溃疡性结肠炎(ulcerative colitis,UC)是一种慢性非特异性炎症性肠道疾病,主要累及结肠黏膜和黏膜下层,主要表现为腹泻、腹痛、黏液和血液便等症状
[1]。到2023年,全球溃疡性结肠炎的患病率达到将近500万例,并且全球范围内的发病率正在增加
[2]。UC的病因尚不完全清楚,与遗传、免疫、环境和微生物群密切相关
[3]。UC可高度影响患者的生活,长期可诱发下消化道出血、肠道穿孔、中毒性巨结肠、上皮内瘤变和癌变多种并发症
[4]。目前UC的治疗药物主要有氨基水杨酸类、糖皮质激素类、免疫调节剂及生物制剂等,这些药物虽然可以较好地控制疾病进展,但仍存在不良反应难以避免或经济成本高等缺点。因此,需寻找和开发安全性更高、疗效更好的药物。
鹰嘴豆芽素A(biochanin A,BCA)是一种天然异黄酮类植物雌激素,主要存在于红三叶草、鹰嘴豆、大豆和花生等植物中
[5],其化学结构见
图1。BCA在体内的代谢途径涉及氧化、去甲基化、氢化、内部水解、结合反应(例如葡萄糖醛酸化、磺化、葡萄糖结合、甲基化和乙酰化)及其复合反应,生成80多种代谢产物,其中染料木黄酮、芒柄花素、大豆苷元、槐角苷和染料木苷这5种代谢物均具有生物活性
[6]。BCA具有多种药理活性,已广泛应用于医药和保健品领域。它的结构与人体内雌激素相似,临床上用于治疗骨质疏松及妇女更年期综合征
[7-8],同时有研究表明它具有良好的抗氧化作用、抗炎作用、抗肿瘤作用
[9-11],此外,BCA在神经、肝脏、胃壁保护等方面都具有积极影响
[12]。本文研究BCA是否对小鼠UC具有保护作用,为将BCA用于临床治疗UC提供理论依据。
1 材料与方法
1.1 药品与试剂
BCA(纯度≥98%)和柳氮磺胺吡啶(sulfasalazine,SASP)购自阿拉丁公司,葡聚糖硫酸钠(dextran sulfate sodium salt,DSS)购自汉邦环宇多糖生物公司,羧甲基纤维素钠(carboxymethyl cellulose sodium,CMC-Na)购自塞维尔公司,闭锁小带蛋白1(zonula occludens 1,ZO-1)和Occludin抗体购自Proteintech公司,苏木精-伊红(hematoxylin-eosin staining,HE)试剂盒和4',6-二脒基-2-苯基吲哚(4',6-diamidino-2-phenylindole,DAPI)购自碧云天公司,RNAiso plus和逆转录试剂盒购自Takara公司,实时荧光定量PCR(quantitative real-time PCR,qPCR)引物购自生工生物公司。
1.2 仪器
组织研磨器购自碧云天公司,CFX96实时热循环仪购自Bio-Rad公司,梯度PCR仪购自ABI Veriti公司,包埋机购自俊杰电子公司,切片机购自徕卡仪器公司,NanoDrop 2000购自Thermo公司,VS200全玻片扫描仪购自Olympus公司。
1.3 动物
C57BL/6N小鼠36只(雄性,8周,18 g~21 g),购自北京维通利华公司,许可证号:SCXK(京)2021-0006,实验动物饲养于重庆医科大学动物实验中心的屏障环境内。饲养条件为温度20 ℃~25 ℃,相对湿度(70±10)%,12 h光照/12 h黑暗周期循环,常规标准饲料喂养,自由饮水。本研究得到重庆医科大学实验动物伦理委员会的审查批准(批准编号为IACUC-CQMU-2024-03034)。
1.4 造模及给药方法
称量小鼠体质量,按照随机区组设计将小鼠分为6组,每组6只。适应性喂养1周后开始实验。将SASP和BCA加入0.5%CMC-Na溶液中,分别制成SASP混悬液和BCA低、中、高浓度混悬液。正常对照组小鼠饮用蒸馏水10 d,其余小鼠饮用2.5% DSS的水溶液7 d,之后饮用蒸馏水3 d。实验中,正常对照组和模型组均每日灌胃1次0.2 mL的0.5% CMC-Na溶液和阳性药物对照组为100 mg/kg SASP;BCA干预组则分别为5、10、20 mg/kg的BCA,持续给药10 d。10 d后所有小鼠进行处死,分离结肠组织,测量结肠长度,收集部分结肠保存至-80 ℃的冰箱中,另取约5 mm长度的结肠,保存于4%多聚甲醛中用于组织病理学实验。
1.5 疾病活动指数(disease activity index,DAI)评分
实验过程中每日记录小鼠大便黏稠度、大便出血及体质量下降率。综合这3项指标的平均值为DAI评分。利用以下公式计算小鼠的体质量变化率:第
n天体质量变化率=(第
n天体质量/第1天体质量)×100%,DAI评分标准见
表1。
1.6 组织病理学检查
取4%多聚甲醛固定的小鼠结肠组织,依次用95%、90%、80%、70%酒精梯度脱水后石蜡包埋切片,采用HE染液染色,中性树脂封片后使用全玻片扫描系统VS200成像,并对切片进行病理组织学评分,评分标准见
表2。
1.7 测定结肠组织中肿瘤坏死因子-α(tumor necrosis factor-α,TNF-α)、白细胞介素-6(interleukin-6,IL-6)和白细胞介素-10(interleukin-10,IL-10)含量
使用RNAiso plus从结肠样本中提取总RNA,NanoDrop 2000测量其浓度。使用逆转录试剂盒合成cDNA,CFX96实时热循环仪进行定量实时聚合酶链反应。反应条件为95 ℃预变性30 s,95 ℃变性5 s,60 ℃退火30 s,循环40次。甘油醛-3-磷酸脱氢酶(glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase,GAPDH)作为内参,通过2
-ΔΔCt方法计算目的基因的mRNA相对表达量。使用的具体引物如
表3所示。
1.8 免疫荧光染色
将结肠的石蜡切片在二甲苯中脱蜡,依次用95%、90%、80%、70%酒精梯度脱水,使用柠檬酸钠缓冲液抗原修复,滴加3%过氧化氢消除内源性过氧化物酶,山羊血清封闭,将切片与ZO-1和Occludin一抗在4 ℃下孵育过夜,然后在室温下孵育荧光二抗,用DAPI复染,并使用全玻片扫描系统VS200成像。
1.9 统计学方法
采用GraphPad Prism 9.0软件进行实验数据分析并绘制统计图。数据结果使用均数±标准差(x±s)表示,采用t检验进行2组之间的比较,检验水准α=0.05。
2 结 果
2.1 BCA对DSS诱导的小鼠体质量和DAI的影响
通过2.5% DSS诱导建立UC小鼠模型,观察分析BCA对UC小鼠体质量和DAI的影响。
图2A显示在整个实验期间正常对照组小鼠体质量基本保持不变,模型组的前4 d小鼠体质量变化不明显,5 d开始,模型组、BCA高剂量组及SASP组的小鼠体质量都有明显下降。6 d后BCA低中剂量组与正常对照组相比体质量均有下降趋势,但与模型组相比体质量下降明显较小(
P=0.006;
P=0.020),且BCA低剂量组与中剂量组的体质量变化趋势较为一致。DAI评分结果如
图2B所示,实验期间部分模型组小鼠在4 d时出现大便松软不成形的情况,5 d,多数小鼠出现腹泻和便血等情况。与正常对照组相比,模型组DAI评分在4 d开始明显上升(
P=0.004),6 d时,SASP组和BCA低中高剂量组小鼠的DAI评分较模型组明显更低(
P=0.029、
P<0.001、
P<0.001、
P<0.001)。7 d将饮用的2.5% DDS水溶液更换为蒸馏水,9 d所有小鼠DAI评分均有下降,SASP组和BCA低中高组DAI评分较模型组更低(
P=0.002;
P<0.001;
P<0.001;
P<0.001)。
2.2 BCA对DSS诱导小鼠结肠长度的影响
DSS处理会导致小鼠的结肠长度明显减少。
图3显示小鼠结肠自然伸直长度的测量结果,如图所示正常对照组的结肠平均长度约为8 cm,模型组结肠长度相比对照组明显缩短(
P<0.001),SASP组和BCA低中高剂量组的结肠长度较模型组有明显增加(
P<0.001、
P=0.025、
P<0.001、
P<0.001),这表明BCA能一定程度上减轻DSS对小鼠结肠组织的刺激,缓解结肠缩短。
2.3 BCA对DSS诱导小鼠结肠组织损伤的影响
如
图4所示,正常对照组小鼠结肠组织结构完整,腺体排列整齐,无炎性细胞浸润。模型组结肠组织出现溃疡,隐窝出现萎缩、缺失等结构损伤,肠壁各层出现不同程度的炎性细胞浸润和杯状细胞减少,结缔组织疏松,部分区域肠黏膜受损。经SASP和BCA干预后,各组小鼠结肠组织黏膜形态得到修复、腺体形态结构改善、隐窝和杯状细胞数量增多,炎性细胞浸润现象几近消退、结肠肠道损伤状况得到明显改善。提示BCA可改善DSS诱导的UC小鼠的结肠组织损伤。
2.4 BCA对DSS诱导的小鼠结肠炎症细胞因子的影响
炎症是机体对损伤、感染或其他刺激的生理反应,过度的炎症因子分泌可能导致炎症性肠病的发生和发展。通过qPCR方法测定小鼠结肠中促炎细胞因子TNF-α、IL-6和抑炎细胞因子IL-10的含量,结果(
图5)显示,与正常对照组相比,DSS明显升高了小鼠结肠组织中TNF-α(
P<0.001)、IL-6水平(
P<0.001),降低了IL-10的水平(
P<0.001),BCA干预组相比模型组促炎因子水平明显降低,而抑炎因子有明显升高。提示BCA可减轻DSS诱导产生的小鼠结肠炎症反应。
2.5 BCA对DSS诱导的小鼠肠道屏障的影响
肠道屏障功能破坏是炎症性肠道疾病的标志,紧密连接是肠上皮屏障的重要组成部分。通过免疫荧光的方法测定小鼠结肠中紧密连接蛋白ZO-1和Occludin的表达水平,来评估BCA对DSS引起的肠道屏障功能的影响。结果如
图6,与正常对照组相比,模型组小鼠肠道紧密连接蛋白ZO-1和Occludin的表达均明显下调,而BCA治疗使肠道紧密连接蛋白有上调趋势,且10 mg/kg BCA对UC小鼠的肠道屏障恢复作用较好。提示BCA能够恢复肠道紧密连接蛋白水平,减小肠道通透性,对肠道屏障功能具有保护作用。
3 讨 论
UC是一种慢性、复发性炎症性疾病,其特征是免疫反应异常、细胞因子释放紊乱以及肠黏膜持续炎症过程
[13],虽然近年来新治疗方法不断出现,但对UC治疗成功率并无明显突破,如何深入探究UC发病机制并找到有效的治疗药物或方法,是尚待解决的问题。既往研究表明BCA具有抗炎、神经保护、抗氧化、抗微生物、保肝和抗癌等多种药理活性
[5],对人和动物的健康有多方面的有益作用。为了研究BCA对UC是否具有保护作用,本研究选择了浓度2.5%的DSS水溶液诱导建立小鼠UC模型,观察和分析小鼠体质量、DAI指数、结肠长度和组织学变化,发现BCA能明显缓解UC小鼠体质量下降,减小UC小鼠DAI评分。结肠长度是与UC的严重程度成反比的指标,本研究观察到BCA干预后减少了DSS诱导小鼠的结肠长度缩短。此外,结肠病理切片结果中提示,DSS诱导引起小鼠结肠大量炎性细胞浸润,黏膜形态结构破坏,经 SASP和BCA干预后黏膜层只有少量炎性细胞浸润,结肠结构有明显修复。该结果证实BCA对DSS引起的UC炎症状态具有明确的改善的作用。
炎症是一系列复杂的、高度连续的事件,由包括病原体在内的多种刺激所介导
[14]。研究表明细胞因子释放不平衡与UC的发病密切相关,UC患者的肠黏膜中存在高水平的促炎细胞因子
[15]。本研究发现DSS诱导引起小鼠结肠组织中的促炎因子TNF-α和IL-6明显升高,抑炎因子IL-10降低,而BCA减少了TNF-α和IL-6生成,同时增加了IL-10的生成,说明其在一定程度上抑制结肠组织炎症反应。肠上皮屏障在维持肠道稳态中发挥着关键作用,上皮层与黏膜层和特化细胞一起,形成一个装备精良、调控复杂且严格的屏障
[16]。肠上皮细胞之间的主要紧密连接蛋白包括ZO-1、闭锁小带蛋白2(zonula occludens 2,ZO-2)、Occludin和Claudin-1等,位于相邻肠上皮细胞之间,发挥维持肠上皮屏障完整性的作用
[17]。肠道屏障破坏时肠上皮的通透性增加,使得更多促炎分子(例如病原体、毒素和抗原)进入黏膜组织和循环系统
[18],导致持续炎症、结肠炎期间的组织损伤和其他相关并发症
[19-20]。本研究检测了小鼠结肠中紧密连接蛋白的变化,发现DSS减少了紧密连接蛋白ZO-1和Occludin的表达,而BCA有上调紧密连接蛋白的表达的趋势,揭示BCA具有改善肠道通透性,保护肠道上皮屏障的作用。
综上所述,BCA对DSS诱导的小鼠UC症状有较明显的改善作用,具体表现为BCA可缓解UC小鼠体质量下降,减轻腹泻和便血等症状、下调小鼠肠道促炎细胞因子、上调抑炎细胞因子、保护小鼠肠道屏障功能,揭示了BCA在UC的发生发展过程中具有的保护性作用,这对于将含有BCA的食品和药物开发成为防治UC的辅助治疗手段提供了新的研究思路。