植物细胞生物膜的结构完整性与功能稳定性直接决定其逆境适应能力,其中,膜脂的脂肪酸组成是调控膜系统动态平衡的核心要素。作为膜脂的主要构成成分,脂肪酸的饱和度及其相对含量通过影响膜脂相变温度在植物响应温度胁迫过程中发挥关键作用,当脂肪酸不饱和度提升时,可有效降低膜脂由液晶态向凝胶态转变的临界温度,从而增强细胞膜在极端温度下的生理活性
[1]。根据碳链中双键数目差异,植物脂肪酸可分为饱和脂肪酸(SFA)、单不饱和脂肪酸(MUFA)和多不饱和脂肪酸(PUFA),其中,MUFA指仅在C9-C10位点含单个双键的结构(如油酸),而PUFA则指在C9位点后具有2个及以上双键的分子形式(如亚油酸、α-亚麻酸)
[2]。值得注意的是,PUFA含量与植物低温适应性呈显著正相关,其通过增加膜脂流动性和维持膜蛋白功能构象,显著提升生物膜在低温胁迫下的结构稳定性,这一分子机制已被证实是植物抗寒性形成的重要基础
[3]。
脂肪酸去饱和酶(Fatty acid desaturase,FAD)作为调控膜脂不饱和度的关键酶系,通过催化脂肪酸链特定位置双键的形成,直接决定生物膜流动性的动态调节
[4]。近年来,随着分子生物学技术的发展,研究者通过基因功能解析揭示了
FAD基因在植物抗逆中的核心作用,其调控机制研究已拓展至多个物种体系。在抗寒机制研究方面,唐桂英等
[5]于花生中鉴定的
AhFAD2-2.1/2.2基因显示低温诱导表达特性,暗示该基因家族参与冷胁迫响应;类似地,周麟笔等
[6]在马齿苋中克隆的
PoFAD6基因经低温处理后表达显著上调,进一步佐证了ω-6脂肪酸去饱和酶在低温适应中的功能保守性。水稻
OsFAD8基因敲除试验则反向验证了这一机制——突变体在低温下膜流动性显著降低,证实该基因对膜脂物理状态的调控不可或缺
[7]。在耐盐性调控方面,拟南芥
fad6突变体研究结果表明,该基因缺失不仅导致盐敏感性增加,还加剧了高盐胁迫下的氧化损伤,揭示
FAD6通过维持膜完整性参与盐胁迫防御
[8]。番茄
LeFAD3基因的过表达试验进一步证实,该机制具有跨物种普适性,转基因植株表现出更强的盐胁迫耐受性
[9]。而在抗旱机制探索中,ZHANG等
[10]研究发现,烟草过表达
FAD3/FAD8可通过增强膜脂稳定性,显著提升植株对干旱及渗透胁迫的适应能力,这一发现与菠萝
AcoFAD2转基因株系抗寒性增强的现象共同表明,
FAD基因具有多重抗逆功能
[11]。值得注意的是,
FAD基因家族成员的功能存在特异性分化。例如,番茄
LeFAD7基因沉默株系表现出对高温胁迫的适应性改善,提示不同
FAD亚型可能通过差异调控膜脂组成参与温度胁迫的双向响应
[12]。这些研究成果系统揭示了
FAD基因家族在植物逆境应答中的核心地位,但当前对禾本科作物特别是高粱
FAD基因的功能解析仍存在空白,制约相关抗逆分子机制的深入探索。
高粱(
Sorghum bicolor L.)是禾本科高粱属1年生草本植物,是世界第五大禾谷类作物,同时也是极为重要的旱粮作物
[13],被广泛应用于酿酒、食用、饲料、制糖及淀粉制造等方面,具有很高的应用价值
[14]。当前,随着环境恶化问题不断加剧,面临的非生物胁迫呈现出频率增加、程度加深的双重挑战。因此,系统研究高粱抗逆基因功能及其胁迫响应机制具有重要科研价值。现有研究表明,脂肪酸去饱和酶(FAD)在植物生长调控及逆境响应中发挥不可替代的生物学功能。为解析脂肪酸去饱和酶(FAD)在高粱基因组中的分布特征,本研究基于高粱全基因组数据,利用生物信息学分析工具,系统开展了
FAD基因家族鉴定工作。通过对其成员理化性质、系统发育关系、染色体定位及基因结构等进行多维度预测分析,构建了完整的FAD家族图谱,旨在为后续基因克隆与功能验证研究提供重要数据支撑。
1 材料和方法
1.1 试验材料
高粱全基因组数据及其蛋白质序列和注释文件从Ensembl Plants数据库(
http://plants.ensembl.org/index.html)获得;同时根据已发表的参考文献,从MSU-RGAP数据库(
http://rice.plantbiology.msu.edu/)获取20条水稻FAD蛋白序列
[15]。
1.2 试验方法
1.2.1 SbFAD基因家族成员鉴定
通过同源比对与结构域特征分析相结合的策略筛选高粱脂肪酸去饱和酶(FAD)基因家族成员。首先,以水稻MSU-RGAP数据库中的20条FAD蛋白序列为查询序列,采用Blastp程序对高粱参考基因组蛋白质数据库进行同源比对,初步获取高粱FAD候选基因。随后基于Pfam数据库中的FA_Desaturase(PF00487)和FA_Desaturase2(PF03405)结构域隐马尔可夫模型(HMM),运用HMMER 3.0软件对高粱全基因组蛋白序列进行特异性结构域筛选,通过双重验证筛选具有典型FAD功能结构域的候选蛋白。
1.2.2 SbFAD基因家族成员染色体定位分析
从高粱GFF3基因组注释文件中,提取全部高粱
FAD基因家族成员在染色体上的分布情况,并利用生物信息软件TBtools绘制染色体定位分布图
[16-17]。
1.2.3 SbFAD基因家族成员的结构分析
通过生物信息学方法系统解析高粱FAD基因家族特征。基于NCBI保守结构域数据库(Conserved domain database,CDD)的Batch CD-Search工具鉴定高粱FAD蛋白保守结构域组成,采用TBtools进行可视化分析;进一步通过MEME在线平台对高粱FAD蛋白序列进行保守基序预测(参数设定:Motif数=10),结合基因组注释文件,运用TBtools整合基序分布与基因结构特征,最终构建高粱FAD家族保守基序及基因结构模式图。
1.2.4 SbFAD基因家族成员的系统进化分析
基于高粱与水稻FAD蛋白序列的整合分析,采用MEGA11进行多序列比对,并通过Neighbor-Joining算法(参数:Poisson模型、pairwise deletion、1 000次Bootstrap)构建系统发育树,系统解析SbFAD基因和OsFAD基因间的进化亲缘关系与分化模式。
1.2.5 SbFAD基因家族成员的亚细胞定位及二级结构预测
为了了解高粱
FAD基因家族成员在细胞中的位置分布情况,利用在线生物信息学工具WoLF PSORT(
https://wolfpsort.hgc.jp/)对高粱FAD蛋白进行预测分析。同时利用生物信息学在线工具SOPMA对高粱FAD蛋白质进行二级结构预测。
1.2.6 SbFAD基因家族成员的顺式作用元件预测及同源性分析
基于生物信息学方法解析高粱FAD基因调控机制与进化特征。首先提取24个高粱FAD基因启动子区(上游2 000 bp),通过PlantCARE在线平台预测顺式作用元件,并采用TBtools实现可视化分析;同时运用MCScanX算法构建拟南芥、水稻、玉米与高粱基因组共线性图谱,结合物种内直系同源基因分析(TBtools Onestep MCScanX模块),通过Advanced Circos功能进行多维进化关系可视化。
1.2.7 SbFAD基因家族表达模式预测分析
利用Expression Atlas(
https://www.ebi.ac.uk/gxa/home)获取高粱叶片、花序等多组织转录组数据,采用TBtools软件完成数据归一化处理与差异分析,运用热图功能模块呈现表达模式。
2 结果与分析
2.1 SbFAD基因家族成员的基本信息
通过前述同源比对与结构域鉴定,最终在高粱基因组中确定24个具有完整FAD保守结构域的基因家族成员(
表1)。基于染色体物理定位结果,按各基因组在染色体上的线性排列顺序,将其系统命名为
SbFAD01~
SbFAD24。蛋白质理化性质分析结果显示,该家族成员编码的氨基酸长度为325~480个,其中,SbFAD02、SbFAD11(397个)、SbFAD05、SbFAD08(408个)、SbFAD07、SbFAD17(414个)及SbFAD01、SbFAD23(429个)呈现同源基因对等长现象。分子质量大小为37.38~52.95 ku,理论等电点(pI)为5.26~9.33,其中,SbFAD03、SbFAD07、SbFAD10、SbFAD11、SbFAD12、SbFAD13、SbFAD18、SbFAD23、SbFAD24等9个成员pI<7,显示酸性特征,其余15个成员pI>7,具碱性特性。蛋白质稳定性分析结果表明,SbFAD09、SbFAD14、SbFAD15、SbFAD17、SbFAD20、SbFAD22等6个成员的不稳定系数<40,符合稳定蛋白标准,其余18个成员不稳定系数为33.09~56.81,属非稳定蛋白。亲疏水性分析结果揭示,除SbFAD05、SbFAD06和SbFAD09外,其余21个成员均具有典型亲水特性(GRAVY<0)。
2.2 SbFAD基因家族成员的系统进化分析
水稻20个OsFAD蛋白与高粱24个SbFAD蛋白多序列比对,系统发育聚类分析结果显示(
图1),
SbFAD基因家族可分为3个进化亚族,亚家族Ⅰ(GroupⅠ)包含40个成员:高粱22个,水稻18个;亚家族Ⅱ(GroupⅡ)包含3个成员:高粱2个,水稻1个;亚家族Ⅲ(GroupⅢ)仅包含1个水稻成员。值得注意的是,各亚族内部存在显著分化,形成多个独立进化分支,暗示该基因家族在进化历程中经历了功能特异性分化。系统发育拓扑结构表明,同亚族成员可能具有功能保守性,而分支节点的多样性则揭示了不同谱系间存在适应性进化差异。
2.3 SbFAD基因家族成员的结构特征分析
2.3.1 SbFAD蛋白结构域可视化分析
基于Pfam在线平台对24个SbFAD蛋白进行保守结构域预测,结合TBtools软件完成保守结构域可视化分析,结果显示(
图2),SbFAD04、SbFAD05、SbFAD06、SbFAD08、SbFAD09、SbFAD14等13个成员蛋白具有FA_desatursae(PF00487)结构域,其余11个成员均含FA_desatursae_2(PF03405)结构域。SbFAD04、SbFAD05、SbFAD08、SbFAD14、SbFAD15等9个成员蛋白的5'端存在DUF3474(PF11960)结构域;SbFAD06、SbFAD09蛋白的5'端存在Cyt-b5(PF00173)结构域,该结构域可能包含酶活性关键氨基酸位点;SbFAD19的5'端鉴定出参与C4羧基化的Lipid_DES(PF08557)结构域;此外,SbFAD09、SbFAD21蛋白的5'端检测到跨膜结构域(Transmembrane_domain)。
2.3.2 SbFAD基因家族成员的保守基序及基因结构分析
为了分析SbFAD基因家族成员的结构特征,使用在线工具MEME数据库预测了SbFAD家族成员蛋白的10个保守基序,即Motif1、Motif2、Motif3、Motif4、Motif5、Motif6、Motif7、Motif8、Motif9和Motif10(
图3)。结果显示(
图4-A),SbFAD01、SbFAD02、SbFAD03、SbFAD07、SbFAD10、SbFAD11、SbFAD12、SbFAD18、SbFAD20、SbFAD24均携带Motif2、Motif3、Motif5、Motif7、Motif8、Motif10;SbFAD04、SbFAD05、SbFAD08、SbFAD14、SbFAD15、SbFAD16、SbFAD17、SbFAD21、SbFAD22、SbFAD23均具有Motif1、Motif4、Motif6、Motif9;SbFAD06和SbFAD19均含Motif1、Motif4;SbFAD13含Motif2、Motif5;SbFAD9含Motif1、Motif4、Motif9。24个成员间无共有基序。结合进化分析发现,同一亚家族内成员的蛋白在基序种类、排列方式和数量上基本一致,这表明同一亚家族内成员的蛋白序列高度保守。但在不同的亚家族间,SbFAD家族成员的蛋白在基序种类、排列方式和数量上存在很大的差异,这表明一部分基因在进化过程中发生了功能分化。
为阐明
SbFAD基因家族成员的基因结构特征,对
SbFAD基因家族成员进行了内含子—外显子结构分析,结果如
图4-B所示,24个
SbFAD家族基因所含的外显子及内含子数量差异比较大,外显子数量为1~10个,内含子数量为0~9个。
SbFAD21所包含的外显子和内含子最多,分别为10、9个;
SbFAD02、SbFAD05、SbFAD06、SbFAD07、SbFAD09、SbFAD14、SbFAD15和
SbFAD24仅存在1个外显子,不存在内含子;
SbFAD01、SbFAD10、SbFAD12和
SbFAD20均分别存在2个外显子和1个内含子;剩余的
SbFAD家族基因分别存在3~8个外显子和2~7个内含子。
2.4 SbFAD基因家族成员的染色体分布情况
为了了解
SbFAD基因家族成员在高粱基因组中的分布情况,利用生物信息学软件TBtools对24个家族成员进行了可视化分析。从
图5可以看出,除了第9号染色体以外,24个成员分别不均匀地定位到其他9条染色体上,其中,第1、2、4号染色体上定位的成员最多,分别为4个家族成员;而第10号染色体上定位的成员最少,为1个家族成员;第3号染色体上定位了3个家族成员;第5、6、7、8号染色体上均定位了2个成员。综上所述,第9号染色体上未定位到
SbFAD基因家族成员,可能是因为高粱在进化的过程中发生了
SbFAD基因片段的丢失。
2.5 SbFAD基因家族成员的亚细胞定位及二级结构预测
由
表2可知,
SbFAD01、
SbFAD02、
SbFAD03等17个
SbFAD基因家族成员被预测定位在叶绿体上,
SbFAD05、
SbFAD09、
SbFAD14等5个成员定位在质膜上,其中,
SbFAD06和
SbFAD19分别定位在内质网和细胞质中。由
表3可知,
SbFAD基因家族成员的二级结构有
α-螺旋、
β-折叠、无规则卷曲和延伸链4种类型,其中,
α-螺旋和无规则卷曲的占比较高,因此,可以推测出
SbFAD基因家族成员的二级结构主要以
α-螺旋和无规则卷曲为主。
2.6 SbFAD基因家族成员启动子顺式作用元件分析
对24个
SbFAD基因启动子区(转录起始位点上游2 kb)进行顺式调控元件预测,重点解析非生物胁迫和植物激素相关元件。如
图6所示,激素应答元件包括TCA-element(水杨酸)、ABRE(脱落酸)、TATC-box/GARE-motif/P-box(赤霉素)、TGACG-motif(茉莉酸)及TGA-element/AuxRR-core(生长素),揭示
SbFADs可能通过激素互作网络调控高粱生长发育。胁迫相关元件涵盖LTR(低温)、MBS(干旱)、ARE(缺氧)和TC-rich repeats(防御响应),证实该基因家族具有多途径应答环境胁迫的分子基础。同时鉴定到CAT-box(分生组织发育)和Circadian(昼夜节律调控元件),提示其在代谢调控中的多功能性。值得注意的是,激素相关元件在启动子区域呈现高密度分布,暗示该家族基因可能通过整合多种激素信号协调高粱的生长发育与逆境适应。
2.7 SbFAD基因的复制和同源性分析
基因组进化研究表明,全基因组复制事件是推动物种表型创新的重要进化力量。在基因家族扩张过程中,串联复制与片段复制通常作为主要驱动力。为阐明
SbFAD基因家族的进化动态,对24个
SbFAD基因进行基因组定位与共线性分析,结果显示(
图7),24个
SbFAD基因在染色体上呈离散分布,未观察到局部串联复制。值得注意的是,通过跨染色体比对检测到7对片段重复同源基因:
SbFAD04和
SbFAD08、SbFAD04和
SbFAD16、SbFAD04和
SbFAD22、SbFAD06和
transcript:
OQU80382、SbFAD11和
SbFAD18、SbFAD12和
SbFAD18、
SbFAD16和
SbFAD22,而在
SbFAD06和
transcript:
OQU80382这个共线基因对中,
transcript:
OQU80382基因不是本家族的成员,但却与本家族的基因
SbFAD06存在同源性关系,序列提取和比对结果表明,
transcript:
OQU80382是一个很短的基因,但和
SbFAD06成员的5'端序列具有高度的同源性,可能是因为基因在进行大片段复制的过程中发生了序列的丢失。综上,基因的片段复制事件在
SbFAD基因家族的扩张中起到了一定的推动作用。
基于跨物种基因组共线性比较策略,选取双子叶模式生物拟南芥及单子叶近缘物种水稻、玉米,系统解析
SbFAD基因家族的进化保守性。同源基因比对结果显示(
图8),高粱—拟南芥、高粱—水稻、玉米—高粱分别存在2、26、27对直系同源
FAD基因。
值得注意的是,SbFAD04、SbFAD06、SbFAD08、SbFAD11、SbFAD12、SbFAD14、SbFAD16、SbFAD18、SbFAD19、SbFAD20、SbFAD21、SbFAD22等12个基因在单子叶物种间呈现高度保守性,其同源对应关系完整保留。而高粱与双子叶植物仅保留2对同源基因,揭示单、双子叶植物间FAD基因家族进化路径存在显著分歧。结合共线性网络密度分析结果,揭示SbFAD基因更可能起源于单子叶植物内部同源基因的功能特化,表明FAD家族在禾本科作物的进化过程中,可能具有较高的保守性。
2.8 SbFAD家族基因在不同生长发育时期不同组织中的表达
基于转录组数据的表达谱分析结果显示(
图9),高粱
SbFAD基因家族呈现显著的组织表达异质性。在叶片发育调控方面,
SbFAD01、
SbFAD03、
SbFAD05、
SbFAD07、
SbFAD09、
SbFAD10、
SbFAD12、
SbFAD13、
SbFAD16、
SbFAD17、
SbFAD20、
SbFAD22、
SbFAD24等13个基因表现为沉默状态,而热图聚类Ⅰ中的
SbFAD04、
SbFAD11、
SbFAD15基因则显示高强度表达,提示其可能调控叶片形态建成等发育过程,具有作为生育期相关候选基因的研究价值。在生殖发育阶段,
SbFAD03、
SbFAD15、
SbFAD18基因在早期花序中特异性高表达,暗示其参与穗分化启动的分子调控;胚乳组织中
SbFAD11的显著活跃表达,可能与储藏物质合成密切相关。值得注意的是,胚芽组织表现出最广泛的基因激活模式,
SbFAD01、
SbFAD02、
SbFAD03、
SbFAD04、
SbFAD06、
SbFAD10、
SbFAD11、
SbFAD14、
SbFAD15、
SbFAD17、
SbFAD18、
SbFAD19、
SbFAD20、
SbFAD21、
SbFAD23、
SbFAD24等16个基因呈现梯度表达特征,其中,
SbFAD11与
SbFAD15的表达丰度最高,预示二者在胚芽细胞增殖或分化中发挥核心作用。此外,
SbFAD05和
SbFAD13在所有检测组织(包括早期花序、胚乳、叶片、雌蕊及花药)中均无表达信号,这种严格的组织沉默特性可能与其功能特异性或诱导表达条件相关。上述表达模式差异结果表明,
SbFADs家族成员通过时空特异性调控网络参与高粱不同器官的发育进程。
3 结论与讨论
病虫害、盐、极端温度等生物和非生物胁迫对植物生长和作物产量造成了重大限制。脂肪酸及其衍生物是一种独特的生物活性物质,在生物系统中具有广泛的功能。它们不仅参与调节储能物质和细胞膜质组成,还广泛参与调节植物基础免疫、效应诱导抗性和系统抗性等防御途径,从而提高植物对逆境胁迫的抗性
[18]。在高等植物中,最常见的不饱和脂肪酸(UFAs)是3种18碳(C18)脂肪酸,即油酸(18∶1)、亚油酸(18∶2)和α-亚麻酸(18∶3)
[19]。FAD可以催化饱和脂肪酸(SFAs)转化为UFAs。其中,ω-3脂肪酸去饱和酶(ω-3 FAD)
[20]和ω-6脂肪酸去饱和酶(ω-6 FAD)
[21]分别是18∶3和18∶2生物合成的关键酶。Omega-FAD被认为主要通过UFAs诱导的膜稳定来促进植物的抗逆性
[21-22]。
近年来,随着基因组学和生物信息学的快速发展,研究人员已经在多个物种中鉴定到不同数量的
FAD家族成员,如从小麦
[23]、玉米
[24]、棉花
[25]、黄瓜
[26]、番茄
[27]、水稻
[15]、亚麻
[28]、甜荞麦
[29]、茄子
[3]、花生
[30]、猕猴桃
[31]、毛白杨
[32]和毛竹
[33]分别鉴定到68、30、29、23、26、20、43、10、38、31、26、32、42个
FAD家族成员。为了深入了解FAD在高粱基因组中的分布情况,本研究利用高粱基因组数据作为研究材料,通过DNA同源序列的比对筛选鉴定到24个基因作为高粱
FAD家族的成员,这与从黄瓜中鉴定到的
FAD成员非常接近,比黄瓜多了1个成员,但高粱的
FAD成员数量介于水稻和玉米之间,比水稻多4个成员,比玉米少6个成员。由此可见,
FAD基因数量的不同,可能是由于不同物种在进化和环境选择过程中发生了基因组大小的变化而导致的。
通过染色体定位分析发现,除了第9号染色体外,24个高粱
FAD家族成员不均匀分布在其他9条染色体上,其中,第1、2、4号染色体上定位的成员最多,而第10号染色体定位成员最少;通过观察发现,在第4、5、8号染色体上存在2个成员之间紧密连在一起的现象,这可能是由高粱在进化过程中基因发生了近距离复制而导致的。理化性质分析结果发现,大部分FAD成员均为亲水性蛋白,而且氨基酸的数量越多,FAD成员的分子质量就越大,这与茄子和亚麻的研究结果较为相似
[3,28]。亚细胞定位结果表明,大部分FAD成员分布在叶绿体中,而YASEMIN等
[34]对向日葵中的FAD成员也进行了研究,发现FAD成员主要定位在叶绿体和内质网膜中,这与本结果非常相似。结合系统发育分析可以看出,位于同一亚家族内的成员之间具有相同的Motif组成和基因结构,甚至多个Motif的排序都是相同的,但位于不同亚家族成员之间的蛋白Motif排列和数量存在一定的差异,这与毛白杨
[32]的研究结果较为类似;同时24个
SbFAD成员与20个
OsFAD成员之间没有出现明显的分化现象,其中,亚家族Ⅰ中的
SbFAD成员和
OsFAD成员最多,
SbFAD成员为22个,这表明
SbFAD基因在进化过程中可能发生了物种的特异性扩张,该研究结果与番茄
SlFAD中亚家族Ⅲ、Ⅳ
[35]的结果较为类似。
蛋白结构域分析结果显示,24个SbFAD成员中13个含FA_desatursae(PF00487),11个含FA_desatursae_2(PF03405)。部分成员携带Cyt-b5、DUF3474和Lipid_DES等特异性结构域,可能与其功能分化相关,与玉米
ZmFAD[24]研究结果一致。顺式作用元件通过与转录因子互作调控基因转录的精确起始及效率,在植物基因表达调控中具有重要作用
[36]。该研究发现,
SbFAD基因家族启动子区域包含与干旱、低温、防御应激、激素及光响应相关的顺式作用元件,推测这些元件可能通过结合特定转录因子,在高盐、干旱、低温、机械损伤及ABA胁迫下调控
SbFAD基因表达,进而增强高粱对生物、非生物胁迫的适应性。此外,基因组共线性分析结果揭示,高粱存在7对
FAD基因片段复制事件,玉米和水稻分别为3、4对,未检测到串联复制基因存在。表达谱分析结果表明,
SbFAD04、
SbFAD11和
SbFAD15在叶片中呈高丰度表达,提示其可能参与叶片形态建成调控,因此,这3个基因具备作为生育期调控候选基因的研究潜力。
本研究通过全基因组筛选技术,在高粱中系统鉴定出24个脂肪酸去饱和酶(FAD)基因家族成员。通过整合生物信息学分析方法,全面揭示了该基因家族成员的染色体定位信息、基因结构特征(包括外显子—内含子分布模式)及理化性质参数(如分子质量、等电点、亲疏水性等)。进一步结合已有转录组数据库资源,系统解析了SbFAD基因在不同组织器官下的时空表达模式。研究构建了涵盖基因进化关系、保守结构域分布及顺式作用元件的多维分析体系,不仅完善了高粱FAD基因家族的功能注释体系,更为深入解析该基因家族在植物抗逆调控网络中的作用机制提供了重要理论依据,为后续开展基因功能验证及作物抗逆遗传改良奠定了分子基础。
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