白藜芦醇改善多囊卵巢综合征模型大鼠卵巢颗粒细胞线粒体功能和抑制凋亡的作用

胡俊 ,  马智 ,  张洪英 ,  王炼炼

重庆医科大学学报 ›› 2024, Vol. 49 ›› Issue (03) : 264 -269.

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重庆医科大学学报 ›› 2024, Vol. 49 ›› Issue (03) : 264 -269. DOI: 10.13406/j.cnki.cyxb.003441
基础研究

白藜芦醇改善多囊卵巢综合征模型大鼠卵巢颗粒细胞线粒体功能和抑制凋亡的作用

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Effects of resveratrol on improving mitochondrial function and inhibiting cell apoptosis in ovarian granulosa cells in a rat model of polycystic ovary syndrome

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摘要

目的 观察白藜芦醇对多囊卵巢综合征(polycystic ovary syndrome,PCOS)模型大鼠卵巢颗粒细胞增殖和凋亡的影响以及线粒体的形态和功能的改变,并探讨其可能的保护机制。 方法 32只雌性SD大鼠幼鼠随机分为2组,PCOS模型组(n=24)和模型对照组(n=8)。成功提取PCOS组颗粒细胞并体外培养,然后用不同浓度的白藜芦醇处理颗粒细胞,CCK-8法检测细胞活力的变化;Mito Tracker Deep Red染色观察细胞线粒体的形态变化;JC-1检测线粒体膜电位的变化;ATP检测试剂盒检测ATP的变化;分光光度计检测与凋亡密切相关casppase-3和caspase-9酶活性变化;最后,蛋白免疫印迹法检测颗粒细胞内caspase-3和caspase-9蛋白水平的变化。 结果 白藜芦醇处理PCOS模型大鼠卵巢颗粒细胞后,颗粒细胞的增殖活性明显增强(P=0.000);Mito Tracker Deep Read染色结果显示线粒体质量明显增加,形状呈管状或长条状;颗粒细胞内ATP产量和线粒体膜电位也明显增加(P=0.000、P=0.000)。另外,白藜芦醇也降低了caspase-3和caspase-9酶活性和蛋白水平的表达(P=0.000、P=0.000)。 结论 白藜芦醇抑制了PCOS模型大鼠卵巢颗粒细胞的凋亡,也促进了细胞的增殖,其机制与白藜芦醇改善颗粒细胞线粒体的形态和功能有关。

Abstract

Objective To observe the effects of resveratrol on the proliferation and apoptosis of ovarian granulosa cells(OGCs) and the changes in the morphology and function of mitochondria in a rat model of polycystic ovary syndrome(PCOS), and explore its possible protective mechanism. Methods Thirty-two young female Sprague-Dawley rats were randomly divided into two groups:polycystic ovary syndrome model group(n=24) and model control group(n=8). Granulosa cells were extracted from the PCOS group and cultured in vitro,and treated with different concentrations of resveratrol. CCK-8 assay was used to measure the changes in cell activity; Mito Tracker Deep Red staining was used to observe the morphological changes in cell mitochondria;JC-1 was used to measure the changes in mitochondrial membrane potential;ATP kits were used to determine the changes in ATP content;spectrophotometry was used to measure the changes in enzymatic activity of caspase-3 and caspase-9,which are closely associated with apoptosis;finally,Western blot was used to measure the changes in the levels of caspase-3 and caspase-9 proteins. Results After treatment with resveratrol, the OGCs in the rat model of PCOS showed a significant increase in proliferation activity(P=0.000). Mito Tracker Deep Red staining showed a significant increase in mitochondrial mass, with tubular or elongated shapes observed. ATP production and mitochondrial membrane potential in granulosa cells also significantly increased(both P=0.000). In addition, resveratrol reduced the enzymatic activity and protein expression of caspase-3 and caspase-9(both P=0.000). Conclusion Resveratrol inhibits the apoptosis of OGCs and promotes cell proliferation in the rat model of PCOS,which is associated with the improvement of mitochondrial morphology and function of granulosa cells by resveratrol.

Graphical abstract

关键词

白藜芦醇 / 颗粒细胞 / 线粒体 / 凋亡

Key words

resveratrol / granular cell / mitochondrion / apoptosis

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胡俊,马智,张洪英,王炼炼. 白藜芦醇改善多囊卵巢综合征模型大鼠卵巢颗粒细胞线粒体功能和抑制凋亡的作用[J]. 重庆医科大学学报, 2024, 49(03): 264-269 DOI:10.13406/j.cnki.cyxb.003441

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多囊卵巢综合征(polycystic ovary syndrome,PCOS)是育龄期妇女最常见的内分泌疾病之一,影响着该人群中大约10%~15%的妇女[1]。PCOS具有明显的2个特征:雄激素过量和排卵功能障碍;而临床上则表现为高雄激素血症、月经不调等[2]。在形态学上,PCOS多表现为卵巢呈多囊,也可见幼稚卵泡、多发性的囊泡囊肿等[3]。大多数PCOS患者多伴有肥胖和胰岛素抵抗,同时还增加了其他多种共病的风险,如2型糖尿病[4]、心血管疾病[5]和晚期子宫内膜癌[6]等。PCOS发病机制尚不清楚,遗传和表观遗传因素,各种环境风险因素,如不健康的饮食和不良的生活习惯,这些都可能导致PCOS[7]
线粒体是非常重要的双层膜、动态的、半自主性细胞器,由外膜、膜间隙和内膜组成。线粒体通过融合和分裂两种方式维持其结构完整性,以发挥其生物学功能。线粒体是体内的“能量工厂”,可通过氧化磷酸化产生ATP,以提供生命活动所需能量;线粒体还参与体内的细胞增殖凋亡、自噬、氧化应激等多种生理活动。因此,线粒体正常的结构和功能对维持机体的多种生命活动至关重要[8]。大量证据表明,线粒体功能障碍与PCOS的病理生理过程有着重要的密切的联系,如线粒体基因组异常、能量失衡、氧化应激、钙稳态失衡、动力学异常、生物合成减少等[9-10]。因此,改善线粒体功能障碍将会对未来治疗PCOS有重要意义。
天然多酚类化合物白藜芦醇(3,4,5-三羟基-反式二苯乙烯,resveratrol,Res)作为一种减少肥胖和相关代谢障碍的治疗策略,引起了人们的极大兴趣。白藜芦醇主要存在于膳食植物中,包括虎杖、花生和葡萄皮的根等。Res具有多种药理作用,包括抗炎、抗氧化、抗肿瘤和增加胰岛素敏感性等[11-12]。临床和动物研究表明,白藜芦醇可以改善代谢功能障碍引起的月经异常、痤疮、脱发以及PCOS中的高雄激素血症[13];此外,Res对卵泡发育也有积极影响,如闭锁卵泡数量减少,卵巢卵泡储备增加,卵巢寿命延长[14-15]。然而,Res对PCOS卵巢颗粒细胞的线粒体形态和功能有何影响却鲜有报道。为此,本研究通过构建PCOS大鼠模型,分离得到卵巢颗粒细胞,并给予Res处理,观察Res对颗粒细胞线粒体形态和功能的影响,并探讨其发挥作用的机制,为治疗PCOS提供新的思路和理论依据。

1 材料与方法

1.1 材料

1.1.1 动物

20日龄雌性SD大鼠32只,体质量约50 g,由重庆医科大学实验动物研究中心提供,合格证号:SCXK(渝)2016-0001。所有大鼠均置于SPF级代养室饲养,每笼4只,温度保持为(24±1) ℃,12 h光照昼夜循环,给予常规鼠粮和水,术前12 h禁食。

1.1.2 主要试剂

高糖F-12培养液、胎牛血清、青霉素/链霉素、二甲基亚砜、SDS-PAGE试剂盒、线粒体膜电位检测试剂盒JC-1等购自北京博奥森生物技术有限公司;白藜芦醇购自Sigma公司;BCA蛋白浓度检测试剂盒、ATP检测试剂盒等购自碧云天生物技术研究所;CCK-8试剂盒、caspase-3和caspase-9酶活性检测试剂盒购自凯基公司;抗体caspase-3、caspase-9和内参β-actin购自博士德生物公司。聚偏二氟乙烯(polyvinylidene fluoride,PVDF)膜和电化学发光(electro-chemi-luminescence,ECL)试剂盒购自美国Bio-rad公司;Mito Tracker Deep Red购自碧云天生物技术研究所。

1.2 方法

1.2.1 Res溶液配置和处理

称取100 mg Res,以DMSO溶解,并加入三蒸水使其浓度为1.0 mmol/L,过滤后-20 ℃保存。药物处理时,将Res母液分别加入4 mL培养液中,使得白藜芦醇的工作液浓度分别为10、20、40 μmol/L。

1.2.2 动物模型的建立

PCOS模型鼠(n=24)的建立采用本课题组一直采用的方法,如下:大鼠麻醉后,于颈背部皮下注射脱0.2 mL芝麻油剂和氢表雄酮6 mg/100(g·d),然后在腹部皮下注射诺和N 2 IU/d。模型对照组(n=8)直接采取背部皮下注射注射0.2 mL芝麻油,均连续注射35 d后停药[16]

1.2.3 卵巢颗粒细胞的收集和培养

PCOS大鼠模型成功建立后处死SD大鼠,取出卵巢并小心剥离其周围的脂肪组织等,生理盐水、PBS缓冲液冲洗后剥离囊状卵泡;再次冲洗,刺破卵泡,释放卵巢颗粒细胞;用200目细胞筛将卵泡膜滤出,1 500 r/min×5 min,弃上清;再次1 500 r/min×5 min,弃上清后用含有1%青霉素/链霉素和10%FBS的DMEM/F12培养基悬浮细胞,并均匀接种于培养瓶中,置入37 ℃、5%CO2培养箱中培养。卵巢颗粒细胞的鉴定用免疫细胞化学法[17]

1.2.4 CCK-8

将颗粒细胞按每孔5 000个细胞接种于96孔板中,置37 ℃、5%CO2培养箱中培养,用不同浓度(5、10、20、40、80 μmol/L)Res处理该细胞,作用48 h,并设空白对照组和溶剂对照组即DMSO组(浓度为0.1%),每组设5个复孔。每孔加入20 μL的CCK-8溶液,继续培养1 h,用酶标仪上检测其450 nm处的吸光度(absorbance,A)值,并按下列公式计算白藜芦醇对颗粒细胞的增殖率的影响:颗粒细胞增殖率(%)=(实验组吸收值A450 nm-空白对照吸收值A450 nm)/(对照组吸收值A450 nm-空白对照吸收值A450 nm)×100%。

1.2.5 线粒体膜电位检测

采用流式细胞法。将颗粒细胞接种于24孔板中,密度为5×105个/孔。分别给予溶剂DMSO和5、20、40 μmol/L的Res处理。收集每组细胞悬液至无菌EP管中;离心400 g×5 min,洗掉上清;用0.5 mL JC-1工作液悬浮细胞,于37 ℃、5%CO2培养箱孵育15~30 min;离心400 g×5 min,洗掉上清;用2 mL细胞培养液重悬细胞,离心400 g×5 min,吸掉上清;再次用2 mL细胞培养液重悬细胞,离心400 g×5 min,吸掉上清;用0.5 mL新鲜培养液重悬细胞,即可进行后续的流式分析。

1.2.6 Mito Tracker Deep Red染色-线粒体红色荧光探针

分组同上:为溶剂DMSO对照组和5、20、40 μmol/L Res处理组。配置Mito Tracker Deep Red储存液工作液,并避光保存。将贴壁的颗粒细胞接种于培养板中,RES处理后加入Mito Tracker Deep Red工作液,37 ℃孵育15~30 min;去除Mito Tracker Deep Red工作液,加入37 ℃预温育的新鲜细胞培养液;然后用激光共聚焦显微镜进行观察。

1.2.7 ATP含量检测

分组同上:溶剂DMSO对照组和5、20、40 μmol/L Res处理组。采用ATP检测试剂盒,简单步骤如下:准备试剂、样品和制备标准品;分别设空白孔、标准孔、待测样品孔。在酶标包被板上加样标准品50 mL,待测样品孔中加样品稀释液40 mL和待测样品10 mL(样品最终稀释度为5倍)轻轻晃动混匀;温育:用封板膜封板后置37 ℃温育30 min;洗涤:小心揭掉封板膜,弃去液体,甩干,每孔加满洗涤液,静置30 s后弃去,如此重复5次,拍干;加酶:每孔加入酶标试剂50 mL,空白孔除外;再次孵育和洗涤后显色:每孔先加入显色剂A 50 mL,再加入显色剂B 50 mL,轻轻震荡混匀,37 ℃避光显色15 min;终止:每孔加终止液50 mL,终止反应并进行测定(450 nm波长依序测量各孔的A值)。

1.2.8 Caspase3和 caspase9的活性检测

分组同上,为溶剂DMSO对照组和5、20、40 μmol/L Res处理组。收集Res处理后的各组颗粒细胞后,用PBS洗涤细胞2次(离心2 000 r/min,5 min),收集(3~5)×106个细胞;在沉淀的细胞中加入200 µL冰冷Lysis Buffer吹打均匀;置冰上裂解20 min,涡旋振荡4次,每次10 s;4 ℃,离心10 000 r/min×1 min;小心吸取上清,转移至新的管中,并放置冰上待用;测定其中的蛋白浓度;吸取 50 µL含100~200 µg蛋白的细胞样品加入50 µL的2×Reaction Buffer,再加入5 µL Caspase-3 Substrate,充分混匀后于37 ℃避光孵育4 h;酶标仪在λ=405 nm测定其A值。通过计算ARes/A对照的倍数来确定其活性的大小变化。Caspase-9方法同caspase-3。

1.2.9 Western blot

收集各组颗粒细胞,加入1 mL蛋白裂解液,充分裂解后于4 ℃,13 000 r/min×15 min离心后,用Bradford法测定每组蛋白样品浓度并分装保存。配置8%~10%的Page胶,上样40 μg经SDS-PAGE电泳,将蛋白电转至PVDF膜上,用5%脱脂奶粉室温封闭2 h,然后置入TBST稀释的抗体caspase-3、caspase-9和β-actin,4 ℃孵育过夜;充分洗涤后加入1∶5 000的HRP标记的羊抗兔二抗,室温孵育2 h,最后用ECL发光试剂盒行曝光显影,经Bio-rad Chemical Dox XRS凝胶成像系统进行条带的分析。

1.3 统计学方法

应用SPSS 19.0软件进行统计学分析,所有计量资料均采用均值±标准差(x¯±s)表示。多组间均数比较采用单因素方差分析,两两比较采用SNK-q。检验水准α=0.05。

2 结果

2.1 Res促进卵巢颗粒细胞的增殖

Res促进卵巢颗粒细胞的增殖实验中,空白对照组、溶剂DMSO组和5、10、20、40、80 μmol/L的Res处理的颗粒细胞的增殖率分别为:42.3±1.06、41.2±1.40、45.5±1.35、61.2±1.92、71.9±1.81、81.5±0.737和82.5±1.70,7组比较差异有统计学意义(F=449.368,P=0.000)。进一步两两比较:与空白对照组和DMSO处理组比较,5 μmol/L Res处理颗粒细胞48 h后,颗粒细胞的增殖率差异无统计学意义(P=0.068、P=0.063),空白对照组和DMSO处理组比较颗粒细胞的增殖率差异无统计学意义(P=0.394),40和80 μmol/L比较组颗粒细胞的增殖率差异无统计学(P=0.438),其余各比较组两两比较差异均有统计学意义(P<0.05)(图1)。

2.2 Res维持了卵巢颗粒细胞线粒体质量

为了更好地表征线粒体的存在,本研究利用Mito Tracker Deep Red染色通过共聚焦显微镜分析了它们的形态和质量的变化。如图2所示,在PCOS卵巢颗粒细胞DMSO处理后发现,线粒体的质量明显减少,呈现小的碎片状;5 μmol/L Res处理后,线粒体的质量变化无明显改变;当Res浓度增加至20 μmol/L和40 μmol/L后,线粒体的质量明显增加,呈现出管状或长条状。

2.3 Res增加了卵巢颗粒细胞内ATP的生成

溶剂DMSO组和5、20、40 μmol/L 的ATP含量分别为:1.170±0.080、1.240±0.0917、2.233±0.1210、3.243±0.050,4组比较差异有统计学意义(F=358.325,P=0.000)。进一步两两比较:与DMSO处理组比较,当Res浓度为5 μmol/L时,卵巢颗粒细胞内产生的ATP含量无显著增加,无统计学意义(P=0.366);当浓度增加至20 μmol/L和40 μmol/L时,颗粒细胞产生的ATP明显增加,差异具有统计学意义(P=0.000和P=0.000);与20 μmol/L比较,40 μmol/L的颗粒细胞产生的ATP明显增加,差异具有统计学意义(P=0.000)(图3)。

2.4 Res提升了卵巢颗粒细胞线粒体膜电位

阳离子脂质荧光染料JC-1是检测线粒体跨膜电位指示剂,有单体和多聚体2种形式。前者在流式细胞仪中绿色(FL-1)通道检测出绿色荧光;而后者多聚体在FL-2通道检测出现红色荧光。当线粒体膜电位降低时,线粒体膜电位被去极化,JC-1从线粒体内释放,红光强度减弱,主要以单体的形式存在于胞质内发绿色荧光。因此,根椐这一特征检测线粒体膜电位的变化,以显示细胞的凋亡水平变化。溶剂DMSO组和5、20、40 μmol/L的膜电位分别为:12.050 30±0.187 35、13.928 70±0.951 42、29.233 30±0.545 01、60.980 00±2.920 09,4组比较差异有统计学意义(F=623.988,P=0.000)。进一步两两比较:与DMSO处理组比较,当Res浓度为5 μmol/L时,颗粒细胞的膜电位没有明显改变,无统计学意义(P=0.179);当浓度增加至20 μmol/L和40 μmol/L时,颗粒细胞的膜电位明显增加,差异具有统计学意义(P=0.000和P=0.000);与20 μmol/L比较,40 μmol/L的颗粒细胞膜电位显著增加,差异具有统计学意义(P=0.000)(图4n=3)。

2.5 Res降低了PCOS卵巢颗粒细胞内caspase-3和caspase-9的酶活性和蛋白的表达

图5,溶剂DMSO组和5、20、40 μmol/L的caspase-3酶活性和caspase-9酶活性的相对值分别为:5.633 30±0.285 37、5.656 70±0.292 80、3.267±0.16010、2.803 30±0.148 15及4.593 30±0.092 92、4.486 70±0.100 17、3.656 70±0.075 72、2.523 30±0.041 63,4组比较差异有统计学意义(F1=120.383,P1=0.000;F2=420.981,P2=0.000)。进一步两两比较:与DMSO处理组比较,当Res浓度为5 μmol/L时,卵巢颗粒细胞的caspase-3酶活性和caspase-9酶活性没有明显改变,差异无统计学意义(P1=0.907、P2=0.145);当浓度增加至20 μmol/L和40 μmol/L时,颗粒细胞的凋亡明显抑制,差异具有统计学意义(P1=0.000、P2=0.000);与20 μmol/L比较,40 μmol/L的颗粒细胞凋亡率明显减少,差异具有统计学意义(P1=0.000、P2=0.027)。

图6,溶剂DMSO组和5、20、40 μmol/L的caspase-3和caspase-9蛋白表达的相对值分别为:0.911 670±0.015 500、0.917 330±0.012 633、0.557 670±0.011 015、0.298 330±0.017 243及0.852 330±0.009 609、0.814 000±0.014 107、0.289 670±0.010 017、0.206 670±0.013 204,4组比较差异有统计学意义(F1=1 319.732,P1=0.000;F2=2 448.086,P2=0.000)。进一步两两比较:与DMSO处理组比较,当Res浓度为5 μmol/L时,卵巢颗粒细胞的caspase-3和caspase-9蛋白表达没有明显改变,无统计学意义(P1=0.641、P2=0.704);当浓度增加至20 μmol/L和40 μmol/L时,颗粒细胞的蛋白表达明显抑制,具有统计学意义(P1=0.000、P2=0.000);与20 μmol/L比较,40 μmol/L的颗粒细胞凋亡率明显减少,差异具有统计学意义(P1=0.000、P2=0.000)。

3 讨论

卵泡发育障碍既是PCOS重要的临床特征之一,也是PCOS主要的病理学改变。卵泡发育障碍多变现为多囊状态,卵巢皮质增厚、黄体化内鞘、基质增生、多发小囊泡以及多发未成熟的卵泡[18]。卵泡主要由卵母细胞、颗粒细胞和卵泡膜细胞组成,其中,颗粒细胞是围绕在卵母细胞周围的一类体细胞,它与膜细胞相互作用是卵泡发育和维持正常功能的重要条件。颗粒细胞的生长和发育,功能和数量的变化都直接影响着卵母细胞的发育、排卵、受精以及胚胎着床等过程,是卵泡发育的重要标志。目前,在生殖医学中评估卵母细胞质量以及发育动力学相关的信息量有限,加之获取方式的局限性,而颗粒细胞的获取相对容易,且对卵泡发育有着重要意义,因此评估颗粒细胞的形态和功能就显得尤其重要。

线粒体是重要的细胞器之一,是物质代谢和能量代谢的重要场所。线粒体富含于颗粒细胞中,它的数量、形态和功能不仅直接影响着颗粒细胞的生长、分化、代谢、细胞周期以及信号转导等过程,还影响着卵母细胞和胚胎的质量。线粒体一旦发生异常可影响正常的颗粒细胞的功能,甚至导致颗粒细胞凋亡或死亡。研究已发现,在PCOS模型中,颗粒细胞内出现了明显的线粒体嵴肿胀、消失、膜破裂和空泡等变化,甚至还出现线粒体分裂与融合动态失衡等。本实验中,通过注射氢表雄酮和诺和N构建了PCOS的大鼠模型,并成功获取了颗粒细胞,发现颗粒细胞中存在着大量线粒体损伤的表现:Mito Tracker Deep Red染色后线粒体数量变少,质量较小,且呈碎片状;膜电位下降,发生去极化;颗粒细胞中ATP的生成量也下降,颗粒细胞的增殖率也降低。线粒体数量变少、质量减小以及呈碎片状是由于PCOS造成了线粒体从正常的豆状变成球状,并出现线粒体嵴的断裂、消失,甚至线粒体损失等;ATP生成量下降是由于线粒体的数量和形态的改变必然导致功能的改变,而能量代谢是线粒体的重要功能,ATP又是最重要能量形式,是生物体内最直接的能量来源,因此ATP生成必然下降。另外,线粒体是调控凋亡的重要场所,线粒体介导的细胞凋亡途径也是真核细胞凋亡的重要途径。一旦细胞线粒体受到损伤,其功能就会发生异常,比如引起氧化呼吸链的改变和活性氧等异常,进而引起氧化应激等导致凋亡的发生,表现为膜电位下降,与凋亡密切相关的caspase-3和caspase-9的酶活性和蛋白表达水平都处于高水平状态。当大量颗粒细胞发生凋亡后,其增殖也可能受到影响。

研究表明,多数植物提取物对PCOS动物模型都有较明显的治疗效果,如姜黄素[19]、EGCG[20]等,这些化合物大多具有多机制、多靶点、低毒副作用,因此吸引了生殖医学临床医生的目光。Res也是一种天然的多酚类植物化合物,也可通过多靶点、多通路地发挥其广泛的药理作用[21-22]。大量研究证实,Res可通过调节线粒体功能而发挥其抗肿瘤[23]、抗免疫应激[24]、抗急性损伤[25]等功能,但对PCOS的颗粒细胞的线粒体是否也具有保护功能却报道甚少。本研究结果表明,Res作用于PCOS大鼠模型颗粒细胞后,颗粒细胞的增殖率明显提升,且呈浓度依赖性。结果还表明,Res对颗粒细胞中线粒体的形态和功能都有明显的改善作用:Mito Tracker Deep Red染色后发现线粒体的数量增加,质量增加,其形态也从碎片状恢复至条状或管状;随着形态和数量的恢复,线粒体的功能也有显著改善,颗粒细胞内产生的ATP量增多,线粒体介导的凋亡水平也受到了抑制,表现为线粒体去极化也逐渐减弱,膜电位得到提高,caspase-3和caspase-9的酶活性和蛋白表达水平都明显降低。这说明Res可抑制PCOS模型颗粒细胞线粒体损伤诱导的细胞的凋亡。

综上所述,Res可通过改善PCOS卵巢颗粒细胞中线粒体的形态和功能,抑制线粒体损伤所诱导的凋亡,同时也促进颗粒细胞的增殖,从而发挥其保护作用,这对深入探讨Res在PCOS中发挥保护作用的机制具有重要的意义,但仍需要进一步研究。

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