原发性肺癌是全球范围内严重危害人类健康的恶性肿瘤,根据国际癌症研究机构统计数据,肺癌病死率高居恶性肿瘤榜首
[1],其中80%~85%组织学类型为非小细胞肺癌(non-small cell lung cancer,NSCLC)
[2]。尽管近年来在诊断和治疗方面的研究取得明显进展,但仍存在预后差、生存率低的问题,其5年平均生存率仅为15%
[3]。
槲皮素(quercetin)一种黄酮类化合物,在洋葱、苹果、葡萄、樱桃和柑橘类水果等中含量丰富
[4],具有抗氧化特性
[5],对多种类型的肿瘤细胞有抑制增殖
[6]、促进凋亡
[7]、抑制血管生成的作用
[8]。已有研究表明,槲皮素具有抗肺癌作用
[9-10],可以有效抑制癌细胞侵袭、转移和增殖
[11]。但槲皮素抗肺癌的关键作用靶点未见报道,相关的分子机制仍待阐明。本研究通过观察槲皮素对非小细胞癌细胞A549增殖、凋亡的影响,筛选并验证肺癌相关的槲皮素靶蛋白,探讨槲皮素抗肺癌潜在机制。
1 材料与方法
1.1 材料
1.1.1 细胞株
人非小细胞肺癌A549细胞由中国科学院生物物理研究所毕利军课题组惠赠。
1.1.2 试剂
槲皮素(上海麦克林,货号:Q817162),生物素标记槲皮素[体必康生物科技(广东)股份有限公司],DMSO(美国Sigma),RPMI-1640培养液、胎牛血清和胰酶均购自美国GIBCO公司,Annexin V-FITC/PI凋亡检测试剂盒(美国BD,货号:556547),Protein Thermal Shift™启动试剂盒(美国Invitrogen,货号:4462263),HuprotTM人全蛋白芯片(美国CDI)。
1.1.3 仪器
细胞培养箱(ESCO)、流式细胞仪(美国Beckman Coulter)、芯片扫描仪(北京博奥生物)、酶标仪(美国Thermo Fisher Scientific)、实时荧光定量PCR仪(美国Bio-Rad)。
1.2 方法
1.2.1 A549细胞培养
NSCLC细胞A549用RPMI-1640培养基(含10%胎牛血清和100 U/mL青、链霉素),置于37 ℃、5%CO2饱和湿度的培养箱中培养。
1.2.2 CCK8法检测槲皮素对A549增殖影响
取对数生长期的A549细胞接种于96孔板中(5×103个/孔),置于37 ℃培养箱中培养过夜使细胞贴壁。各孔分别加入含10、20、50、100、200 μmol/L槲皮素的新鲜培养液,同时设置阴性对照组(细胞用不含药物培养液处理)和空白组(仅加培养液),每组设置4个复孔。A549细胞继续培养48 h后,吸出上清,用PBS清洗2次后各孔加入100 μL新鲜培养基和10 μL CCK8溶液,放置于37 ℃培养箱中孵育1 h。最后用酶标仪测定在 450 nm波长下的吸光度(absorbance,A)值,并计算槲皮素对细胞的抑制率。抑制率(%)=[1-(A药物组)/(A阴性对照组)]×100。
1.2.3 流式细胞术检测细胞凋亡
取对数生长期的A549细胞,接种于6孔板中。实验组分别加入含50 μmol/L、100 μmol/L槲皮素的培养液,设置含等量DMSO的培养液处理为0 μmol/L对照组。A549处理48 h后,弃去培养液,收集细胞。用PBS清洗细胞3遍后按照Annexin V-FITC/PI 试剂盒说明书进行细胞染色。用流式细胞仪检测细胞的FITC和PI通道的荧光强度(488 nm激发光)。
1.2.4 生物素标记槲皮素合成
将槲皮素(1 eq)和生物素(1 eq)加入到干燥DMF中,0 ℃下,加入EDCI(1.3 eq)和DMAP(0.1 eq),室温过夜反应。反应液过滤后,用高效液相色谱HPLC纯化(Isolera One Flash,Biotage),得到生物素标记槲皮素。采用HNMR(AVANCE Ⅲ HD 300M,Bruke)和LC-MS(6230B Time-of-Flight LC/MS,Agilent)对合成产物的纯度和结构进行分析鉴定。
1.2.5 Huprot<sup>TM</sup>人全蛋白质芯片检测槲皮素潜在靶蛋白
冻存芯片恢复至室温后,置于10 mL封闭液中室温封闭1 h。弃封闭液,加入3 mL 孵育液稀释的10 μmol/L生物素标记槲皮素,室温反应1 h。取出芯片并浸泡于30 mL PBST 中清洗3次后转移至3 mL 1:1 000稀释的SA-Cy3中室温避光孵育1 h。取出芯片浸泡于30 mL PBST中进行避光清洗,方法同前。随之用ddH2O避光清洗2次。离心干燥后用芯片仪(LuxScanTM10K-A)扫描。该部分实则由体必康生物科技(广东)有限公司提供。
1.2.6 芯片数据处理及分析
芯片结果图片通过GenePix Pro v6.0软件转化为信号数据,计算每个蛋白2个重复蛋白质前景值与背景值比值的均值,定义为信噪比(signal-noise ratio,SNR)。对芯片上所有蛋白质SNR设置99%CI为槲皮素结合阳性蛋白阈值。在此基础上以生物素(D-biotin)的芯片结果为对照,计算差异倍数(FC=SNR槲皮素/SNR生物素),定义SNR>6.88且FC≥2即为槲皮素特异性结合靶蛋白。
1.2.7 数据库分析肺癌相关靶蛋白
利用clusterProfiler(v4.11.0)(基于R工具包)对筛选出来的槲皮素特异性阳性蛋白进行GO功能富集分析以及KEGG通路富集分析。基于超几何分布计算各GO和KEGG条目的
P值,
P<0.05视为该通路的富集结果具有显著性。DisGeNET数据库(
https://www.disgenet.org/home/)检索肺癌(Carcinoma of lung,C0684249)的已知关联基因,并与筛选出的槲皮素特异性阳性蛋白匹配,挑选交集蛋白。
1.2.8 ALDOA蛋白重组表达与纯化
构建ALDOA pEGX6p-1载体,转化至大肠杆菌BL21(DE3)后用异丙基-β-硫代半乳糖苷(isopropyl-beta-D-thiogalactopyranoside,IPTG)诱导表达融合蛋白GST-ALDOA。裂解液经谷胱甘肽琼脂糖凝胶分离纯化GST-ALDOA。用10 mol/L还原型谷胱甘肽(GSH)洗脱。洗脱产物利用SDS-PAGE鉴定目的蛋白,BCA法进行蛋白定量。
1.2.9 ELISA验证槲皮素与ALDOA互作
ALDOA蛋白用包被缓冲液CBS稀释至5 μg/mL,0.1 mL/孔置于4 ℃包被过夜。弃蛋白包被液后,用PBST清洗3次后加入300 μL/孔封闭液,置于4 ℃封闭4 h。弃封闭液,加入10 μmol/L、20 μmol/L、50 μmol/L的生物素标记槲皮素,同时设置对照(100 μmol/L生物素),室温孵育1 h。弃去溶液,PBST清洗3次后加入100 μL/孔的SA-HRP,室温孵育15 min。吸除溶液后加入PBST清洗3次。最后加入100 μL/孔TMB显色液,室温条件下避光反应30 min后加入50 μL/孔 2 mol/L H2SO4溶液终止反应。反应终止后,用酶标仪读取各孔反应液在450 nm波长下的A值。
1.2.10 DSF检测槲皮素影响ALDOA结构稳定性
根据Protein Thermal Shift™启动试剂盒说明书,各孔加入5 μg ALDOA重组蛋白、槲皮素(终浓度为10 μmol/L、50 μmol/L、100 μmol/L)、2.5 μL蛋白质热迁移染料(SYPRO orange)和ddH2O。实验条件为“melt curve”程序:25 ℃反应2 min,以1 ℃/s的增量升温至95 ℃,在每个温度下保持1 min结束时读取荧光。
1.3 统计学方法
实验至少重复3次,应用SPSS 22.0软件进行分析。计量资料采用均数±标准差(x±s)表示,多组间均数比较采用单因素方差分析,组间两两比较采用Sidak多重比较检验。检验水准α=0.05。
2 结 果
2.1 槲皮素抑制A549细胞增殖
通过CCK8法检测槲皮素对A549细胞增殖的影响,结果显示,与对照组(0±2.335)%相比10 μmol/L[(21.292±5.839)%]、20 μmol/L[(24.642±6.547)%]、50 μmol/L[(34.595±3.490)%]、100 μmol/L[(56.990±1.190)%]和200 μmol/L[(92.610±0.215)%]的槲皮素对A549细胞的生长抑制率具有明显的剂量依赖性,即随着槲皮素浓度升高,细胞增殖抑制作用增加(
F=269.500,
P<0.001,
图1)。说明槲皮素对非小细胞肺癌细胞具有生长抑制作用。
2.2 槲皮素促进A549细胞凋亡
使用不同浓度槲皮素处理A549细胞48 h后检测细胞凋亡情况,结果显示,50 μmol/L槲皮素处理组早期凋亡和晚期凋亡比例分别上升至(13.285±3.076)%和(7.800±1.376)%,100 μmol/L槲皮素处理组早期凋亡和晚期凋亡比例分别上升至(22.777±2.261)%和(11.352±1.480)%(
图2A)。表明,与对照组相比,50 μmol/L和100 μmol/L组无论在早期凋亡(50 μmol/L:
t=12.54,
P<0.05;100 μmol/L:
t=23.01,
P<0.05),还是晚期凋亡(50 μmol/L:
t=4.719,
P<0.05;100 μmol/L:
t=8.645,
P<0.05)比例均逐渐上升(
图2B)。
2.3 筛选槲皮素潜在靶蛋白
利用生物素标记的槲皮素与Huprot
TM人全蛋白质组芯片互作,共获得279个槲皮素特异性结合蛋白,即槲皮素潜在靶蛋白。通过GO功能富集和KEGG通路富集发现,上述潜在靶点蛋白主要参与小分子分解代谢过程、嘌呤化合物和嘌呤核苷酸代谢过程(
图3A),涉及氨基酸生物合成、碳代谢糖酵解和糖异生通路(
图3B)。
2.4 筛选肺癌相关靶蛋白
采用DisGeNET数据库收集肺癌相关基因4 081个,并与芯片筛选获得的槲皮素潜在靶点做交集分析,发现有60个重合蛋白(
图4A)。其中ALDOA响应信号最强(
图4B),表明ALDOA是肺癌相关且结合强度最高的槲皮素靶蛋白。
2.5 槲皮素与ALDOA相互作用验证
利用大肠杆菌重组表达系统获得高纯度ALDOA蛋白用于后续验证实验(
图5A)。ELISA实验结果显示10 μmol/L(0.216±0.020)、20 μmol/L(0.334±0.033)和50 μmol/L(0.639±0.026)组的吸光度随生物素标记槲皮素浓度升高而增加(
P<0.01;
图5B),表明生物素标记槲皮素与ALDOA相互作用,且这种相互作用可以被100 μmol/L(0.486±0.0600)和1 mmol/L(0.440±0.031)的无标签的槲皮素竞争抑制(
F=105.700,
P<0.01)。说明槲皮素之间ALDOA有特异性结合。
2.6 槲皮素影响ALDOA结构稳定性
DSF可以通过荧光染料监测升温过程中蛋白构象的变化,进而计算折叠蛋白与去折叠蛋白相等时的温度,即Tm值
[12]。当配体和蛋白的结合使靶蛋白的热稳定性改变时,其Tm值也会升高。
DSF检测结果显示槲皮素与ALDOA蛋白共孵育后,ALDOA蛋白熔解曲线改变(
图6A),Tm明显升高(
F=2 650.000,
P<0.001,
图6B)。在加入50 μmol/L的槲皮素后ALDOA Tm从(43.64±0.297)升至(55.197±0.029),加入100 μmol/L槲皮素后,蛋白Tm(55.907±0.289)趋于稳定,表明蛋白结合饱和。表明槲皮素与靶蛋白ALDOA结合后,蛋白热稳定性增加,理化性质发生改变。
3 讨 论
肺癌是一种在世界范围内发病率和死亡率都很高的恶性肿瘤,对人类健康和生命造成极大威胁。尽管近年来对肺癌治疗取得了一定的进展,已有多种用于治疗肺癌小分子药物和治疗策略被证明优于化疗
[13],但是对肺癌的有效治疗仍然是临床面临的主要挑战,因此新的治疗方案和药物开发仍是当前亟须解决的问题。槲皮素被发现可以在多种癌症细胞中发挥作用,可以改善肺癌治疗效果
[14-15],但是其直接作用的分子靶点和作用机制尚不清楚。
槲皮素是饮食中摄入量最多的黄酮类化合物之一,其抗炎、抗氧化和抗癌的特性已被广泛研究。已研究表明,槲皮素通过调节抑制aurora B激酶
[16]、上调maspin抑制Akt激活
[17]或下调TLR4/NF-κB通路
[18],展现出治疗肺癌的潜力。本研究还发现可有效抑制NCSLSC细胞增殖并促进细胞凋亡。
为进一步探究槲皮素诱导肺癌本研究通过Huprot
TM人全蛋白质芯片筛选对槲皮素潜在靶蛋白。发现在279个槲皮素特异性结合蛋白中,ALDOA是肺癌相关且结合强度最高的靶蛋白。ALDOA通过可逆催化果糖1,6-二磷酸裂解生成甘油醛-3-磷酸和二羟丙酮磷酸,是糖酵解和糖异生过程中的关键酶之一。研究发现ALDOA在多种肿瘤组织中表达上调
[19],由于糖异生和糖酵解作为肿瘤主要能量来源,越来越多研究关注ALDOA在癌症中发挥的重要作用。已有研究证明ALDOA通过参与Wnt信号通路
[19]和DNA损伤机制
[20]诱导肿瘤细胞凋亡敏感性降低、促进肿瘤细胞增殖和迁移及逆转细胞周期停滞
[21-23]。Fu HL等
[24]报道,ALDOA可以激活EGFR/MAPK途径,促进H157细胞增殖和G
1/G转变,并促进有氧糖酵解。这些发现表明ALDOA在肿瘤进展中起着重要作用,是重要的肿瘤标志物和治疗靶点。本研究发现ALDOA是槲皮素直接作用靶点,与槲皮素通结合后,ALDOA结构稳定性增加,蛋白性质改变。说明槲皮素通过结合ALDOA蛋白起到抗肺癌作用。
综上所述,本研究首次证明槲皮素通过与ALDOA蛋白直接结合并改变蛋白结构,进而影响细胞内糖代谢,激活肿瘤细胞内相关通路。最终,抑制肿瘤细胞增殖并诱导凋亡,起到抗肺癌的效果。本研究为槲皮素治疗肺癌的中药药理学提供基础研究理论依据,为槲皮素抗肺癌治疗策略提供新思路。