多囊卵巢综合征(polycystic ovary syndrome,PCOS)是育龄期妇女最常见的内分泌疾病之一,影响着该人群中大约10%~15%的妇女
[1]。PCOS具有明显的2个特征:雄激素过量和排卵功能障碍;而临床上则表现为高雄激素血症、月经不调等
[2]。在形态学上,PCOS多表现为卵巢呈多囊,也可见幼稚卵泡、多发性的囊泡囊肿等
[3]。大多数PCOS患者多伴有肥胖和胰岛素抵抗,同时还增加了其他多种共病的风险,如2型糖尿病
[4]、心血管疾病
[5]和晚期子宫内膜癌
[6]等。PCOS发病机制尚不清楚,遗传和表观遗传因素,各种环境风险因素,如不健康的饮食和不良的生活习惯,这些都可能导致PCOS
[7]。
线粒体是非常重要的双层膜、动态的、半自主性细胞器,由外膜、膜间隙和内膜组成。线粒体通过融合和分裂两种方式维持其结构完整性,以发挥其生物学功能。线粒体是体内的“能量工厂”,可通过氧化磷酸化产生ATP,以提供生命活动所需能量;线粒体还参与体内的细胞增殖凋亡、自噬、氧化应激等多种生理活动。因此,线粒体正常的结构和功能对维持机体的多种生命活动至关重要
[8]。大量证据表明,线粒体功能障碍与PCOS的病理生理过程有着重要的密切的联系,如线粒体基因组异常、能量失衡、氧化应激、钙稳态失衡、动力学异常、生物合成减少等
[9-10]。因此,改善线粒体功能障碍将会对未来治疗PCOS有重要意义。
天然多酚类化合物白藜芦醇(3,4,5-三羟基-反式二苯乙烯,resveratrol,Res)作为一种减少肥胖和相关代谢障碍的治疗策略,引起了人们的极大兴趣。白藜芦醇主要存在于膳食植物中,包括虎杖、花生和葡萄皮的根等。Res具有多种药理作用,包括抗炎、抗氧化、抗肿瘤和增加胰岛素敏感性等
[11-12]。临床和动物研究表明,白藜芦醇可以改善代谢功能障碍引起的月经异常、痤疮、脱发以及PCOS中的高雄激素血症
[13];此外,Res对卵泡发育也有积极影响,如闭锁卵泡数量减少,卵巢卵泡储备增加,卵巢寿命延长
[14-15]。然而,Res对PCOS卵巢颗粒细胞的线粒体形态和功能有何影响却鲜有报道。为此,本研究通过构建PCOS大鼠模型,分离得到卵巢颗粒细胞,并给予Res处理,观察Res对颗粒细胞线粒体形态和功能的影响,并探讨其发挥作用的机制,为治疗PCOS提供新的思路和理论依据。
1 材料与方法
1.1 材料
1.1.1 动物
20日龄雌性SD大鼠32只,体质量约50 g,由重庆医科大学实验动物研究中心提供,合格证号:SCXK(渝)2016-0001。所有大鼠均置于SPF级代养室饲养,每笼4只,温度保持为(24±1) ℃,12 h光照昼夜循环,给予常规鼠粮和水,术前12 h禁食。
1.1.2 主要试剂
高糖F-12培养液、胎牛血清、青霉素/链霉素、二甲基亚砜、SDS-PAGE试剂盒、线粒体膜电位检测试剂盒JC-1等购自北京博奥森生物技术有限公司;白藜芦醇购自Sigma公司;BCA蛋白浓度检测试剂盒、ATP检测试剂盒等购自碧云天生物技术研究所;CCK-8试剂盒、caspase-3和caspase-9酶活性检测试剂盒购自凯基公司;抗体caspase-3、caspase-9和内参β-actin购自博士德生物公司。聚偏二氟乙烯(polyvinylidene fluoride,PVDF)膜和电化学发光(electro-chemi-luminescence,ECL)试剂盒购自美国Bio-rad公司;Mito Tracker Deep Red购自碧云天生物技术研究所。
1.2 方法
1.2.1 Res溶液配置和处理
称取100 mg Res,以DMSO溶解,并加入三蒸水使其浓度为1.0 mmol/L,过滤后-20 ℃保存。药物处理时,将Res母液分别加入4 mL培养液中,使得白藜芦醇的工作液浓度分别为10、20、40 μmol/L。
1.2.2 动物模型的建立
PCOS模型鼠(
n=24)的建立采用本课题组一直采用的方法,如下:大鼠麻醉后,于颈背部皮下注射脱0.2 mL芝麻油剂和氢表雄酮6 mg/100(g·d),然后在腹部皮下注射诺和N 2 IU/d。模型对照组(
n=8)直接采取背部皮下注射注射0.2 mL芝麻油,均连续注射35 d后停药
[16]。
1.2.3 卵巢颗粒细胞的收集和培养
PCOS大鼠模型成功建立后处死SD大鼠,取出卵巢并小心剥离其周围的脂肪组织等,生理盐水、PBS缓冲液冲洗后剥离囊状卵泡;再次冲洗,刺破卵泡,释放卵巢颗粒细胞;用200目细胞筛将卵泡膜滤出,1 500 r/min×5 min,弃上清;再次1 500 r/min×5 min,弃上清后用含有1%青霉素/链霉素和10%FBS的DMEM/F12培养基悬浮细胞,并均匀接种于培养瓶中,置入37 ℃、5%CO
2培养箱中培养。卵巢颗粒细胞的鉴定用免疫细胞化学法
[17]。
1.2.4 CCK-8
将颗粒细胞按每孔5 000个细胞接种于96孔板中,置37 ℃、5%CO2培养箱中培养,用不同浓度(5、10、20、40、80 μmol/L)Res处理该细胞,作用48 h,并设空白对照组和溶剂对照组即DMSO组(浓度为0.1%),每组设5个复孔。每孔加入20 μL的CCK-8溶液,继续培养1 h,用酶标仪上检测其450 nm处的吸光度(absorbance,A)值,并按下列公式计算白藜芦醇对颗粒细胞的增殖率的影响:颗粒细胞增殖率(%)=(实验组吸收值A450 nm-空白对照吸收值A450 nm)/(对照组吸收值A450 nm-空白对照吸收值A450 nm)×100%。
1.2.5 线粒体膜电位检测
采用流式细胞法。将颗粒细胞接种于24孔板中,密度为5×105个/孔。分别给予溶剂DMSO和5、20、40 μmol/L的Res处理。收集每组细胞悬液至无菌EP管中;离心400 g×5 min,洗掉上清;用0.5 mL JC-1工作液悬浮细胞,于37 ℃、5%CO2培养箱孵育15~30 min;离心400 g×5 min,洗掉上清;用2 mL细胞培养液重悬细胞,离心400 g×5 min,吸掉上清;再次用2 mL细胞培养液重悬细胞,离心400 g×5 min,吸掉上清;用0.5 mL新鲜培养液重悬细胞,即可进行后续的流式分析。
1.2.6 Mito Tracker Deep Red染色-线粒体红色荧光探针
分组同上:为溶剂DMSO对照组和5、20、40 μmol/L Res处理组。配置Mito Tracker Deep Red储存液工作液,并避光保存。将贴壁的颗粒细胞接种于培养板中,RES处理后加入Mito Tracker Deep Red工作液,37 ℃孵育15~30 min;去除Mito Tracker Deep Red工作液,加入37 ℃预温育的新鲜细胞培养液;然后用激光共聚焦显微镜进行观察。
1.2.7 ATP含量检测
分组同上:溶剂DMSO对照组和5、20、40 μmol/L Res处理组。采用ATP检测试剂盒,简单步骤如下:准备试剂、样品和制备标准品;分别设空白孔、标准孔、待测样品孔。在酶标包被板上加样标准品50 mL,待测样品孔中加样品稀释液40 mL和待测样品10 mL(样品最终稀释度为5倍)轻轻晃动混匀;温育:用封板膜封板后置37 ℃温育30 min;洗涤:小心揭掉封板膜,弃去液体,甩干,每孔加满洗涤液,静置30 s后弃去,如此重复5次,拍干;加酶:每孔加入酶标试剂50 mL,空白孔除外;再次孵育和洗涤后显色:每孔先加入显色剂A 50 mL,再加入显色剂B 50 mL,轻轻震荡混匀,37 ℃避光显色15 min;终止:每孔加终止液50 mL,终止反应并进行测定(450 nm波长依序测量各孔的A值)。
1.2.8 Caspase3和 caspase9的活性检测
分组同上,为溶剂DMSO对照组和5、20、40 μmol/L Res处理组。收集Res处理后的各组颗粒细胞后,用PBS洗涤细胞2次(离心2 000 r/min,5 min),收集(3~5)×106个细胞;在沉淀的细胞中加入200 µL冰冷Lysis Buffer吹打均匀;置冰上裂解20 min,涡旋振荡4次,每次10 s;4 ℃,离心10 000 r/min×1 min;小心吸取上清,转移至新的管中,并放置冰上待用;测定其中的蛋白浓度;吸取 50 µL含100~200 µg蛋白的细胞样品加入50 µL的2×Reaction Buffer,再加入5 µL Caspase-3 Substrate,充分混匀后于37 ℃避光孵育4 h;酶标仪在λ=405 nm测定其A值。通过计算ARes/A对照的倍数来确定其活性的大小变化。Caspase-9方法同caspase-3。
1.2.9 Western blot
收集各组颗粒细胞,加入1 mL蛋白裂解液,充分裂解后于4 ℃,13 000 r/min×15 min离心后,用Bradford法测定每组蛋白样品浓度并分装保存。配置8%~10%的Page胶,上样40 μg经SDS-PAGE电泳,将蛋白电转至PVDF膜上,用5%脱脂奶粉室温封闭2 h,然后置入TBST稀释的抗体caspase-3、caspase-9和β-actin,4 ℃孵育过夜;充分洗涤后加入1∶5 000的HRP标记的羊抗兔二抗,室温孵育2 h,最后用ECL发光试剂盒行曝光显影,经Bio-rad Chemical Dox XRS凝胶成像系统进行条带的分析。
1.3 统计学方法
应用SPSS 19.0软件进行统计学分析,所有计量资料均采用均值±标准差()表示。多组间均数比较采用单因素方差分析,两两比较采用SNK-q。检验水准α=0.05。
2 结果
2.1 Res促进卵巢颗粒细胞的增殖
Res促进卵巢颗粒细胞的增殖实验中,空白对照组、溶剂DMSO组和5、10、20、40、80 μmol/L的Res处理的颗粒细胞的增殖率分别为:42.3±1.06、41.2±1.40、45.5±1.35、61.2±1.92、71.9±1.81、81.5±0.737和82.5±1.70,7组比较差异有统计学意义(
F=449.368,
P=0.000)。进一步两两比较:与空白对照组和DMSO处理组比较,5 μmol/L Res处理颗粒细胞48 h后,颗粒细胞的增殖率差异无统计学意义(
P=0.068、
P=0.063),空白对照组和DMSO处理组比较颗粒细胞的增殖率差异无统计学意义(
P=0.394),40和80 μmol/L比较组颗粒细胞的增殖率差异无统计学(
P=0.438),其余各比较组两两比较差异均有统计学意义(
P<0.05)(
图1)。
2.2 Res维持了卵巢颗粒细胞线粒体质量
为了更好地表征线粒体的存在,本研究利用Mito Tracker Deep Red染色通过共聚焦显微镜分析了它们的形态和质量的变化。如
图2所示,在PCOS卵巢颗粒细胞DMSO处理后发现,线粒体的质量明显减少,呈现小的碎片状;5 μmol/L Res处理后,线粒体的质量变化无明显改变;当Res浓度增加至20 μmol/L和40 μmol/L后,线粒体的质量明显增加,呈现出管状或长条状。
2.3 Res增加了卵巢颗粒细胞内ATP的生成
溶剂DMSO组和5、20、40 μmol/L 的ATP含量分别为:1.170±0.080、1.240±0.0917、2.233±0.1210、3.243±0.050,4组比较差异有统计学意义(
F=358.325,
P=0.000)。进一步两两比较:与DMSO处理组比较,当Res浓度为5 μmol/L时,卵巢颗粒细胞内产生的ATP含量无显著增加,无统计学意义(
P=0.366);当浓度增加至20 μmol/L和40 μmol/L时,颗粒细胞产生的ATP明显增加,差异具有统计学意义(
P=0.000和
P=0.000);与20 μmol/L比较,40 μmol/L的颗粒细胞产生的ATP明显增加,差异具有统计学意义(
P=0.000)(
图3)。
2.4 Res提升了卵巢颗粒细胞线粒体膜电位
阳离子脂质荧光染料JC-1是检测线粒体跨膜电位指示剂,有单体和多聚体2种形式。前者在流式细胞仪中绿色(FL-1)通道检测出绿色荧光;而后者多聚体在FL-2通道检测出现红色荧光。当线粒体膜电位降低时,线粒体膜电位被去极化,JC-1从线粒体内释放,红光强度减弱,主要以单体的形式存在于胞质内发绿色荧光。因此,根椐这一特征检测线粒体膜电位的变化,以显示细胞的凋亡水平变化。溶剂DMSO组和5、20、40 μmol/L的膜电位分别为:12.050 30±0.187 35、13.928 70±0.951 42、29.233 30±0.545 01、60.980 00±2.920 09,4组比较差异有统计学意义(
F=623.988,
P=0.000)。进一步两两比较:与DMSO处理组比较,当Res浓度为5 μmol/L时,颗粒细胞的膜电位没有明显改变,无统计学意义(
P=0.179);当浓度增加至20 μmol/L和40 μmol/L时,颗粒细胞的膜电位明显增加,差异具有统计学意义(
P=0.000和
P=0.000);与20 μmol/L比较,40 μmol/L的颗粒细胞膜电位显著增加,差异具有统计学意义(
P=0.000)(
图4,
n=3)。
2.5 Res降低了PCOS卵巢颗粒细胞内caspase-3和caspase-9的酶活性和蛋白的表达
如
图5,溶剂DMSO组和5、20、40 μmol/L的caspase-3酶活性和caspase-9酶活性的相对值分别为:5.633 30±0.285 37、5.656 70±0.292 80、3.267±0.16010、2.803 30±0.148 15及4.593 30±0.092 92、4.486 70±0.100 17、3.656 70±0.075 72、2.523 30±0.041 63,4组比较差异有统计学意义(
F1=120.383,
P1=0.000;
F2=420.981,
P2=0.000)。进一步两两比较:与DMSO处理组比较,当Res浓度为5 μmol/L时,卵巢颗粒细胞的caspase-3酶活性和caspase-9酶活性没有明显改变,差异无统计学意义(
P1=0.907、
P2=0.145);当浓度增加至20 μmol/L和40 μmol/L时,颗粒细胞的凋亡明显抑制,差异具有统计学意义(
P1=0.000、
P2=0.000);与20 μmol/L比较,40 μmol/L的颗粒细胞凋亡率明显减少,差异具有统计学意义(
P1=0.000、
P2=0.027)。
如
图6,溶剂DMSO组和5、20、40 μmol/L的caspase-3和caspase-9蛋白表达的相对值分别为:0.911 670±0.015 500、0.917 330±0.012 633、0.557 670±0.011 015、0.298 330±0.017 243及0.852 330±0.009 609、0.814 000±0.014 107、0.289 670±0.010 017、0.206 670±0.013 204,4组比较差异有统计学意义(
F1=1 319.732,
P1=0.000;
F2=2 448.086,
P2=0.000)。进一步两两比较:与DMSO处理组比较,当Res浓度为5 μmol/L时,卵巢颗粒细胞的caspase-3和caspase-9蛋白表达没有明显改变,无统计学意义(
P1=0.641、
P2=0.704);当浓度增加至20 μmol/L和40 μmol/L时,颗粒细胞的蛋白表达明显抑制,具有统计学意义(
P1=0.000、
P2=0.000);与20 μmol/L比较,40 μmol/L的颗粒细胞凋亡率明显减少,差异具有统计学意义(
P1=0.000、
P2=0.000)。
3 讨论
卵泡发育障碍既是PCOS重要的临床特征之一,也是PCOS主要的病理学改变。卵泡发育障碍多变现为多囊状态,卵巢皮质增厚、黄体化内鞘、基质增生、多发小囊泡以及多发未成熟的卵泡
[18]。卵泡主要由卵母细胞、颗粒细胞和卵泡膜细胞组成,其中,颗粒细胞是围绕在卵母细胞周围的一类体细胞,它与膜细胞相互作用是卵泡发育和维持正常功能的重要条件。颗粒细胞的生长和发育,功能和数量的变化都直接影响着卵母细胞的发育、排卵、受精以及胚胎着床等过程,是卵泡发育的重要标志。目前,在生殖医学中评估卵母细胞质量以及发育动力学相关的信息量有限,加之获取方式的局限性,而颗粒细胞的获取相对容易,且对卵泡发育有着重要意义,因此评估颗粒细胞的形态和功能就显得尤其重要。
线粒体是重要的细胞器之一,是物质代谢和能量代谢的重要场所。线粒体富含于颗粒细胞中,它的数量、形态和功能不仅直接影响着颗粒细胞的生长、分化、代谢、细胞周期以及信号转导等过程,还影响着卵母细胞和胚胎的质量。线粒体一旦发生异常可影响正常的颗粒细胞的功能,甚至导致颗粒细胞凋亡或死亡。研究已发现,在PCOS模型中,颗粒细胞内出现了明显的线粒体嵴肿胀、消失、膜破裂和空泡等变化,甚至还出现线粒体分裂与融合动态失衡等。本实验中,通过注射氢表雄酮和诺和N构建了PCOS的大鼠模型,并成功获取了颗粒细胞,发现颗粒细胞中存在着大量线粒体损伤的表现:Mito Tracker Deep Red染色后线粒体数量变少,质量较小,且呈碎片状;膜电位下降,发生去极化;颗粒细胞中ATP的生成量也下降,颗粒细胞的增殖率也降低。线粒体数量变少、质量减小以及呈碎片状是由于PCOS造成了线粒体从正常的豆状变成球状,并出现线粒体嵴的断裂、消失,甚至线粒体损失等;ATP生成量下降是由于线粒体的数量和形态的改变必然导致功能的改变,而能量代谢是线粒体的重要功能,ATP又是最重要能量形式,是生物体内最直接的能量来源,因此ATP生成必然下降。另外,线粒体是调控凋亡的重要场所,线粒体介导的细胞凋亡途径也是真核细胞凋亡的重要途径。一旦细胞线粒体受到损伤,其功能就会发生异常,比如引起氧化呼吸链的改变和活性氧等异常,进而引起氧化应激等导致凋亡的发生,表现为膜电位下降,与凋亡密切相关的caspase-3和caspase-9的酶活性和蛋白表达水平都处于高水平状态。当大量颗粒细胞发生凋亡后,其增殖也可能受到影响。
研究表明,多数植物提取物对PCOS动物模型都有较明显的治疗效果,如姜黄素
[19]、EGCG
[20]等,这些化合物大多具有多机制、多靶点、低毒副作用,因此吸引了生殖医学临床医生的目光。Res也是一种天然的多酚类植物化合物,也可通过多靶点、多通路地发挥其广泛的药理作用
[21-22]。大量研究证实,Res可通过调节线粒体功能而发挥其抗肿瘤
[23]、抗免疫应激
[24]、抗急性损伤
[25]等功能,但对PCOS的颗粒细胞的线粒体是否也具有保护功能却报道甚少。本研究结果表明,Res作用于PCOS大鼠模型颗粒细胞后,颗粒细胞的增殖率明显提升,且呈浓度依赖性。结果还表明,Res对颗粒细胞中线粒体的形态和功能都有明显的改善作用:Mito Tracker Deep Red染色后发现线粒体的数量增加,质量增加,其形态也从碎片状恢复至条状或管状;随着形态和数量的恢复,线粒体的功能也有显著改善,颗粒细胞内产生的ATP量增多,线粒体介导的凋亡水平也受到了抑制,表现为线粒体去极化也逐渐减弱,膜电位得到提高,caspase-3和caspase-9的酶活性和蛋白表达水平都明显降低。这说明Res可抑制PCOS模型颗粒细胞线粒体损伤诱导的细胞的凋亡。
综上所述,Res可通过改善PCOS卵巢颗粒细胞中线粒体的形态和功能,抑制线粒体损伤所诱导的凋亡,同时也促进颗粒细胞的增殖,从而发挥其保护作用,这对深入探讨Res在PCOS中发挥保护作用的机制具有重要的意义,但仍需要进一步研究。