卵巢癌是最常见和最致命的妇科恶性肿瘤之一,5年生存率仅为30%~50%
[1-2]。在卵巢癌早期得到诊断和治疗的患者预后通常较好,但约80%的患者在诊断时就处于晚期,因此开发可有效监测卵巢癌的肿瘤标志物至关重要
[3-5]。长链非编码RNA(long noncoding RNA,lncRNA)是一类长度超过200个核苷酸的非编码RNA
[6]。在肿瘤的发生和发展中,lncRNA可从基因组稳定性、调控转录、表观遗传学等方面发挥多项重要的作用
[7-9]。多项研究
[10-12]表明:LncRNAs参与卵巢癌细胞的增殖、迁移、侵袭、上皮-间充质转化(epithelial-mesenchymal transition,EMT)等重要过程,其异常表达与卵巢癌患者的不良预后密切相关。本研究旨在通过生物信息学方法筛选与卵巢癌预后相关的lncRNA,并通过一系列的生物实验探究其对卵巢癌细胞增殖、迁移、EMT进程等恶性生物学行为的影响,以期为开发可有效监测卵巢癌的肿瘤标志物提供实验依据。
1 材料与方法
1.1 伦理声明
本研究已获得中南大学湘雅医学院附属肿瘤医院/湖南省肿瘤医院医学伦理委员会批准(审批号:2021-723B)及所有患者的知情同意书。
1.2 材料
1.2.1 临床组织
从中南大学湘雅医学院附属肿瘤医院/湖南省肿瘤医院获得8例卵巢癌患者的卵巢组织及相应的癌旁组织样本。参与本项研究的患者均被2名病理学专家诊断为卵巢癌,手术前均未接受任何放疗或化疗。
1.2.2 裸鼠
从中南大学湘雅医学院附属肿瘤医院/湖南省肿瘤医院实验动物中心获得12只雌性BALB/c裸鼠(4~6周龄),并在湿度45%~50%、温度25~27 ℃的无特定病原体实验室中饲养。
1.2.3 细胞系及培养基
卵巢癌细胞系CaOV3、OVCAR3、SKOV3、A2780、HO-8910和卵巢正常上皮细胞系IOSE80均购于美国细胞培养物收藏中心(American Type Culture Collection,ATCC)。CaOV3细胞在含10%胎牛血清(澳大利亚Gibco)的杜尔贝科改良伊格尔培养基(DMEM;美国ATCC)中培养。SKOV3细胞在含10%胎牛血清(澳大利亚Gibco)的McCoy’s 5a培养基(美国ATCC)中培养。OVCAR3、A2780、HO-8910和IOSE80细胞在添加10%胎牛血清的RPMI 1640培养基(美国ATCC)中培养。细胞均放置在37 ℃、5% CO2的细胞培养箱中培养,每周更换3次培养基。CaOV3细胞和SKOV3细胞在后续实验分为3组:阴性对照(negative control,NC)组、敲减(si-RP11-499E18.1)组和过表达(pcDNA-RP11-499E18.1)组。
1.3 方法
1.3.1 生物信息学方法和生存分析
从基因表达综合(Gene Expression Omnibus,GEO)数据库中获取卵巢癌相关lncRNA数据集,并采用lncRNA测序(lncRNA-sequencing,lncRNA-seq)进行分析。使用GEO2R工具,设定P<0.05以筛选差异表达基因(differentially expressed genes,DEGs),采用Venn分析进一步筛选差异表达一致的lncRNAs。通过Kaplan-Meier法和log-rank检验结合生存曲线分析GEO数据库获取的相关临床数据,筛选潜在的肿瘤抑制lncRNA。
1.3.2 反转录聚合酶链反应
采用反转录聚合酶链反应(reverse transcription PCR,RT-PCR)检测lncRNA RP11-499E18.1在卵巢组织及相应的癌旁组织、卵巢正常上皮细胞系IOSE80及卵巢癌细胞系中的表达情况。引物由生工生物工程(上海)股份有限公司合成,序列如
表1所示。使用TRIzol[宝日医生物技术(北京)有限公司]提取组织和细胞中的RNA,使用RiboLock RNA酶抑制剂和DNA酶I(美国Thermo Scientific)去除基因组DNA,采用分光光度计(美国HACH)检测RNA的浓度和纯度,通过1%的琼脂糖凝胶电泳检测RNA的完整性。使用莫洛尼鼠白血病病毒(moloney murine leukemia virus,MMLV)逆转录酶[赛默飞世尔科技(中国)有限公司]、dNTP底物[赛默飞世尔科技(中国)有限公司]等完成RT-PCR。
1.3.3 蛋白质印迹法
采用蛋白质印迹法检测卵巢癌细胞中EMT相关分子E-cadherin和vimentin的表达水平。用蛋白酶抑制剂和RIPA裂解液(上海Beyotime)提取细胞中的蛋白质,Nanodrop 2000系统[赛默飞世尔科技(中国)有限公司]定量蛋白质,SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳分离蛋白质。使用增强化学发光试剂显色,ImageJ软件进行灰度扫描并计算蛋白质的相对表达量。抗体包括抗E-cadherin(货号ab40772,美国Abcam)、抗vimentin(货号ab137321,美国Abcam)、抗β-actin(货号66009-1-Ig,美国Proteintech)及辣根过氧化物酶(horseradish peroxidase,HRP)标记的二抗(货号ab6721,美国Abcam)。
1.3.4 细胞转染
人lncRNA RP11-499E18.1的全长互补cDNA由生工生物工程(上海)股份有限公司合成;将其克隆到pcDNA3.1载体(北京Takara)中以构建过表达质粒pcDNA-RP11-499E18.1。使用DNA Midiprep试剂盒[赛默飞世尔科技(中国)有限公司]制备过表达质粒。通过RP11-499E18.1的小干扰RNA(small interfering RNA,siRNA)si-RP11-310-332、si-RP11-454-476、si-RP11-589-611干扰lncRNA RP11-499E18.1的表达。将pcDNA-RP11-499E18.1和si-RP11-499E18.1通过脂质体3000(美国Invitrogen)转染到细胞中,转染CaOV3细胞和SKOV3细胞24 h后检测lncRNA RP11-499E18.1的表达水平。siRNA的序列见
表2。
1.3.5 荧光原位杂交
采用荧光原位杂交(fluorescence in situ hybridization,FISH)技术检测RP11-499E18.1在CaOV3和SKOV3细胞中的定位。分别使用U6对照探针和RP11-499E18.1探针(广州锐博生物技术有限公司)标记对应靶信号,使用4’,6-二脒基-2-苯基吲哚(4’,6-diamidino-2-phenylindole,DAPI)染色细胞核,采用共聚焦显微镜(德国Zeiss)检测荧光信号。
1.3.6 平板集落形成实验
将转染后的CaOV3和SKOV3细胞重悬,以每孔1 000个细胞的密度接种到6孔板中,在5% CO2和37 ℃的加湿培养箱中培养2~3周。使用甲醇和0.1%结晶紫固定并染色,采用显微镜(日本Olympus)观察。
1.3.7 四甲基偶氮唑盐实验
向转染0、12、24、48、72 h的细胞中分别加入四甲基偶氮唑盐(methyl thiazolyl tetrazolium,MTT),使用酶标仪(美国Bio-Rad)测量570 nm处的光密度(optical density,OD)值。计算细胞增殖率:细胞增殖率=实验组OD值/对照组OD值×100%。
1.3.8 Transwell实验
将悬浮在无血清培养基中的细胞接种于铺有Matrigel人工基质胶的Transwell小室(美国Corning)上室,将完全培养基置于下室。下室的细胞用95%乙醇和苏木精固定染色,并通过显微镜(日本Olympus)观察。
1.3.9 荷瘤实验
BALB/c裸鼠分为实验组(注射转染pcDNA-RP11-499E18.1的CaOV3细胞)和对照组(注射转染空载体pcDNA的CaOV3细胞)。将处于对数生长期的细胞注射至饲养1周的裸鼠背部,每3 d测量1次肿瘤的宽度和长度,共测量6次。计算肿瘤体积:肿瘤体积=0.5×长度×宽度。
1.3.10 IHC
采用免疫组织化学法(immunohistochemistry,IHC)染色检测实验组和对照组肿瘤组织中细胞凋亡相关分子Caspase 3和细胞增殖相关分子Ki67的表达水平。肿瘤组织石蜡切片脱蜡后,孵育一抗和HRP标记的二抗(货号ab6721,美国Abcam)。一抗包括抗Caspase 3(货号ab4051,美国Abcam)和抗Ki67(货号ab15580,美国Abcam)。用二氨基联苯胺(diaminobenzidine,DAB)显色,终止反应后再用苏木精染色。采用显微镜(日本Olympus)观察。
1.4 统计学处理
每项实验均重复3次。数据采用均数±标准差表示。使用Graphpad Prism 8.0(美国CA)软件处理数据。2组间比较采用t检验,多组间比较采用单因素方差分析,P<0.05为差异有统计学意义。
2 结 果
2.1 LncRNA RP11-499E18.1的低表达与卵巢癌不良预后相关
本研究中分析的GEO数据集信息如
表3所示。LncRNA-seq结果(图
1A、
1B)显示:7种lncRNA在3个数据集中表达一致上调,13种lncRNA在3个数据集中表达一致下调。与lncRNA RP11-499E18.1高表达的卵巢癌患者相比,lncRNA RP11-499E18.1低表达的卵巢癌患者的总生存期(overall survival,OS)、无进展生存期(progression free survival,PFS)均更短(均
P<0.05,图
1C、
1D)。与正常组织相比,lncRNA RP11-499E18.1在卵巢癌组织中的表达均更低(均
P<0.05,图
1E~
1G)。上述结果提示,lncRNA RP11-499E18.1为潜在的肿瘤抑制lncRNA。
2.2 LncRNA RP11-499E18.1在卵巢癌组织和细胞中低表达且共表达于细胞核和细胞质
RT-PCR检测结果(图
2A、
2B)显示:LncRNA RP11-499E18.1在卵巢癌组织的表达显著低于癌旁组织(
P<0.001);在卵巢正常上皮细胞系(IOSE80)和5种卵巢癌细胞系(CaOV3、OVCAR3、SKOV3、A2780、HO-8910)中lncRNA RP11-499E18.1均有表达,且lncRNA RP11-499E18.1在除HO-8910外的其他4种卵巢癌细胞系中的表达均显著低于卵巢正常上皮细胞系IOSE80(均
P<0.001)。
FISH结果(
图2C)显示:U6(对照)探针标记的信号仅在卵巢癌细胞系CaOV3和SKOV3的细胞核中可检测到;而lncRNA RP11-499E18.1探针标记的信号在这2种细胞系的细胞核和细胞质中均可检测到。表明lncRNA RP11-499E18.1在卵巢癌细胞核和细胞质中并存。
2.3 LncRNA RP11-499E18.1抑制卵巢癌细胞增殖
卵巢癌细胞系CaOV3和SKOV3的RT-PCR检测结果(
图3A)显示:与NC组相比,si-RP11-499E18.1组的lncRNA RP11-499E18.1表达均明显降低(均
P<0.01),pcDNA-RP11-499E18.1组的lncRNA RP11-499E18.1表达均明显升高(均
P<0.001)。平板集落形成实验结果(
图3B)显示:与NC组相比,si-RP11-499E18.1组形成集落的细胞均增多,过表达后形成集落的细胞均减少。MTT实验结果(图
3C、
3D)显示:在CaOV3和SKOV3细胞中,si-RP11-499E18.1组的细胞增殖率均高于NC组(均
P<0.05),pcDNA-RP11-499E18.1组的细胞增殖率均显著低于NC组(均
P<0.001)。
2.4 LncRNA RP11-499E18.1抑制卵巢癌细胞迁移,影响EMT相关分子的表达
卵巢癌细胞系CaOV3和SKOV3的Transwell实验结果(
图4A)显示:si-RP11-499E18.1组迁移的细胞均多于NC组,pcDNA-RP11-499E18.1组迁移的细胞均少于NC组。蛋白质印迹法实验结果(
图4B)显示:与NC组相比,pcDNA-RP11-499E18.1组细胞中EMT相关分子的E-cadherin的蛋白质表达水平均升高、vimentin表达均降低,而si-RP11-499E18.1组E-cadherin表达均降低、vimentin表达均升高。
2.5 LncRNA RP11-499E18.1抑制卵巢癌细胞体内增殖并促进其凋亡
实验组荷瘤小鼠的成瘤体积显著小于对照组(
P<0.001,图
5A、
5B)。IHC实验结果(
图5C)显示:实验组肿瘤组织中细胞凋亡相关分子Caspase 3表达升高(
P<0.05),细胞增殖相关分子Ki67表达降低(
P<0.05)。提示lncRNA RP11-499E18.1抑制卵巢癌细胞体内增殖并促进其凋亡,与体外实验的结果一致。
3 讨 论
卵巢癌是严重威胁女性健康的常见恶性肿瘤,其特点包括早期症状不典型、筛查方法有限、发病率高且预后差等
[3, 13-14]。因此,开发可有效监测卵巢癌的生物标志物对于卵巢癌患者的诊断、治疗和预后均有重要意义。生物信息学分析作为一种新兴的生物医学研究技术,近年来在基础和临床医学研究的多个方面均得到了广泛应用
[15-16]。本研究通过生物信息学方法筛选出lncRNA RP11-499E18.1,并发现其可能作为潜在的肿瘤抑制生物标志物;进一步的实验结果表明lncRNA RP11-499E18.1可通过抑制卵巢癌细胞的增殖、迁移和EMT进程发挥其作用,为未来开发卵巢癌生物标志物提供了实验依据。
近年来,多种lncRNA被发现有潜力成为卵巢癌诊断以及治疗监测的靶标:lncRNA GAS5低表达预示卵巢癌患者的预后不良,并与卵巢癌临床分期为晚期显著相关
[17];在CaOV3和OVCAR3细胞中上调表达的lncRNA XIST可抑制癌细胞的增殖、侵袭,增加对顺铂化疗的敏感性,抑制体内肿瘤生长,发挥抗癌作用
[18];lncRNA MEG3过表达可抑制卵巢癌的进展,并通过miR-205-5p/PTEN/Akt途径增加癌细胞对顺铂化疗的敏感性
[19-20]。本研究通过分析GEO数据库相关数据集及检测临床样本,发现lncRNA RP11-499E18.1在卵巢癌组织中的表达显著下调,且其低表达与卵巢癌患者预后较差显著相关,提示lncRNA RP11-499E18.1可能成为潜在的卵巢癌生物标志物。
LncRNA在肿瘤发生和发展过程中的作用引起了广泛关注。LncRNA MAGI2-AS3过表达后可通过抑制癌细胞的增殖、迁移、侵袭,并促进癌细胞的凋亡,发挥抑制卵巢癌进展的作用
[21];lncRNA EPB41L4A-AS2过表达后可抑制卵巢癌细胞的增殖、集落形成、迁移和侵袭,还可抑制裸鼠体内肿瘤的形成
[22];下调lncRNA GAS5可促进卵巢癌细胞的增殖、迁移、侵袭和EMT进程,而过表达lncRNA GAS5可促进卵巢癌细胞的凋亡
[17, 23-25]。本研究发现lncRNA RP11-499E18.1过表达后卵巢癌细胞增殖、迁移及EMT明显减弱,沉默后的结果与此相反。同时,本研究还发现在荷瘤小鼠中过表达lncRNA RP11-499E18.1可抑制体内肿瘤的生长,并促进卵巢癌细胞的凋亡。
LncRNA RP11-499E18.1是一种新发现的卵巢癌相关lncRNA,在卵巢癌的发生和发展过程中的调节机制尚未完全阐明。之前的研究表明lncRNA在细胞中的定位决定了其可能的调控方式:位于细胞质中的lncRNA主要通过调控转录后水平发挥作用
[26];位于细胞核中的lncRNA可参与核染色质基因的表达调节
[27]。本研究发现lncRNA RP11-499E18.1以核质并存的形式存在于卵巢癌细胞中,为进一步探究lncRNA RP11-499E18.1的调节机制提供了初步证据。
在本研究中,高表达的lncRNA RP11-499E18.1通过抑制卵巢癌细胞增殖、迁移及EMT,延缓卵巢癌的进展,未来还需通过更多的实验验证lncRNA RP11-499E18.1参与卵巢癌发生和发展的具体机制,并探究其作为卵巢癌生物标志物及治疗靶点的潜在应用价值。
综上所述,本研究发现lncRNA RP11-499E18.1是一种潜在的卵巢癌生物标志物及抑制因子,可抑制卵巢癌细胞增殖、迁移和EMT,同时lncRNA RP11-499E18.1低表达与卵巢癌的不良预后相关。
湖南省自然科学基金(2021JJ40322)
湖南省科技创新计划项目(2020SK51102┫。This work was supported by the Natural Science Foundation of Hunan Province ┣2021JJ40322)
the Science and Technology Innovation Plan Project of Hunan Province(2020SK51102)