肝癌是全球最常见的恶性肿瘤之一,死亡率接近发病率
[1]。肝细胞癌(liver hepatocellular carcinoma,LIHC)是最常见的肝癌形式,占90%以上的病例
[2]。LIHC的危险因素多种多样,包括肝炎病毒感染、酒精、非酒精性脂肪肝炎、年龄、性别等因素
[3-5]。目前肝癌治疗靶向药物主要有索拉菲尼、仑伐替尼和瑞戈非尼等
[6],尽管取得了一些进展,但肝癌细胞具有高度迁移性和侵袭性
[7],导致肝癌复发和转移,治疗效果不理想,其机制也尚未明了。因此,深入探讨肝癌发生发展的机制对指导LIHC诊断预后具有重要意义。
腺苷脱氨酶1(adenosine deaminases acting on RNA 1,ADAR1)是一种双链RNA编辑酶
[8-9],催化腺苷(A)的水解脱氨反应,产生肌苷(I)。先前的研究表明,ADAR1的异常表达与LIHC的进展密切相关
[10-12],ADAR1通过编辑细胞周期蛋白依赖性激酶13(cyclin-dependent kinases 13,CDK13)、胶质瘤相关癌基因1(gliomaassociated oncogene 1,GLI1)和抗酶抑制因子(antizyme inhibitor 1,AZIN1)
[13-15]进而促进细胞增殖和肝癌的发生发展。ADAR1具有2种亚型:组成性表达的p110(110 kD)和干扰素诱导表达的p150(150 kD)
[16]。在LIHC临床样本中,ADAR1 p110和p150处于高表达状态,且与患者不良预后相关
[17]。有研究表明,ADAR1 p110通过上调整合素α2(integrinα 2,ITGA2)表达增强肝细胞癌的增殖和侵袭能力
[18],但ADAR1 p150和ADAR1 p110的作用是否相同,在肝癌研究中鲜有报道。本研究基于ADAR1的2个亚型p150和p110展开研究,探究其对肝癌增殖、迁移和侵袭的影响。
1 材料与方法
1.1 组织标本、细胞系及主要试剂
组织标本:人肝癌组织和癌旁组织来源于重庆医科大学附属第一医院,本研究方案通过重庆医科大学医学研究伦理委员会审批同意。
细胞系:人肝癌细胞系Huh7、HepG2均由重庆医科大学基础医学院病原生物学教研室提供。
主要试剂:DMEM和Opti-EME培养基(Gibco);胰酶(多沃生物);胎牛血清(ExCell);鼠尾Ⅰ型胶原(索莱宝);Trizol和LipofectamineTM3000(Invitrogen);DMSO(Sigma);CCK-8(APE×Bio);逆转录试剂盒(Takara);2×通用SYBR Green Fast qPCR Mix(Abcolnal);无内毒素质粒中提试剂盒EndoFree Plasmid Midi Kit(康为生物);Transwell细胞小室和Matrigel基质胶(Coring);ADAR1抗体(正能生物);GSK3β(proteintech);β-catenin(proteintech);p-β-catenin(proteintech);GAPDH和兔二抗(proteintech)。
质粒:ADAR1-p110表达质粒由广州复能基因公司将ADAR1-p110的cDNA序列(NM001025107.2)构建到EX-Z3143-M07载体中;ADAR1-p150表达质粒由OriGene公司将ADAR1-p150的cDNA序列(NM 001111.4)构建到pCMV6-Entry载体中。靶向ADAR1的小干扰RNA(siADAR-1、siADAR-2和siADAR-3)购自湖州河马生物科技有限公司。
1.2 方法
1.2.1 细胞培养
肝癌细胞株(HepG2和Huh7)复苏后,置于含10%胎牛血清和1%青霉素/链霉素的DMEM完全培养基于5%二氧化碳,37 ℃的条件下培养,待愈合度达90%后用胰酶消化传代。其中,对HepG2开展实验时,其细胞培养皿的表面需使用鼠尾Ⅰ型胶原提前处理促进细胞伸展。
1.2.2 基因表达谱互动分析(GEPIA)
基因表达谱互动分析(
http://gepia.cancer-pku.cn)选取来源于TCGA和GTEx数据库369例肝癌肿瘤样本和160例正常肝脏组织样本,使用RNA测序处理后输出可视化结果。最终得到ADAR1和GSK3β在肝癌与正常肝脏组织中的表达,并分析ADAR1基因在肝癌不同疾病分期中的表达水平及其对肝癌患者预后的影响。
1.2.3 细胞转染
取生长状态良好的细胞接种于6 cm细胞培养皿中,当细胞融合度达到60%左右时,按照Lipofectamine
TM3000说明书,将ADAR过表达质粒或siRNA(
表1)分别配制成鸡尾酒混合物转染到细胞中。转染后4~6 h,更换成完全培养基继续培养48 h收取细胞进行后续检测。
1.2.4 细胞活力测定
将处理好的HepG2和Huh7细胞分别以每孔2×103个细胞的密度接种在96孔板中,每组3个孔。培养至相应时间后,每孔中加入10 µL CCK-8溶液,孵育1 h。使用酶标仪在450 nm处测定吸光度(absorbance,A)值。
1.2.5 划痕实验
细胞被接种在6孔板中,培养到90%的融合度,利用枪头进行划痕,然后用磷酸盐缓冲液(PBS)洗涤后,加入无血清的DMEM培养基继续培养,使用显微镜分别在0 h和48 h定点拍照记录,观察细胞的边缘运动。使用Image J软件计算分析伤口相对迁移速度。
1.2.6 Transwell实验
细胞迁移和侵袭试验使用24孔Transwell室和8 μm聚碳酸酯膜(Coring,美国)进行。Transwell迁移实验是细胞在无血清饥饿2 h后,将细胞消化离心,用无血清培养基重悬,计数,稀释至所需浓度,小室上层每孔接种2×104个细胞的悬液,下层加入完全培养基,于培养箱中孵育48 h。拿出小室用4%多聚甲醛固定,0.1%结晶紫染色。最后,用显微镜拍照观察,计数穿膜细胞。Transwell侵袭实验需提前将基质胶铺被于小室中,其余步骤与Transwell迁移实验相同。
1.2.7 实时荧光定量PCR(qPCR)
采用TRizol试剂提取细胞总RNA,取1 μg RNA按照PrimeScript RT Reagent Kit with gDNA Eraser逆转录试剂盒操作手册合成cDNA,使用2×通用SYBR Green Fast qPCR Mix进行qPCR。反应条件如下:95 ℃循环3 min,95 ℃循环5 s,60 ℃循环30 s。所有qPCR引物均使用NCBI网站(
https://www.ncbi.nlm.nih.gov/)在线设计(
表2),由北京擎科生物技术有限公司合成。GAPDH基因作为内参,采用2
-ΔΔCt方法计算相对表达量。
1.2.8 Western blot检测
使用RIPA裂解液提取组织和细胞中的总蛋白并用BCA法定量。每个蛋白样品经SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳分离,并转移到PVDF膜(0.45 μm)上。随后用5%脱脂奶粉封闭膜后,与一抗(ADAR1,1∶2 000;GAPDH,1∶5 000,GSK3β,1∶2 000;β-catenin,1∶5 000;p-β-catenin,1∶5 000)4 ℃孵育过夜,经TBST缓冲液洗涤3次,与二抗在室温下孵育1 h。TBST洗涤3次后使用增强型化学发光试剂盒(Beyotime Biotechnology)进行显色检测。
1.2.9 蛋白-蛋白互作和富集分析
通过STRING在线网站(
https://cn.string-db.org/)进行蛋白-蛋白互作(protein-protein interaction,PPI)网络分析,所得结果进行可视化分析;筛选与ADAR1直接作用的Hub gene,再通过生物学信息注释数据库DAVID(
http://david.ncifcrf.gov)对基因进行GO和KEGG富集分析。
1.3 统计学方法
实验结果均取3次重复实验,数据用均数±标准差(x±s)表示,应用Graph Pad Prism(9.5.1)对数据进行统计分析和绘图,2组间比较采用t检验,多组间比较采用单因素方差分析。检验水准α=0.05。
2 结果
2.1 ADAR1在肝癌组织中高表达,并与预后不良有关
首先,本研究组通过生物信息学在线分析工具GEPIA对肝癌组织与癌旁组织中ADAR1的表达水平进行了分析,结果显示,相较于癌旁组织,肝癌组织中ADAR1表达显著上调(
图1A),这提示ADAR1在肝癌的进展中可能发挥促进作用。此外,ADAR1在肝癌不同分期中,ADAR1表达无统计学意义(
P=0.508,
图1B),但高表达患者相较于低表达患者的预后较差(
图1C)。最后,本研究组采用Western blot对8例临床肝癌组织和癌旁组织进行检测,发现肝癌组织相较于癌旁组织,ADAR1 p150和p110两个亚型的蛋白质表达水平均更高(
图1D)。这些结果表明,ADAR1在肝癌中表达上调,且与预后不良密切相关。
2.2 过表达ADAR1 p150和p110均能促进肝癌细胞的增殖、迁移和侵袭能力
为验证肝癌组织中得到的结果,本研究组在Huh7和HepG2细胞中转染ADAR1过表达质粒p150和p110,通过Western blot和qPCR检测细胞中ADAR1表达水平。结果表明,过表达组的ADAR1蛋白质和mRNA表达水平均明显升高(
图2A、B)。通过CCK-8检测过表达ADAR1对细胞增殖的影响,结果表明,过表达ADAR1 p150和p110后细胞增殖能力明显高于对照组(
P<0.01,
图2C)。划痕实验结果显示,划痕后48 h,过表达ADAR1 p150和p110组伤口愈合能力显著强于对照组(
P<0.001、
P<0.01,
图3A、B)。此外,Transwell细胞迁移和侵袭实验表明,过表达ADAR1 p150和p110组细胞穿孔数明显多于对照组(
P<0.05,
图3C、D)。以上结果表明过表达ADAR1 p150和p110均能促进肝癌细胞的增殖、迁移和侵袭。
2.3 敲低ADAR1抑制肝癌细胞的增殖、迁移和侵袭能力
为进一步分析ADAR1两个亚型表达水平对肝癌细胞增殖、迁移和侵袭的影响,本研究设计了同时靶向2个亚型的siRNA序列,通过对肝癌Huh7和HepG2细胞转染siRNA干扰ADAR1两个亚型的表达。采用Western blot和qPCR检测ADAR1的干扰效率。结果显示,与对照siNC相比,siADAR组ADAR1两个亚型的蛋白质和RNA表达水平均明显降低(
P<0.001,
图4A、B)。通过CCK-8实验检测细胞活力,结果显示,与对照组siNC相比,siADAR1组的Huh7和HepG2细胞活力显著降低,尤其是在96 h时最为明显(
P<0.001,
图4C)。划痕实验结果显示,siADAR1组细胞伤口愈合能力受到抑制(
P<0.05,
图5A、B)。同时,Transwell细胞迁移和侵袭实验表明,siADAR1组细胞迁移和侵袭能力受到抑制(
P<0.05,
图5C、D)。以上结果表明,敲低ADAR1可以抑制肝癌细胞的增殖、迁移和侵袭。
2.4 ADAR1调控Wnt/β-catenin信号通路
利用STRING数据库构建ADAR1蛋白质互作网络,根据蛋白关联性获取了前10的相关蛋白,其中包括糖原合酶激酶3β(glycogen synthase kinase 3β,GSK3β)(
图6A)。通过DAVID数据库对这些互作蛋白进行GO和KEGG富集分析,结果显示主要参与的生物过程包括:细胞增殖、间充质上皮转化、干扰素刺激基因(interferon stimulated gene factor 3,ISGF3)表达调控、核糖核酸酶Ⅲ活性调控、RNA结合域调控、Wnt信号通路等(
图6B、C)。Wnt信号通路是经典的肿瘤调控通路,在支架蛋白的辅助下,β-连环蛋白(β-catenin)与GSK3β、APC基因产物形成复合体。当激活Wnt信号之后,Wnt分子与跨膜受体Fzd结合,抑制GSK3β,使得β-catenin磷酸化程度降低,并抑制β-catenin降解,使其稳定并聚集于细胞核内,经过转录调控,参与肿瘤的调控。因此,本研究通过在肝癌细胞Huh7和HepG2里面过表达和敲低ADAR1 p150和p110,进行Western blot实验分析Wnt信号通路相关蛋白的表达情况,结果发现,过表达ADAR1 p150和p110后减少了GSK3β含量,降低了β-catenin的磷酸化水平,而对β-catenin水平无明显影响(
图6D);相反,敲低ADAR1 p150和p110后GSK3β的含量升高,磷酸化β-catenin水平升高,同样对β-catenin无明显影响(
图6E)。综上,这些数据表明ADAR1对肝癌细胞的影响可能是通过Wnt/β-catenin信号通路发挥作用的。
3 讨论
肝细胞癌严重威胁人类健康,是世界范围内的重要公共卫生问题。近年来,肝细胞癌的研究持续受到关注
[19]。因高度复制性和异质性,其致病分子机制未完全解析
[20]。因此,肝细胞癌的有效预防和治疗面临巨大挑战。
ADAR1是一种多功能蛋白,在炎症损伤
[21]、细胞应激
[22]和免疫调控
[23]等方面发挥重要作用。研究表明,ADAR1异常表达与卵巢癌
[24]、乳腺癌
[16]等多种恶性肿瘤的发生发展密切相关。ADAR1有2种亚型:p150和p110。p150由干扰素诱导表达,主要定位于细胞质;p110因缺乏核输出信号(nuclear export signal,NES)而定位于细胞核。在肝癌中,ADAR1 p110通过编辑一种RNA结合蛋白DDX1促进细胞增殖和转移
[25],此外,ADAR1 p110还可以促进肝癌细胞的增殖和侵袭
[18]。目前尚未有研究报道p150对肝癌细胞恶性增殖的影响。基于此,本研究同时探讨了ADAR1两种亚型对肝癌Huh7和HepG2细胞增殖、迁移和侵袭的影响,并对机制进行初步研究。GEPIA在线网站分析结果显示,与正常肝脏组织相比,ADAR1在肝癌组织中高表达,尽管在肝癌的不同分期中其表达量差异无统计学意义,但高表达ADAR1的患者预后不良。此外,Western blot检测临床肝癌和癌旁组织表达,结果显示,ADAR1 p150和ADAR1 p110在肝癌组织中表达量均异常增高,这与在线分析数据是一致的。在肝癌Huh7和HepG2细胞中转染ADAR1过表达质粒,CCK-8、划痕及Transwell实验证明ADAR1两个亚型均能促进肝癌细胞的增殖、迁移和侵袭。然后,通过转染ADAR1小干扰质粒,发现在ADAR1两个亚型的表达量降低后,肝癌Huh7和HepG2细胞的增殖、迁移和侵袭能力均受到明显抑制。这些结果说明ADAR1与肝癌细胞的增殖和存活密切相关。
Wnt/β-catenin信号通路是一种复杂的蛋白网络调控系统,参与炎症
[26]、肿瘤
[27]等多种疾病过程。GSK3β是Wnt/β-catenin信号通路中的负调控因子,β-catenin是GSK3β的下游底物。激活状态下的GSK3β能够磷酸化β-catenin并诱导其在蛋白酶体中的降解。既往研究表明,Wnt/β-catenin通路抑制剂可促进胃癌细胞的增殖和迁移,沉默ADAR1后β-catenin表达水平受到抑制,并逆转由Wnt/β-catenin通路抑制剂导致的胃癌发生发展。此外,在乳腺癌细胞系中,ADAR1 p110过表达降低了GSK3β的表达,同时增加了β-catenin的活性,ADAR1敲除具有相反的效果。ADAR1通过抑制GSK3β活性,使β-catenin积累和核易位减少,从而介导ADAR1诱导的细胞侵袭和新生血管形成。目前尚未有ADAR1靶向Wnt/β-catenin信号通路在肝癌中的研究。本研究通过生物信息学和Western blot实验验证,在肝癌中,ADAR1和Wnt/β-catenin信号通路存在相关性。结果显示,过表达ADAR1 p150和p110均能抑制GSK3β表达,降低β-catenin磷酸化水平,而对β-catenin无明显影响;敲低ADAR1后GSK3β含量增加,并激活磷酸化β-catenin水平,β-catenin表达无显著差异。这些数据提示,肝癌细胞中异常升高的ADAR1可能通过激活Wnt/β-catenin信号通路,从而促进肝癌的增殖、迁移和侵袭。
综上所述,ADAR1在LIHC中高表达,并与不良预后相关。ADAR1 p150和p110均能促进肝癌Huh7和HepG2细胞的增殖、迁移以及侵袭能力,其作用机制与Wnt/β-catenin信号通路存在一定相关性。但仍需更多的实验来进一步探索ADAR1与Wnt/β-catenin在LIHC发生发展过程中的作用和机制,为LIHC诊断和预后提供新的方向和途径。
重庆市科技局自然科学基金面上资助项目(cstc2021jcyj-msxmX0158)