妊娠期糖尿病(gestational diabetes mellitus,GDM)是一种常见的妊娠期慢性疾病,在孕妇中呈现1%~14%的高发病率
[1]。虽然GDM孕妇在分娩后血糖会恢复正常,但是仍然有20%的GDM孕妇在产后6~12周内出现空腹血糖受损或者糖耐量受损,GDM孕妇未来发展为2型糖尿病(type 2 diabetes mellitus,T2DM)的风险明显增加,较正常孕妇升高7.4倍
[2]。此外,GDM会影响子代的近远期健康,母体高血糖环境与子代代谢性疾病(如肥胖、胰岛素抵抗、T2DM及心血管疾病)的发生密切相关
[3-5]。孕妇GDM病史是子代代谢异常的高危因素,其作用独立于遗传背景和生活方式
[5]。然而GDM子代易感T2DM的具体分子作用机制仍然不明确。
近年来,脂肪组织被重新定义为具有内分泌功能的重要器官,其分泌的脂肪因子[如成纤维细胞生长因子21(fibroblast growth factor 21,FGF21)、瘦素、脂联素等]广泛参与糖脂代谢调控。其中,血清FGF21作为调控糖脂代谢的重要细胞因子
[6],广泛表达于肝脏、胰腺、肌肉、脂肪和胎盘组织
[6-7]。研究发现,血液中FGF21可以抑制胰高血糖素的分泌
[8],也可以通过增加脂肪细胞胰岛素依赖的血糖摄取,来降低血液中的葡萄糖含量
[9]。然而,GDM患者及其子代体内FGF21等脂肪因子水平的动态变化及其与胰岛素抵抗的关系仍需深入探索。因此本研究通过测定GDM孕妇血清及其新生儿脐血血清中脂肪因子水平,研究GDM患者糖脂代谢状态与母婴体内脂肪因子水平的关系、孕妇血清中的脂肪因子水平与新生儿体内脂肪因子水平的关系,为GDM胰岛素抵抗及其对子代糖脂代谢影响的可能分子机制提供依据。
1 资料与方法
1.1 研究对象与分组
本研究纳入2017年9月1日至2018年9月1日在北京协和医院进行定期产检检查并最终分娩的孕妇,纳入标准:①单胎活产;②足月妊娠(孕37~42周);③按照GDM诊断标准分为血糖正常组(n=39)和GDM组(n=44)。排除标准:①年龄<18岁或>45岁;②多胎妊娠;③明确诊断的妊娠前糖尿病;④合并甲状腺功能亢进、库欣综合征、胰腺炎等影响血糖水平的疾病;⑤合并其他妊娠疾病如妊娠期高血压、子痫等疾病;⑥有吸烟、酗酒、麻毒药品使用史。2组研究对象年龄、孕周、血压进行匹配。其中GDM诊断标准为,孕24~28周时根据75 g口服葡萄糖耐量实验(oral glucose tolerance test,OGTT)诊断为GDM患者(3项中任何1项符合即可诊断,空腹血糖5.1~6.9 mmol/L,OGTT 1 h 血糖≥10.0 mmol/L,OGTT 2 h血糖8.5~11.0 mmol/L)。本研究方案通过北京协和医院伦理委员会审查(审批编号:ZS-1484)。
1.2 研究方法
1.2.1 临床资料收集
对纳入孕妇进行基本资料收集,包括年龄、身高、孕次、产次、孕前体质量、血压、自身出生体质量,糖尿病家族史、孕中期糖筛结果、孕期用药史、孕期糖尿病治疗方式等,计算孕前体质指数(body mess index,BMI)=体质量(kg)/身高
2(m
2)、孕期增加BMI=现在BMI-孕前BMI;分娩时记录分娩相关基本信息,包括记录分娩方式、产程情况、胎盘重量、新生儿血糖情况等;记录新生儿基本信息:测定并记录胎儿身长、体质量、新生儿Apgar评分、是否入住NICU、住院时间是否延长等。大于胎龄儿和小于胎龄儿判断依据参考
[10],根据新生儿性别和孕周分别筛选出生体质量>90百分位和<10百分位的胎儿例数。
1.2.2 样本收集
采集足月孕妇禁食12 h后采血,脐带血留取需待胎儿脐带结扎、胎盘娩出后,用注射器抽取胎盘上脐动脉血。采集血样装入含有促凝剂的采血管中,在4 ℃,3 000 r/min离心力的作用下低温离心,吸取上清至干净的EP管中,保存在-80 ℃冰箱中待检。
1.2.3 传统生化指标的测定
采用全自动生化采用 AU5800 全自动生化分析仪(美国,贝克曼库尔特公司)对血糖、血脂等生化指标进行检测;HbA1c采用日本TOSOH HLC-723 G8型全自动糖化血红蛋白分析仪及其原装配套试剂进行检测。计算稳态模型胰岛素抵抗指数(homeostasis model assessment of insulin resistance,HOMA-IR)=空腹胰岛素(mU/L)×空腹血糖(mmol/L)/22.5;胰岛β细胞功能指数(homeostasis model assessment-β cell function index,HOMA-β)=20×空腹胰岛素(mU/L)/[空腹血糖(mmol/L)-3.5]。
1.2.4 FGF21的测定
采用酶联免疫吸附法[(enzyme-linked immunosorbent assay,ELISA),RayBiotech公司]检测血清FGF21水平。
1.3 统计学方法
采用SPSS 24.0进行统计分析。应用Shapiro-Wilk(W检验)检验对各变量进行正态性检验,Levene’s检验各变量的方差齐性,正态分布方差齐的计量资料以均数±标准差($\bar{x} \pm s$)表示,组间比较采用独立样本t检验,偏态分布的计量资料以中位数(四分位距)[Md (P25,P75)]表示,组间比较采用Mann Whitney U 检验。计数资料以例数(%)表示,2组间比较应用卡方检验。FGF21水平采用Spearman相关分析评价血清 FGF21与各指标的相关性。采用logistic回归分析和受试者工作特征(receiver operating characteristic,ROC)曲线分析FGF21在GDM患者早期诊断中的应用价值。检验水准α=0.05。
2 结 果
2.1 2组间临床资料及生化指标的比较
GDM和血糖正常孕妇2组间,年龄、生产孕周、平均动脉压差异均无统计学意义(均
P>0.05),而GDM组孕前BMI明显高于血糖正常组[(21.2±1.5) kg/m
2 vs.(20.3±1.8) kg/m
2;
t=2.388,
P=0.020],但是其体质量增长明显低于血糖正常组[(12.6±4.2) kg vs.(15.3±3.4) kg;
t=-2.873,
P=0.005]。孕妇足月外周血中糖脂代谢指标比较,GDM组糖化血红蛋白[(5.4±0.4) vs. (5.1±0.3)%;
t=3.937,
P<0.001]、空腹血糖[(4.5±0.7) mmol/L vs.(4.1±0.4) mmol/L;
t=65.099,
P=0.013]、糖化白蛋白[12.9(11.8,13.8)% vs. 12.1(11.2,12.7)%;
Z=-2.772,
P=0.006]均明显高于血糖正常组,其他糖脂代谢相关指标差异均无统计学意义(均
P>0.05)。新生儿临床结局,包括顺产率、出生体质量、大于胎龄儿、小于胎龄儿差异均无统计学意义(均
P>0.05),但是GDM组新生儿出生体质量[(3 334.6±394.0) g vs.(3 220.3±356.9) g;
t=1.288,
P=0.202]、大于胎龄儿比例(4.5% vs.2.6%;
χ2=0.233,
P=0.629)和小于胎龄儿(11.4% vs.7.7%;
χ2=0.320,
P=0.572)比例均大于血糖正常组,见
表1。
2.2 2组间血清脂肪因子水平的比较
GDM组孕妇足月外周血清中FGF21水平明显高于血糖正常组[386.24(256.13,577.26) pg/mL vs. 239.71(148.10,378.48) pg/mL;
Z=-2.812,
P=0.005]。GDM组新生儿脐带血中FGF21水平也同样高于血糖正常组[74.78(63.78,106.11)pg/mL vs.52.74(49.66,65.16) pg/mL;
Z=-4.427,
P=0.160],但差异无统计学意义。GDM组孕妇足月外周血清中瘦素水平明显高于血糖正常组[462.19(268.06,883.48) pg/mL vs. 292.55(143.97,595.95) pg/mL;
Z=-2.014,
P=0.044]。GDM组新生儿脐带血中瘦素水平也同样高于血糖正常组[80.85(32.95,157.51) pg/mL vs.49.45(33.65,121.26) pg/mL;
Z=-1.234,
P=0.217],但差异无统计学意义。脂联素在孕妇血清和脐带血中差异均无统计学意义(
P>0.05)。孕妇血清瘦素与脂联素比值在GDM组中明显升高[0.122(0.043,0.179) vs. 0.042(0.015,0.127);
Z=-2.037,
P=0.042],见
表2。
2.3 母婴间血清脂肪因子的相关性分析
Spearman相关分析显示,孕妇外周血清FGF21水平与新生儿脐血血清中FGF21水平呈正相关(
r=0.350,
P=0.043),见
图1。孕妇外周血清瘦素水平与新生儿脐血血清中瘦素水平无相关性(
P>0.05)。
2.4 血清FGF21与糖脂代谢和其他指标的相关分析
Spearman相关分析显示,孕妇外周血清FGF21水平与孕前BMI、孕期增长体质量以及血糖血脂指标和新生儿出生体质量均无相关性。脐血血清中FGF21水平与孕妇血清中胆固醇(
r=0.324,
P=0.02)和脂蛋白α水平(
r=0.377,
P=0.007)呈现正相关,与孕妇HOMA-IR呈正相关(
r=0.319,
P=0.024),与孕妇血清瘦素水平呈现正相关(
r=0.473,
P=0.002),而与孕前BMI、孕期增长体质量和新生儿出生体质量均无相关性,见
表3。
2.5 孕妇血清FGF21水平对发生GDM的诊断效能
为评估孕妇血清FGF21水平是否可以增加GDM诊断效能,进行了ROC曲线绘制及分析。单一空腹血糖ROC下面积(95%CI)为0.648(0.527~0.768)最佳阈值为4.75 mmol/L,糖化血红蛋白ROC下面积(95%CI)为0.786(0.664~0.908)最佳阈值为5.55,糖化白蛋白ROC下面积(95%CI)为0.680(0.562~0.799)最佳阈值为13.25,而FGF21结合三者后ROC下面积(95%CI)为0.824(0.706~0.942),见
图2。
3 讨 论
GDM是最常见的妊娠并发症之一,流行病学数据显示,过去10~20年,GDM的患病率在包括发展中国家在内的许多地区上升了30%以上
[11-12],形成了一种新兴的全球流行病。此外,GDM对母子两代影响深远,探索GDM病因及其对子代分子机制的影响显得十分重要。超重和肥胖是GDM的重要危险因素,并且影响胰岛素敏感性的脂肪因子在GDM发病中起到重要作用
[13-14]。本研究提示GDM组除了空腹血糖、糖化白蛋白、糖化血红蛋白明显高于血糖正常组外,孕前BMI也明显高于正常对照。同时有研究发现,妊娠期体质量增加与妊娠并发症、孕妇产后体质量保持和后代肥胖的风险有关
[15]。本研究中较严格生活方式控制下,GDM孕期体质量增长明显低于血糖正常组。虽然差异无统计学意义,GDM新生儿出生体质量均值仍然高于正常对照,且新生儿中体质量大于胎龄儿和小于胎龄儿的比例也高于正常对照。说明控制体质量增长可以改善一部分新生儿临床结局,但是新生儿仍然可能存在脂代谢异常风险。
FGF21是成纤维细胞生长因子家族的一个成员,主要由肝脏和脂肪组织产生,分别由PPARα和PPARγ调控其表达,可不依赖于胰岛素而起到降低血糖的作用
[16]。我国人群研究提示,血清FGF21水平在GDM会呈现明显上升
[17],且随着胰岛素抵抗加重,FGF21水平会进一步上升
[18]。与既往研究结果一致,本研究也同样发现GDM组中足月孕妇外周血中FGF21水平高于正常对照组。此外,其他临床研究也发现在糖耐量受损、T2DM患者和GDM患者体内出现血液中FGF21上升的现象
[19-20],目前认为可能的解释是类似于胰岛素和瘦素抵抗的机制,由于长期处于高糖状态,这些人群中也出现了FGF21抵抗。本研究结果还表明,GDM孕妇血清中瘦素水平明显升高,脂联素水平降低,这也与既往研究结果一致
[21]。本研究还聚焦在新生儿脐血中FGF21是否受到孕妇外周血中浓度的影响,研究发现GDM组新生儿脐血中FGF21水平也同样均高于血糖正常组,将孕妇外周血和新生儿脐血中的FGF21进行相关性分析,发现两者呈现正相关。因此结果提示,GDM患者血清FGF21水平可能出现升高,且孕妇体内FGF21水平可以影响新生儿脐血中FGF21水平。
已有研究指出,血液循环中影响胰岛素敏感性的脂肪因子参与GDM的发病过程,并且部分脂肪因子的改变与孕妇胰岛β细胞功能存在密切联系
[7]。通过FGF21水平与孕妇血糖血脂指标进行相关性分析,该研究发现新生儿脐血中FGF21水平与孕妇的HOMA-IR指数、瘦素水平、胆固醇和脂蛋白α呈正相关。这提示新生儿FGF21水平的提高可能与孕妇血清胰岛素抵抗和脂质代谢异常相关,同时结合临床基线数据,虽然GDM孕期体质量增长明显低于正常孕妇,其新生儿出生体质量仍然高于正常对照组,可能与GDM组新生儿体内FGF21水平升高所反映的新生儿糖脂代谢异常相关。
本研究具有一定的局限性。①没有对受试者进行产后长期随访,以及子代青少年至成年长期随访,无法获得孕产妇及其子代代谢综合征的长期发病率。今后可以通过长期随访,获得FGF21的变化和转归数据,更有力地论证FGF21和临床结局的关系。②FGF21更适合妊娠早期纳入孕妇并进行巢式入组,这样可以将FGF21作为GDM孕早期预警标志物,更具有临床意义。但是本研究的研究结果为FGF21作为标志物提供了一定的临床数据支持。
综上所述,本研究发现GDM患者相较于血糖正常孕妇,体内的FGF21和瘦素水平可能出现升高,且孕妇体内FGF21水平可以明显影响新生儿脐血中FGF21水平,且新生儿脐血中FGF21水平与孕妇血清胰岛素抵抗相关。因此FGF21水平可能可以反应GDM体内糖脂代谢异常,且这种FGF21水平的表达谱特征也在其子代脐血中发现,表明FGF21可能在GDM发生发展,及其子代代谢异常中发挥着一定的作用。