梨小食心虫(
Grapholita molesta)属鳞翅目(Lepidoptera)卷蛾科(Tortricidae),是一种全球性的重要果树害虫
[1],可严重危害桃、梨、苹果等多种经济果树
[2]。强大的生殖潜力是该虫暴发和扩张的重要原因,目前国内外对梨小食心虫生殖生理的研究主要集中在生殖系统解剖和卵巢发育分级上
[3],生殖相关基因的研究较少。卵黄原蛋白(Vitellogenin,Vg)是昆虫一类重要的生殖蛋白,大部分昆虫的Vg在脂肪体产生,进入血淋巴后被卵母细胞表面的卵黄原蛋白受体(Vitellogenin receptor
,VgR)捕获,通过胞吞作用进入到细胞内,经过进一步的加工和修饰,最后以晶体的形式在卵内沉积为卵黄蛋白,为胚胎的发育提供营养,这一过程被称为卵黄发生
[4]。
自1954年Telfer在惜古比天蚕蛾(
Halophora cecropia)中发现第1个Vg蛋白以来
[5],人们对
Vg的研究逐渐增多,内容涵盖分子特性、生理功能与调控通路等。
Vg基因的序列全长一般为6~7 kb,编码蛋白分子质量约为200 ku,属于载脂蛋白超家族
[6],最显著的特征是在N末端存在聚丝氨酸区,此区域附近通常含有切割位点R/KXXK/R,是一些内源蛋白酶的识别位点
[7],此外还有CL/ICG基序、数量不等的半胱氨酸残基等保守结构域。
Vg基因具有性别、发育时期和组织表达特异性,大部分昆虫的
Vg在雌虫脂肪体特异表达,少部分在昆虫其余部位也有表达,比如意大利蜜蜂(
Apis mellifera)的卵巢及雄峰和工蜂的脂肪体
[8-9]、草地贪夜蛾(
Spodoptera frugiperda)的表皮
[10]。
Vg的表达合成与卵黄发生紧密相关,所以一般昆虫的
Vg在卵巢发育的透明期和卵黄沉积期开始表达,成熟期达到高峰,到产卵末期开始下降,区别在于达到峰值的时间不同。目前,
Vg被证明除了为昆虫卵巢和胚胎的发育提供营养外,在一些社会性昆虫中还有信息传递
[11]、调节行为
[12]和介导免疫
[13-14]等功能。
Vg的合成与沉积是昆虫生殖活动中的关键环节,直接影响到昆虫的卵巢发育和卵子发生
[15-16],目前,
Vg基因已成为害虫控制的重要潜在靶标,但梨小食心虫未见相关研究报道。本研究克隆鉴定了梨小食心虫
Vg全长序列并进行生物信息学分析,利用qRT-PCR分析
Vg基因在梨小食心虫不同发育阶段、性别和组织中的表达模式,旨在为该基因功能的深入研究奠定基础。
1 材料和方法
1.1 试验材料
供试梨小食心虫来自山西农业大学植物保护学院生物安全与生物防治实验室,饲养条件为温度26 ℃、光周期L∶D=16 h∶8 h、相对湿度60%~80%。幼虫以人工饲料喂养,成虫用10%的蜂蜜水浸润棉花球饲喂。
1.2 试验方法
1.2.1 RNA提取和cDNA合成
在液氮中,用电动研磨棒快速研磨梨小食心虫各个时期的样品至粉末,采用Trizol(TaKaRa,Dalian,China)按步骤提取总RNA。通过琼脂糖凝胶电泳和超微量蛋白核酸分析仪(BioDrop,Cambridge,UK)检测总RNA的质量和浓度。使用HiScript®Ⅲ 1stStrand cDNA Synthesis Kit(+gDNA wiper)反转录试剂盒(Vazyme,Nanjing,China)按说明书步骤反转录获得cDNA,于-20 ℃保存备用。
1.2.2 梨小食心虫Vg的克隆
根据实验室已获得梨小转录组数据,以NCBI其他已报道昆虫Vg蛋白序列建立本地BLAST数据库,比对筛出预测序列,利用Primer Premier 5软件设计扩增引物,分3段进行扩增(
图1)。
利用Beacon Designer 7软件设计特异性定量引物,所有引物均由上海生工生物工程有限公司合成(
表1)。PCR反应程序如下:95 ℃预变性5 min;95 ℃变性15 s,50 ℃退火15 s,72 ℃延伸2 min,35个循环;72 ℃终延伸5 min。用1%琼脂糖凝胶电泳分离,经胶回收和连接转化后筛选阳性克隆,送于上海生工生物工程有限公司测序,测序正确后拼接序列。
1.2.3 梨小食心虫Vg生物信息学分析
利用NCBI的BLAST功能将其与数据库其他物种
Vg序列进行同源性序列比对。通过在线工具ProtParam(
http://web.expasy.org/protparam/)预测其理论分子量、等电点、氨基酸组成等。采用NCBI的CDD(
https://www.ncbi.nlm.nih.gov/Structure/cdd/wrpsb.cgi)在线程序进行保守结构域分析。采用SignalP 4.1 Server(
http://www.cbs.dtu.dk/services/SignalP/)对蛋白质的信号肽进行预测。使用MEGA 7.0软件以邻接法(Neighbor-Joining)对4个目(鳞翅目、鞘翅目、半翅目和双翅目)16个物种的Vg蛋白质序列构建系统进化树,重复1 000次
[17]。
1.2.4 梨小食心虫Vg的时空表达分析
利用qRT-PCR技术检测梨小食心虫GmVg在不同时期(卵、幼虫、蛹和成虫)以及成虫不同性别和组织(头、脂肪体和卵巢)的表达情况。具体取样时期如下:卵,1~3 d混样;幼虫和蛹均为整个龄期的混样;成虫,羽化后24、48、72、120 h的雌虫。组织中的头部、脂肪体和卵巢均来自羽化一天内未交配的雌虫;雄虫样品为同一批羽化的整头雄成虫。所有样品均设置3个生物学重复。
以β-tubulin为内参,使用ABI 7500实时荧光定量PCR仪(Applied Biosystems,Foster City,CA,USA)完成qRT-PCR反应。反应体系为:2✕ChamQ Universal SYBR qPCR Master Mix 10 μL,上下游引物各0.8 μL,10×cDNA 1 μL,ddH2O补至20 μL。反应程序为:95 ℃ 3 min;95 ℃ 15 s,50 ℃ 30 s,72 ℃ 30 s,40次循环;熔解曲线程序:95 ℃ 15 s;60 ℃ 60 s,95 ℃ 30 s,60 ℃ 15 s。设置3个技术重复。
1.3 数据分析
采用2-ΔΔCt法计算基因的相对表达量,使用SPSS.26.0软件对试验数据进行单因素方差分析,应用Tukey's HSD法进行差异显著性检验(P<0.05),通过GraphPad Prism 8软件绘图。
2 结果与分析
2.1 GmVg基因克隆
以梨小食心虫雌成虫腹部cDNA模板,分3个部分进行PCR扩增,经琼脂糖凝胶电泳检测,3个部分均得到预期大小条带(
图2),分别为2 291、1 904、2 020 bp。测序正确后进行拼接,命名为
GmVg。
2.2 GmVg序列分析
克隆获得GmVg序列全长为5 573 bp(Gen Bank登录号为OQ545589),开放阅读框(ORF)为5 364 bp,编码1 787个氨基酸,预测蛋白质分子质量为204.1 ku,预测等电点为8.79,信号肽长度为15个氨基酸,具体序列为MKLLVLATFVALVAS,分子式为C9041H14090N2544O2743S57,氨基酸组成中丙氨酸(Ala)、谷氨酸(Gln)和丝氨酸(Ser)占比最大,分别为8.2%、7.9%和7.8%。酸性残基的数量(Asp+Glu)为187个,碱性残基的数量(Arg+Lys)为204个。
将
GmVg与其他鳞翅目昆虫,包括大豆食心虫(
Leguminivora glycinivorella)、云杉卷叶蛾(
Choristoneura fumiferana)、旖凤蝶(
Iphiclides podalirius)、月形天蚕蛾(
Actias selene)、阿波罗蝶(
Parnassius apollo)、玉带凤蝶(
Papilio polytes)、柑橘凤蝶(
Papilio xuthus)和冬尺蠖蛾(
Operophtera brumata)的
Vg氨基酸序列进行比对,结果显示,梨小食心虫与大豆食心虫的
Vg蛋白序列相似度最高,为84.76%,与其余昆虫
Vg蛋白序列相似度均在55%~58%(
图3)。此外,DGXR、半胱氨酸残基和聚丝氨酸基序在这些鳞翅目昆虫中高度保守。
2.3 系统发育分析
GmVg与其他物种
Vg氨基酸序列的系统发育和保守结构域分析结果如
图4所示。
通过NCBI的CDD在线工具分析发现,梨小食心虫Vg蛋白序列中存在3个相对保守的结构域,N末端存在Vitellogenin-N(30—746位氨基酸)结构域,DUF1943结构域(787—1 050位氨基酸),C末端存在VWD(Von Willebrand factor type D domain)结构域(1 455—1 625位氨基酸)(
图4)。16种昆虫的
Vg保守基序分析发现,Motif 1~Motif 5最保守,Motif 6在鳞翅目昆虫中高度保守,Motif 10在不同物种中数目差异较大(
图4)。
利用软件MEGA 7.0,采用NJ法构建系统发育树,结果表明(
图4),梨小食心虫Vg与其他鳞翅目昆虫聚为一支,其中与小卷蛾亚科(Olethreutinae)的大豆食心虫Vg亲缘关系最近,与多序列比对结果相同。所得到的系统发育树与传统分类学结果一致,这在一定程度上反映了梨小食心虫Vg在物种中的进化位置和亲缘关系。
2.4 GmVg在梨小食心虫不同发育阶段的表达模式
GmVg在成虫期的表达量显著高于卵期、幼虫期和蛹期的表达量,且卵期和幼虫期的表达水平极低。从蛹期开始,
GmVg表达量开始升高,羽化后24 h
GmVg的表达量达到峰值,之后4 d内
GmVg表达量与羽化后24 h
GmVg的表达量相比显著降低,但依旧维持在较高的水平(
图5)。
2.5 GmVg在梨小食心虫不同组织和性别中的表达模式
GmVg在梨小食心虫雌虫的头部、卵巢和脂肪体中表达具有组织特异性,
GmVg在雌虫脂肪体显著高表达,其表达量分别是头部和卵巢表达量的21.49倍和16.4倍(
图6)。同时
GmVg的表达具有性别特异性,在雄成虫中表达量极低(
图6)。
3 结论与讨论
卵黄原蛋白为大部分卵生生物胚胎的发育提供营养,其正确合成与沉积是种群繁衍的基础
[18]。本研究克隆鉴定了梨小食心虫
GmVg全长序列,序列分析发现信号肽长度为15,与草地贪夜蛾(
Spodoptera frugiperda)
[10]一致,斜纹夜蛾(
Spodoptera litura)
Vg信号肽长度为17
[19],烟粉虱(
Bemisia tabaci)为28
[20]。保守结构域分析发现,发现所有昆虫Vg均含有Vitellogenin-N、DUF1943和VWD共3个保守结构域。不同目的昆虫Vg保守基序数目不同,其中,Motif 6(YGHCHHRVDYHFGVPEGAEWTGTAHKPEEDQFIKRATVSRILAGKQGPIY)在鳞翅目中高度保守,在其他目昆虫中未见该基序。Motif 10(SSSSSSSSSSSSSES)为连续的丝氨酸,CHEN等
[21]研究表明,此区域进化速率较快。本研究发现,梨小食心虫和大豆食心虫Vg中只含有1个Motif 10,其他鳞翅目昆虫均存在2个,半翅目与双翅目昆虫Vg序列C端也发现此基序,但是数量不一,而鞘翅目中不存在Motif 10。DGXR和半胱氨酸残基对Vg蛋白寡聚化反应是必需的
[22],在鳞翅目昆虫中高度保守,与本研究结果一致。此外发现,GICG基序在梨小食心虫中突变为GVCG,与小菜蛾突变情况一致
[23],其原因和影响有待进一步探讨。
GmVg在梨小食心虫成虫期的表达量显著高于其他发育时期,亚洲玉米螟(
Ostrinia furnacalis)
[24]、草地贪夜蛾
[10]和大眼长蝽(
Geocoris pallidipennis)
[25]等昆虫
Vg基因的表达量也均在成虫期最高,区别在于表达高峰期不同,梨小食心虫
Vg表达高峰为羽化后第1天;与亚洲玉米螟相同,草地贪夜蛾为羽化后第4天;大眼长蝽在羽化后第22天达到高峰,推测这可能与昆虫卵黄发生的时期不同有关。众多研究表明,昆虫的Vg在雌虫脂肪体特异性高表达
[23-26],本研究结果为与上述结论一致。本研究发现,
GmVg除在雌虫中表达外,其在整头雄虫中也可被检测到,但相关研究报道较少,
GmVg在雄虫中的功能还有待进一步研究。卵黄发生是昆虫生殖活动中最重要的一环,而
Vg是其中的关键因子,可作为害虫生殖调控的靶标基因。向杏仁蛾(
Cadra cautella)注射
Vg-dsRNA后,
Vg表达量下调,产卵量显著降低,且由于卵黄沉积受到影响,大量的卵不能正常孵化
[26]。小菜蛾注射
Vg-dsRNA后,羽化5 d内的总产卵量也显著下降
[23]。此外,它还是一个多效性蛋白,将工蜂(
Apis mellifera)的
Vg干扰后,改变了其生命周期,使其提前进行觅食活动,并伴随其他一些行为和生理变化
[27]。在梨小食心虫中
Vg是否具有这些功能,还需进一步利用如RNAi等技术进行验证。
本研究克隆鉴定了梨小食心虫GmVg基因,明确了GmVg在梨小食心虫不同发育时期、性别和不同组织的表达模式,为梨小食心虫GmVg功能的深入研究及作为害虫防治潜在靶点的开发奠定了一定理论基础。