β-谷甾醇对帕金森病模型大鼠脑氧化应激损伤及Nrf2/HO-1蛋白通路的影响

袁明洲 ,  袁欣欣 ,  林瑶 ,  蔡晶

福建中医药 ›› 2024, Vol. 55 ›› Issue (03) : 32 -35.

PDF (729KB)
福建中医药 ›› 2024, Vol. 55 ›› Issue (03) : 32 -35. DOI: 10.13260/j.cnki.jfjtcm.2024.03009
博硕园地

β-谷甾醇对帕金森病模型大鼠脑氧化应激损伤及Nrf2/HO-1蛋白通路的影响

作者信息 +

Author information +
文章历史 +
PDF (746K)

摘要

目的 探讨β-谷甾醇对帕金森病模型按照随机数字表法大鼠脑氧化应激损伤的保护作用及对Nrf2通路蛋白表达的影响。 方法 将40只 2月龄SPF级SD雄性大鼠采用随机数字表法分为正常组、造模组、治疗组和美多芭组,每组10只。模型组、美多芭组及治疗组采用鱼藤酮葵花油乳液颈背部注射建立帕金森病大鼠模型。造模成功后,治疗组以60 mg/(kg·d)β-谷甾醇、美多芭组以5 mg/(kg·d)美多芭混悬液、正常组和模型组采用生理盐水分别灌胃,均为每天1次,连续14 d。采用超氧化物歧化酶(SOD)、丙二醛(MDA)检测试剂盒检测4组大鼠血清SOD、MDA含量,免疫组化检测4组大鼠脑黑质中黑质酪氨酸羟化酶(TH)、核转录因子E2相关因子2(Nrf2)阳性细胞数;Western blot检测4组大鼠脑组织中Nrf2、血红素加氧酶-1(HO-1)、蛋白醌氧化还原酶-1(NQO-1)蛋白表达情况。 结果 与正常组比较,模型组SOD含量降低、MDA含量升高,脑黑质TH、Nrf2阳性细胞数减少,脑组织中Nrf2、HO-1、NQO-1蛋白表达降低(P<0.05)。与模型组比较,治疗组和美多芭组SOD含量升高、MDA含量降低,脑黑质中TH、Nrf2阳性细胞数增加,脑组织中Nrf2、HO-1、NQO-1蛋白表达升高(P<0.05)。 结论 β-谷甾醇可对帕金森病大鼠模型氧化应激损伤产生保护作用,其机制可能是通过调高Nrf2表达并激活下游信号通路蛋白。

Graphical abstract

关键词

帕金森病 / β-谷甾醇 / 氧化应激 / Nrf2 / HO-1

Key words

引用本文

引用格式 ▾
袁明洲,袁欣欣,林瑶,蔡晶. β-谷甾醇对帕金森病模型大鼠脑氧化应激损伤及Nrf2/HO-1蛋白通路的影响[J]. 福建中医药, 2024, 55(03): 32-35 DOI:10.13260/j.cnki.jfjtcm.2024.03009

登录浏览全文

4963

注册一个新账户 忘记密码

帕金森病(Parkinson's disease,PD)是世界第二大神经退行性疾病1。中脑部位的黑质致密部多巴胺神经元(dopaminergic neurons,DN)的进行性损伤是造成PD的主要病理变化。而氧化应激的发生可导致机体出现氧化-还原失衡,进而导致生成大量活性氧,这是导致中脑黑质DN损害的重要原因2-3。在临床中往往采用口服左旋多巴,即美多芭外源性补充多巴胺进行治疗。但单一长期用药易引起较多不良反应,因此可考虑联合用药。核转录因子E2相关因子2(nuclear factor erythroid-2 related factor 2,Nrf2)是一种氧化还原的关键调节因子4。大部分抗氧化细胞产生的保护蛋白表达受Nrf2信号蛋白的调控。在PD患者中,Nrf2及下游蛋白醌氧化还原酶-1(NQO-1)激活可有效保护细胞免受氧化应激损伤5。β-谷甾醇(β-sitosterol)是一种重要的植物甾醇,广泛存在于如肉苁蓉、半夏等中药植物中,具有显著的抗氧化作用6,β-谷甾醇还可在不影响线粒体外膜的情况下,使线粒体膜电位及ATP含量增加,起到缓解神经退行性疾病的作用7。但β-谷甾醇能否改善PD大鼠脑氧化应激损伤尚有待研究。本实验拟通过构建PD动物模型验证β-谷甾醇对大脑氧化应激的保护作用,进一步探究是否通过Nrf2及下游蛋白Nrf2、HO-1、NQO-1发挥作用,为β-谷甾醇对PD氧化应激的保护作用提供实验依据。

1 实验材料

1.1 实验动物

2月龄SPF级SD雄性大鼠40只,体质量为(200±20)g,购自上海斯莱克实验动物有限责任公司,许可证号:SCXK(浙)2019-0002,实验动物使用许可证号:SYXK(闽)2019-0007。饲养于福建中医药大学实验动物中心。饲养条件:室温(22±2)℃,湿度(60±5)%,饲喂标准大鼠饲料,自由饮水和取食。

1.2 实验试剂

β-谷甾醇(货号:S1270)、鱼藤酮(货号:R8875)均购自美国Sigma公司;美多芭(货号:H10930198)购自上海罗氏制药有限公司;鱼藤酮(货号:A8007)、葵花油乳化液(货号:H8923)均购自美国Sigma公司;丙二醛(MDA)测试盒(货号:A003-1)、超氧化物歧化酶(SOD)试剂盒(货号:A001-1)均购自南京建成生物工程研究所;SDS-PAGE凝胶配置试剂盒(货号:P0012A)购自上海碧云天生物技术研究所;ECL化学发光检测试剂盒(货号:B500022)购自美国Bio-Rad公司;PVDF膜(货号:W0162)购自北京索莱宝科技有限公司;BCA蛋白定量试剂盒(货号:PT0001)购自福建迈新技术有限公司。

1.3 实验仪器

电子天平(上海奥豪斯仪器有限公司);倒置显微镜(上海尼康仪器有限公司);光学显微镜(上海徕卡仪器有限公司);石蜡切片机(上海徕卡仪器有限公司);石蜡包埋机(孝感亚光医用电子技术公司);电泳仪(上海伯乐生命医学医学产品公司);转膜仪(上海伯乐生命医学产品公司);化学发光成像仪(上海伯乐生命医学产品公司)。

2 实验方法

2.1 分组与造模

将40只大鼠采用随机数字表法分为正常组、模型组、治疗组和美多芭组,每组10只。模型组、治疗组及美多芭组大鼠采用鱼藤酮葵花油乳液(将鱼藤酮、葵花油乳液按1.5∶1比例混合均匀)颈背部皮下注射,每只大鼠注射剂量为1.5 mg/(kg·d),连续注射14 d8。根据VOITENKO等9行为学标准,得分2~8分者为合格的PD模型大鼠。PD模型大鼠表现为自主行为减少,拒捕行为减弱,弓背向上抬高,单侧斜卧,行走困难。正常组大鼠正常饮食,不予处理。

2.2 给药方法

以60 mg/(kg·d)β-谷甾醇的给药剂量对大鼠进行灌胃10,美多芭组予5 mg/(kg·d)美多芭混悬液灌胃,正常组、模型组大鼠采用生理盐水灌胃。以上各组给药均为每天1次,连续14 d。

2.3 观察指标

2.3.1 大鼠一般情况

每天观察4组大鼠进食、饮水、活动、精神情况,并做好记录。

2.3.2 血清SOD、MDA含量

造模、干预成功后,所有大鼠处死留取血液,离心后取上层血清,采用SOD、MDA试剂检测4组大鼠血清中SOD、MDA含量。

2.3.3 脑黑质组织TH、Nrf2阳性细胞率

取4组大鼠脑黑质组织于多聚甲醛中固定24 h,石蜡包埋后切片。切片烘干脱蜡后进行抗原修复,再用内源性过氧化物酶孵育10 min,PBS清洗,非特异性染色阻断剂孵育10 min,一抗4 ℃孵育过夜,第2天烘箱37 ℃复温30 min,二抗孵育10 min,PBS清洗,链霉菌抗生物素蛋白-过氧化物酶孵育10 min,最后DAB染色。200 倍显微镜下观察,以棕黄色或淡黄色颗粒染色为阳性表达。每张切片随机选取5个视野,应用Image Plus 6.0软件分析图像,读取TH、Nrf2阳性反应细胞率,取平均值。

2.3.4 脑黑质组织Nrf2、HO-1、NQO-1蛋白表达量

取相应脑组织50 mg,BCA法测定蛋白浓度。经过蛋白变性、SDS-PAGE电泳、湿转转膜后,5%脱脂牛奶封闭1 h。加一抗 Nrf2(1∶1000)、HO-1(1∶1 000)、NQO-1(1∶1 000)、β-actin(1∶2 000),4 ℃摇床过夜。TBST洗涤,加入二抗稀释液(1∶5 000),室温孵育2 h,TBST洗涤,ECL显影并成像,Image Lab 4.0软件分析蛋白条带灰度值,以目的蛋白条带灰度值与β-actin条带灰度值的比值做为目的蛋白相对表达量。

2.4 统计学方法

数据采用SPSS 24.0软件进行分析。计量资料符合正态分布以(x¯±s)表示,多组间比较采用单因素方差分析;各组间的两两比较采用LSD-t检验。P<0.05表示差异有统计学意义。

3 结 果

3.1 4组一般情况比较

造模后正常组大鼠活动无差异;模型组大鼠造模7 d后出现皮毛变黄,自发活动减少,尾部僵硬,弓背向上抬高,行走困难等帕金森症状。治疗组和美多芭组大鼠一般情况有较为明显改善,皮毛较光亮,行动不便情况也有所好转。

3.2 4组血清SOD、MDA含量比较

与正常组比较,模型组大鼠血清中SOD含量降低,MDA含量升高(P<0.05)。与模型组比较,治疗组和美多芭组SOD含量升高,MDA水平降低(P<0.05)。见表1

3.3 4组脑黑质组织TH、Nrf2阳性细胞表达情况比较

与正常组比较,模型组TH、Nrf2阳性细胞率均减少(P<0.05);与模型组比较,治疗组和美多芭组TH、Nrf2阳性细胞率均增加(P<0.05)。见图1-2表2

3.4 4组脑组织Nrf2、HO-1、NQO-1蛋白表达情况

图3表3

4 讨 论

PD是高发于老年人的慢性神经退行性疾病,其主要病理特征为中脑DN凋亡导致其数目减少。造成DN凋亡的机制尚未完全明确,但氧化应激损伤起到了十分重要的作用。氧化应激造成脑内氧化与还原能力的失衡,增多的氧化产物损害中枢组织和细胞的功能,引发PD症状11。因此寻找有效的抗氧化药物成为PD治疗的有效手段。

β-谷甾醇是一种广泛存在于中草药植物根、茎、叶中的植物甾醇,具有多种生物学活性,可抑制肿瘤细胞增殖、抗衰老、修复损伤和调节血糖等多种作用12-14。尤其引人注意的是,β-谷甾醇在如阿尔茨海默病等神经退行性疾病中的作用。SHI等15的研究证实,β-谷甾醇可抑制葡萄糖氧化酶诱导的氧化应激损伤及脂质过氧化反应,从而改善因脑脂质过氧化引起的阿尔茨海默病。本实验应用β-谷甾醇干预后,治疗组大鼠自主行为、拒捕行为增多,弓背向上抬高、行动困难等PD相关症状有所改善。TH阳性细胞数反应脑内存活的多巴胺神经元的数量,本实验结果显示,运用β-谷甾醇治疗后,治疗组TH阳性细胞数与模型组比较有所增加,说明β-谷甾醇可有效保护PD大鼠多巴胺神经元细胞。

SOD是机体重要的抗氧化酶蛋白质,可有效去除氧自由基,起到重要的维持氧化和抗氧化平衡的作用。但在PD患者中,SOD含量往往降低16。实验研究证实,PD小鼠模型脑部病变区域MDA含量增加,而MDA是重要的脂质过氧化指标17。YIN等18在急性肝损伤小鼠模型中发现,β-谷甾醇可增高小鼠SOD、降低MDA的表达,起到较好的抗氧化应激作用。本研究采用β-谷甾醇干预PD大鼠模型,大鼠血清中SOD含量高于模型组,MDA浓度低于模型组。提示β-谷甾醇在PD中亦有较好的抗氧化应激作用。

为进一步明确β-谷甾醇在PD中的抗氧化作用机制,本研究采用免疫组化检测脑黑质中Nrf2表达,Western blot检测PD大鼠脑组织中的Nrf2、HO-1、NQO-1的蛋白表达情况。Nrf2是机体内重要的抗氧化调节因子19,当机体细胞出现氧化应激损伤时,磷酸化的Nrf2进入细胞核并激活下游抗氧化基因HO-1和NQO-1的表达,使HO-1和NQO-1蛋白含量上调。HO-1的抗氧化作用体现在可阻止游离胆红素参与氧化应激反应及能够激活具有抗氧化作用的胆红素20,而NQO-1可抑制ROS的生成21,两者共同发挥抗氧化损伤能力和保护细胞作用22。基于此,Nrf2及下游蛋白HO-1和NQO-1可在多种由氧化应激损伤导致的疾病中起到保护作用23。本实验结果显示,与正常组比较,模型组脑黑质中Nrf2阳性细胞数较正常组降低,β-谷甾醇治疗后,Nrf2阳性细胞数有所增加。同时,Western blot结果显示,模型组Nrf2、HO-1、NQO-1表达较正常组降低,而在β-谷甾醇干预后,Nrf2、HO-1、NQO-1表达较模型组升高,说明β-谷甾醇可通过上调Nrf2并激活其下游基因发挥抗氧化应激损伤的作用。

综上,β-谷甾醇可能通过Nrf2/HO-1信号通路起到有效去除氧自由基、降低脂质过氧化的作用,一定程度抑制PD大鼠脑组织中氧化应激损伤,从而发挥保护黑质神经元的作用。

参考文献

[1]

ARMSTRONG M JOKUN M S. Diagnosis and treatment of Parkinson disease:a review [J]. JAMA2020323(6):548-560.

[2]

SURMEIER D J. Determinants of dopaminergic neuron loss in Parkinson's disease [J]. FEBS J2018285(19):3657-3668.

[3]

CHANG K HCHEN C M. The role of oxidative stress in Parkinson's disease [J]. Antioxidants (Basel)20209(7):597.

[4]

ZHOU B SWANG H LZHANG Bet al. Licochalcone B attenuates neuronal injury through anti-oxidant effect and enhancement of Nrf2 pathway in MCAO rat model of stroke [J]. Int Immunopharmacol2021100:108073.

[5]

PETRILLO SSCHIRINZI TLAZZARO G Det al. Systemic activation of Nrf2 pathway in Parkinson's disease [J]. Mov Disord202035(1):180-184.

[6]

陈元堃,曾奥,罗振辉,. β-谷甾醇药理作用研究进展[J]. 广东药科大学学报202137(1):148-153.

[7]

SHI CLUO X MWANG J Set al. Incorporation of β-sitosterol into the membrane prevents tumor necrosis factor-α-induced nuclear factor-κB activation and gonadotropin-releasing hormone decline [J]. Steroids201596:1-6.

[8]

SHERER T BKIM J HBETARBET Ret al. Subcutaneous rotenone exposure causes highly selective dopaminergic degeneration and alpha-synuclein aggregation [J]. Exp Neurol2003179(1):9-16.

[9]

VOITENKO L PNIKONENKO A G. Modification of experimental rotenone model of Parkinson's disease [J]. Fiziol Zh(1994),201561(1):83-90.

[10]

CHEN Z JWU A CJIN H Met al. β-sitosterol attenuates liver injury in a rat model of chronic alcohol intake [J]. Arch Pharm Res202043(11):1197-1206.

[11]

GUO J DZHAO XLI Yet al. Damage to dopaminergic neurons by oxidative stress in Parkinson's disease (review) [J]. Int J Mol Med201841(4):1817-1825.

[12]

SHIN E JCHOI H KSUNG M Jet al. Anti-tumour effects of beta-sitosterol are mediated by AMPK/PTEN/HSP90 axis in AGS human gastric adenocarcinoma cells and xenograft mouse models [J]. Biochem Pharmacol2018152:60-70.

[13]

ABBAS M MAL-RAWI NABBAS M Aet al. Naringenin potentiated β-sitosterol healing effect on the scratch wound assay [J]. Res Pharm Sci201914(6):566-573.

[14]

BABU SKRISHNAN MRAJAGOPAL Pet al. Beta-sitosterol attenuates insulin resistance in adipose tissue via IRS-1/Akt mediated insulin signaling in high fat diet and sucrose induced type-2 diabetic rats [J]. Eur J Pharmacol2020873:173004.

[15]

SHI CLUO X MWANG J Set al. Incorporation of β-sitosterol into the membrane prevents tumor necrosis factor-α-induced nuclear factor-κB activation and gonadotropin-releasing hormone decline [J]. Steroids201596:1-6.

[16]

PERCÁRIO SSILVA BARBOSA A DAVARELA E L Pet al. Oxidative stress in Parkinson's disease:potential benefits of antioxidant supplementation [J]. Oxid Med Cell Longev20202020:2360872.

[17]

YADAV S KPANDEY SSINGH B. Role of estrogen and levodopa in 1-methyl-4-pheny-l-1,2,3,6-tetrahydropyridine (mptp)-induced cognitive deficit in Parkinsonian ovariectomized mice model:a comparative study [J]. J Chem Neuroanat201785:50-59.

[18]

YIN YLIU XLIU Jet al. Beta-sitosterol and its derivatives repress lipopolysaccharide/d-galactosamine-induced acute hepatic injury by inhibiting the oxidation and inflammation in mice [J]. Bioorg Med Chem Lett201828(9):1525‐1533.

[19]

GUO YYU S WZHANG C Yet al. Epigenetic regulation of Keap1-Nrf2 signaling [J]. Free Radic Biol Med201588(Pt B):337-349.

[20]

LEE D SJEONG G S. Butein provides neuroprotective and anti-neuroinflammatory effects through Nrf2/ARE-dependent haem oxygenase 1 expression by activating the PI3K/Akt pathway [J]. Br J Pharmacol2016173(19):2894-2909.

[21]

ULASOV A VROSENKRANZ A AGEORGIEV G Pet al. Nrf2/Keap1/ARE signaling:towards specific regulation [J]. Life Sci2022291:120111.

[22]

BAIRD LSWIFT SLLÈRES Det al. Monitoring Keap1-Nrf2 interactions in single live cells [J]. Biotechnol Adv201432(6):1133-1144.

[23]

XU L LZHAO BSUN S Let al. High-dose Vitamin C alleviates pancreatic injury via the NRF2/NQO1/HO-1 pathway in a rat model of severe acute pancreatitis [J]. Ann Transl Med20208(14):852.

基金资助

国家自然科学基金项目(8207152630)

福建省自然科学基金青年项目(2020J05060)

AI Summary AI Mindmap
PDF (729KB)

51

访问

0

被引

详细

导航
相关文章

AI思维导图

/