTCCGCTTATTGATATGC-3')(10 μmol/L)各2 μL, 10×Phanta Flash Mix(Dye Plus)2 μL,双蒸水19 μL。PCR扩增程序:95 ℃ 5 min,95 ℃ 15 s,56 ℃ 15 s,72 ℃ 2 min,34个循环; 72 ℃ 10 min。将PCR产物送交北京擎科生物技术有限公司进行测序。测序结果查询GenBank数据库,采用BLAST在线工具与数据库的序列进行同源性比较,利用MEGA X软件,使用邻接法构建系统发育树。
1.2.3 扫描电镜(SEM)及透射电镜(TEM)观察GUI12菌株和灰葡萄孢菌0201菌丝形态影响
参照1.2.1的方法,将GUI12菌株与0201菌株对扣培养3 d,以未接种GUI12菌饼的 PDA 培养基对扣0201培养基作为对照。收集的菌丝体用 2.5% Gluta 固定液固定(4 °C),送往青岛大学医学部进行SEM和TEM观察。
1.2.4 GUI12菌株挥发性物质在离体葡萄上的抑制作用
灰葡萄孢分生孢子液制备:以0201菌株为材料,在PDA平板上25 ℃培养10 d。无菌水冲洗,使用8层纱布过滤菌丝,吸取上清,用血球计数板在显微镜下确定灰葡萄孢孢子液浓度。无菌水稀释成1×105 个/mL孢子悬浮液。
在组培瓶(600 mL)中加入100 mL PDA后灭菌,在处理组中放入GUI12菌饼,对照为空白PDA。将新鲜葡萄果实,浸泡在 2%次氯酸钠溶液中2 min,用无菌水冲洗 3次后晾干,采用无菌针头于果实上刺1个伤口(3 mm×3 mm),然后将5 μL灰葡萄孢孢子悬浮液加入伤口。每个组培瓶放置5个接种后的果实,快速盖上组培瓶盖,用Parafilm封口膜进行密封。在25 ℃下培养3 d后,观察并测量病斑直径(mm),根据病斑直径计算抑制率。每个处理设置3个重复。病斑生长抑制率具体计算公式如下:
病斑生长抑制率=
1.2.5 GUI12菌株挥发性物质的收集和其组分分析
挥发性物质的制备:将这2个活化状态良好的GUI12菌饼(Φ=5 mm)放置于150 mL的PDA培养瓶中,用 Parafilm 封口膜进行密封,在28 °C条件下培养3 d,以未接种菌块的PDA为对照,每个处理设置3个重复。
挥发性物质的吸附:将培养3 d后的培养瓶置于40 ℃水浴30 min,之后将SPME针插入培养瓶瓶 1/3 处,然后推出萃取头,顶空吸附 45 min 后样品采集结束。
挥发性物质的分析方法:色谱分析采用氦气作为载气,流速设定为1 mL/min,SPME针在220 °C下解吸5 min。色谱柱为RTX-5MS柱(3 m长,内径0.25 mm,膜厚0.25 mm),初始温度设定为35 ℃,持续3 min后以10 ℃/min的速率升至180 ℃,再以4 ℃/min的速率升至240 ℃,并保持5 min。质谱仪在电子电离模式下运行,能量设定为70 eV,温度220 ℃,扫描范围50~500 m/z。利用安捷伦 MassHunter(B.05.02)软件进行色谱图的获取与分析。挥发性物质的检测结果通过与安捷伦NIST 数据库进行比对,结合Kovats保留指数的计算与匹配,对解析出的VOC峰进行鉴定。当化合物的质谱图与数据库中的匹配度超过800,且保留指数(retention index,RI)的差值<5时,该化合物即被确认为已鉴定。
1.2.6 GC-MS分析鉴定的挥发性化合物的抗菌活性评估
购买通过GC-MS分析鉴定的挥发性有机化合物,并采取熏蒸法评估其对0201菌株的抗菌活性。参照1.2.1的方法接种0201菌株,之后在培养皿盖内部中央贴上10 mm ×10 mm灭菌滤纸,并在滤纸上滴加6.5 μL的挥发性化合物(终浓度100 μL/L),快速盖上培养皿盖,用Parafilm 封口膜进行密封,以不加挥发性化合物的滤纸片作为对照。每个处理设置3个重复。置于 25 ℃恒温培养箱中黑暗培养3 d,使用游标卡尺精确测量0201菌株菌落的直径(mm)。通过计算,得到抑菌率。
1.2.7 挥发物2,3-butanedione(2,3-丁二酮)、Phenylethyl Alcohol(苯乙醇)对灰葡萄孢0201的有效抑制中浓度(EC50)
参照1.2.6的方法,接种0201菌株并在培养皿盖上的滤纸上滴加0.325、0.650、0.975、1.300、1.625 μL的2,3-丁二酮将培养皿中空气中2,3-丁二酮的浓度控制在 5、10、15、20、25 μL/L。在培养皿盖上的滤纸上滴加0.650、1.625、3.250、4.875、6.500 μL的苯乙醇,将培养皿空气中的苯乙醇的终浓度控制在 10、25、50、75、100 μL/L;快速盖上培养皿盖,用Parafilm 封口膜进行密封,以不加挥发性化合物的滤纸片作为对照。每个处理重复3次。置于 25 ℃恒温培养箱中黑暗培养3 d,使用游标卡尺精确测量0201菌株菌落的直径(mm),并分别计算不同浓度苯乙醇、2,3-丁二酮对0201菌株的抑制率及EC50。
1.2.8 气体挥发物2,3-丁二酮和苯乙醇在离体葡萄上的抑制作用
参照1.2.4的方法完成灰葡萄孢分生孢子液制备及在葡萄果实上接种灰葡萄孢分生孢子液。在组培瓶(600 mL)底部空白位置放置灭菌滤纸,并分别滴加不同量的2,3-丁二酮、苯乙醇使组培瓶中的2,3-丁二酮、苯乙醇浓度达到各自对于0201菌株的EC50及2×EC50。每个组培瓶放置5个接种后的果实,快速盖上组培瓶盖,用Parafilm封口膜进行密封。在25 ℃下培养3 d后,观察并测量病斑直径(mm),根据病斑直径计算抑制率。每个处理设置3个重复。
1.3 统计分析
使用Microsoft Office Excel 2019和SPSS 18.0进行数据统计分析,使用GraphPad Prism 2020作图。
2 结果与分析
2.1 GUI12产生的VOCs对灰葡萄孢生长的影响
本研究获得的GUI12菌株与灰葡萄孢对扣试验以及对其菌丝抑制效果及抑制率分别见
图1及
图2。由
图1可见:随着对扣培养时间的增长,与GUI12菌株对扣的灰葡萄孢与正常培养的灰葡萄孢菌落直径差距逐渐增大。由
图2可见:对扣培养24 h、48 h、72 h、96 h时,与正常培养的灰葡萄孢相比,GUI12菌株对扣对灰葡萄孢菌落扩展的抑制率分别为66.67%、68.75%、79.94%和89.63%。结果表明GUI12菌株产生的VOCs能够有效抑制灰葡萄孢菌丝的生长。
2.2 GUI12菌株的鉴定
通过形态学及分子生物学鉴定GUI12菌株,结果见
图3。由
图3(a)可见:GUI12菌株培养3 d时,呈现出清晰的透明菌落和典型的气生菌丝,菌饼周围菌丝变绿,菌落直径为75~80 mm。
由
图3(b)可见GUI12菌株分生孢子梗从菌丝伸出,部分形成分生孢子,分生孢子呈亚球形至球形。由
图3(c)可见将得到的GUI12菌株ITS测序结果与NCBI数据库中的序列进行BLAST比对,初步鉴定为木霉菌。提取同源性较高的不同菌种的序列与GUI12菌株序列,通过MEGA X采用邻接法联合构建系统发育树。结果表明,GUI12与
Trichoderma citrinoviride(柠檬绿木霉)在同一分支。结合形态学鉴定结果,GUI12鉴定为
T. citrinoviride。
2.3 GUI12菌株产生的VOCs对灰葡萄孢的细胞形态及结构的影响
细胞形态和结构对于病原菌侵染植物至关重要,形态的改变会导致菌体无法正常增殖、识别以及结合,而结构的改变则会导致菌丝功能丧失。
将与GUI12菌株对扣培养及正常培养3 d的灰葡萄孢分别在扫描电镜(SEM)和透射电镜(TEM)下观察菌体表面形态以及结构变化,结果见
图4。由
图4(a)可见:正常培养的灰葡萄孢菌丝形态正常,呈现出光滑且饱满圆润的状态;细胞结构正常,细胞壁及细胞膜完整,细胞核、线粒体、液泡均清晰可见。由
图4(b)可见:与GUI12对扣培养的灰葡萄孢菌丝呈现出变粗、褶皱、塌陷的现象;其细胞核、线粒体及液泡等细胞器呈现出轮廓模糊,甚至溶解和消失的现象。结果表明,GUI12菌株产生的VOCs可能引起细胞器损伤,最终导致菌体死亡。
2.4 GUI12菌株产生的VOCs对葡萄灰霉病的防效验证
GUI12菌株产生的VOCs对葡萄灰霉病的防治效果见
表1。可见:对照组病斑平均直径为17.80 mm,经GUI12菌株产生的VOCs处理后的葡萄果实病斑平均直径为8.27 mm,病斑扩展相对缓慢,GUI12菌株产生的VOCs对葡萄灰霉病斑扩展具有一定的抑制作用,抑制率为53.56%。
2.5 GUI12菌株产生的VOCs成分鉴定及活性筛选
利用GC-MS技术对培养3 d的GUI12菌株产生的VOCs进行成分分析,鉴定结果见
表2。共鉴定出19种VOCs,这些化合物包括酮类、醇类、烷烃类、吡喃类、酯类。
测定可购买到的GUI12菌株产生的12种VOCs(乙酸异丁酯、2,3-丁二酮、丁酸乙酯、2-甲基丁基乙酸酯、巴豆酸乙酯、2-甲基丁醇、异戊醇、惕各酸乙酯、3-乙酰氧基丁酸乙酯、γ-戊内酯、苯甲酸乙酯、苯乙醇)对灰葡萄孢的抑制率结果见
图5(a)。可见: 12种VOCs在100 μL/L的浓度下均能够不同程度地抑制灰葡萄孢菌落扩展,其中2,3-丁二酮及苯乙醇对灰葡萄孢的抑制效果较为显著,抑制率均为100%。
不同浓度的2,3-丁二酮及苯乙醇对灰葡萄孢抑制率结果见
图5(b)及
图5(c)。由
图5(b)可见2,3-丁二酮对灰葡萄孢的毒力回归方程为
y=4.84
x-22.47, EC
50为14.97 μL/L。由
图5(c)可见苯乙醇对灰葡萄孢的毒力回归方程为
y=0.97
x+3.24,其EC
50为48.21 μL/L。
2.6 2,3-丁二酮及苯乙醇对葡萄灰霉病的防效验证
2,3-丁二酮和苯乙醇对葡萄灰霉病的防治效果见
表3。可见:接菌培养3 d后,对照组葡萄的病斑发病率为100.00%,病斑直径为18.20 mm。与之相比,2,3-丁二酮在EC
50及2×EC
50浓度下均未发病,且无病斑出现,对葡萄灰霉病斑扩展的抑制率为100.00%;苯乙醇在EC
50及2×EC
50浓度下的发病率分别为86.67%、0.00%,病斑直径分别为4.73 mm、0.00 mm,对葡萄灰霉病斑扩展的抑制率分别为74.00%、100.00%。
3 讨 论
生防菌及其代谢产物等生物防治剂的开发和应用,为植物病原真菌的生物防治提供了一种有前途的替代方案。本研究发现柠檬绿木霉GUI12菌株产生的VOCs能够有效抑制灰葡萄孢的菌丝生长,抑制效果并未随着时间的延长而减弱。目前已报道木霉菌属的一些物种产生的VOCs具有抗真菌活性,如康宁木霉(
T. koningii)T2
[15]、哈茨木霉(
T. harzianum)
[16]、哈马图木霉(
T. hamatum)
[17]、棘孢木霉(
T. asperellum)T1
[18]等产生的VOCs能够抑制植物病原真菌菌丝的体外生长、孢子形成,导致病原菌菌丝畸形、顶端膨大、分支增多、细胞质外渗等。Hu等
[16]发现哈茨木霉VOCs处理会导致马铃薯晚疫病菌(
Phytophthora infestans)细胞壁和细胞膜变形、塌陷以及细胞器的退化并导致细胞质材料泄漏。本研究中GUI12菌株产生的VOCs能够导致灰葡萄孢的菌丝呈现出变粗、褶皱、塌陷的现象,并使包括细胞核、线粒体及液泡等在内的细胞器呈现出模糊现象,且能够抑制葡萄果实上灰霉病病斑的生长,对葡萄灰霉病斑扩展的抑制率为53.56%。
具有生物活性的微生物VOCs由于不同的化学基团被分为烯烃、醇类、酮类、苯类、吡嗪类、硫化物和萜烯类等
[19]。Abdenaceur 等
[20]研究发现粗糙木霉(
T. asperellum)产生的主要VOCs异丁醇、3-戊酮和1-戊烯-3-醇对大丽轮枝菌(
Verticillium dahliae)表现出明显的抑菌活性;Rao
[21]等报道橘绿木霉(
T. atroviride)LZ42产生的2-庚酮、2-戊基呋喃及β-榄香烯能有效抑制尖孢镰刀菌(
Fusarium oxysporum),对GUI12菌株产生的VOCs进行分析,共鉴定出包括酮类、醇类、烷烃类、吡喃类、酯类在内的19种VOCs。与复杂的VOCs组分相比,纯化合物具有清晰的结构特性,易于生产和合成,未来可能具有实际应用价值
[22]。本研究依据GUI12菌株产生的VOCs,筛选出12种在市面上可购买到的VOCs纯品并进行抑菌活性测定,发现其在100 μL/L的浓度下均能够不同程度地抑制灰葡萄孢的菌丝的生长,其中2,3-丁二酮、苯乙醇对灰葡萄孢的抑制效果较为显著,抑制率均达到100%。本研究中部分VOCs抑菌效果较差可能与所选的浓度有关,一些抗真菌化合物在低浓度下表现出弱活性或无效
[23]。但高浓度的抗真菌物质会影响人体健康,难以在农业生产中应用,因此本研究中没有选择高浓度。
2,3-丁二酮是一种天然存在、安全且可食用的挥发性α-二酮,因其良好的风味而常用于食品添加剂和香料中。Gergolet等
[24]发现2,3-丁二酮对轮枝镰刀菌(
F. verticillioides)的菌丝生长具有强烈的抑制作用。Calvo等
[25]研究发现,20 μL/L的2,3-丁二酮可以完全控制葡萄灰霉病,并减少60%的柑橘灰霉病害。Ling等
[22]发现贝莱斯芽孢杆菌(
B. velezensis)L1产生的2,3-丁二酮能够显著抑制灰霉菌丝生长,并降低枸杞果实的灰霉病的病情指数; 苯乙醇是一种芳香醇类化合物,通常用作食品和化妆品中的防腐剂,但也有广泛研究证明其对多种微生物具有抗菌活性。Boukaew等
[26]发现棘孢木霉(
T. asperellum)能够产生苯乙醇,对苯乙醇进行熏蒸发现其能够减少2种产黄曲霉毒素的真菌黄曲霉(
Aspergillus flavus)和寄生曲霉(
Aspergillus parasiticus)在大豆种子上的发病率。Xu等
[27]发现金黄色葡萄球菌(
Arcopilus aureus)YZXR菌株产生的苯乙醇能够有效抑制藤仓镰刀菌(
F. fujikuroi)本研究测量2,3-丁二酮、苯乙醇在不同浓度下的对灰葡萄孢菌丝的抑制情况,发现2,3-丁二酮及苯乙醇对灰葡萄孢的EC
50 分别为14.97 μL/L和48.21 μL/L。进一步对2,3-丁二酮及苯乙醇进行葡萄防效试验,发现2,3-丁二酮在EC
50、2×EC
50浓度下均能够完全抑制葡萄灰霉病发生;苯乙醇也能够在2×EC
50浓度下完全抑制葡萄灰霉病发生,但在EC
50浓度下其发病率则为86.67%,对葡萄灰霉病斑扩展的抑制率为74%。上述研究结果表明2,3-丁二酮及苯乙醇有望应用于水果采后储存期防治灰霉病。此外,正如GC-MS技术分析结果一样,微生物产生的VOCs的成分复杂,其抑制作用通常不依赖于单一的活性成分
[28]。少有研究调查VOCs组合的最佳应用和活性,因此,这些VOCs中的主要成分是否协同参与抗真菌作用值得进一步研究。另一方面,本研究专注于研究木霉菌产生的VOCs的抗菌作用,但木霉菌也能够产生如胶霉毒素、Sohirnones A
[29]和Sorbicillin
[30]等具有抑菌活性的次级代谢产物。GUI12菌株能否产生具有抑菌活性的非挥发性代谢产物值得进一步的研究。
4 结 论
为了对能够绿色防控灰霉病的生物防治剂提供科学依据和技术支持,本研究以GUI12菌株为研究对象,探究了其对灰葡萄孢的抑制效果、挥发性有机物(VOCs)的组成及其对灰葡萄孢菌丝形态和结构的影响,以及VOCs对葡萄灰霉病的防治效果。主要结论如下:
1)GUI12菌株被鉴定为柠檬绿木霉(Trichoderma citrinoviride),其产生的VOCs对灰葡萄孢菌丝生长具有显著抑制作用,抑制率最高可达89.63%,且对葡萄灰霉病斑扩展的抑制率为53.56%。
2)通过SEM和TEM观察发现,GUI12产生的VOCs能够导致灰葡萄孢菌丝变粗、褶皱、塌陷,并使细胞器轮廓模糊甚至溶解消失,说明VOCs可造成细胞器损伤,从而抑制灰葡萄孢的生长。
3)GC-MS分析鉴定出GUI12产生19种VOCs,其中2,3-丁二酮和苯乙醇在100 μL/L浓度下对灰葡萄孢的抑制率为100%。2,3-丁二酮在EC50(14.97 μL/L)浓度下对葡萄灰霉病的防效为100%,苯乙醇在2×EC50(95.38 μL/L)浓度下防效也达到100%,表明这2种化合物对灰葡萄孢和葡萄灰霉病具有显著的防治效果。
国家自然科学基金项目(32302448)
山东省自然科学基金项目(ZR2024QC002)
中央级公益性科研院所基本科研业务费专项(1610232023025)
烟草常用生物农药新型增效剂的研究及应用(NYK2025-02-03)
中国烟草总公司重大科技项目(110202101057(LS-17))