土壤重金属污染问题,特别是蔬菜等作物种植的耕地重金属污染日益受到人们的关注,部分地区蔬菜重金属污染已构成食品安全问题,严重威胁到人体健康
[1]。在重金属污染中,Pb是最普遍及对环境影响最严重的元素之一,对人体的危害主要表现在影响中枢神经,导致大脑的发育迟缓或病变
[2-3]。研究表明,重金属对植物的生长表现出抑制作用,影响作物的品质和产量
[4]。大量研究表明,重金属Pb进入植物体内,对植物的各项生理指标造成了一定的影响,如对植物种子的发芽率、发芽势表现出负相关关系
[6-7],对胚根的抑制程度显著大于芽
[8]。
油菜素内酯(EBR)作为第六大植物激素,可以参与新陈代谢,促进幼苗长成,提高作物品质。有研究表明,外源EBR在提高植物对逆境胁迫的抗性和耐受性方面也起着积极作用
[9-10]。EBR能够通过增强酶的活性,清除因逆境胁迫产生多余的活性氧(ROS),保护植物细胞免受氧化伤害,维持膜系统的稳定性和完整性
[11]。
禤维言
[12]研究了花生在不同时期添加EBR的生长情况,结果表明,油菜素内酯可以促进花生生长,提高果实产量。赵红等
[13]研究添加不同浓度2,4-表油菜素内酯对镉胁迫下黄瓜幼苗生长和生理指标的影响,结果表明,其对重金属胁迫下黄瓜抑制起到了缓解作用。石欣隆等
[14]研究了2,4-表油菜素内酯对低温胁迫下花生幼苗生长及生理特性的调控机制,结果表明,低温胁迫处理下,适宜浓度的EBR能够对花生幼苗的生长起到缓解作用,从而提高植株的低温耐受性,为构建壮苗奠定基础。
花生(
Arachis hypogaea L.)作为广西最主要的油料作物,在各地市均有种植
[15],而种植区有不少为矿石区,这些地区土壤重金属污染严重,严重影响了花生的生长
[16]。目前,关于花生逆境胁迫的研究报道多集中在干旱胁迫、盐胁迫、低温胁迫等方面
[15-16],而EBR用于缓解番茄、玉米、黄瓜等植物逆境胁迫的研究也较多
[15,17],但EBR在缓解花生重金属胁迫下的作用还未见报道。
笔者以鲁花8号花生为试验材料,采用盆栽模拟铅胁迫,初步探索外源EBR对缓解植物在重金属Pb对花生幼苗的长势、抗氧化系统和渗透调节物质等的影响,为解决重金属Pb污染环境下植物激素EBR对花生胁迫生理等问题提供一定的理论依据。
1 材料和方法
1.1 试验材料
供试材料鲁花8号花生种子由河南省开封市生产;Pb试剂为等于或大于99%的Pb(NO3)2溶液(西陇科学股份有限公司),EBR为有效成分含量0.01%的油菜素内酯(河南比赛尔农业科技有限公司)。
1.2 试验方法
试验于2021年7月至2022年6月在河池学院植物培养室进行。
1.2.1 Pb的胁迫浓度筛选
挑选颗粒饱满且大小一致、完整无损的花生种子,用0.5%高锰酸钾消毒10 min后用蒸馏水反复冲洗3~4次。用Pb(NO3)2配制不同的处理液(100、300、400、500、600 mg/L)共5个处理,对照是用清水处理。取6个烧杯,在烧杯中倒入不同质量浓度的Pb(NO3)2溶液,对照组的烧杯倒入蒸馏水进行浸种处理,每个处理组30粒花生,1 d后放入培养皿中进行催芽,培养皿内垫2层滤纸,每天光照12 h,且每天添加对应的铅处理液10 mL,对照组每天添加10 mL蒸馏水,共3次重复。每天观察种子发芽情况并做好记录,计算种子的发芽势、发芽率,7 d后测定种子的胚根长。
将发芽的花生种子放入口径10 cm、高8 cm、底径7 cm的黑方10号塑料花盆中进行室内培养,营养土种植,培养条件为26 ℃,每日光照12 h。土培16 d后测定形态指标(株高、根长),以确定Pb的最适胁迫浓度。
1.2.2 EBR缓解Pb胁迫试验
在1.2.1试验的基础上,选定适宜的Pb胁迫浓度。试验设6个EBR处理,分别为0、0.01、0.05、0.10、0.50、1.00 mg/L,每个处理3次重复。取7个烧杯,每个烧杯中放入30粒消毒过的花生种子,倒入不同质量浓度的EBR浸种24 h。将种子放入培养皿中,添加10 mL 300 mg/L Pb(NO3)2溶液进行催芽处理(每天都添加),清水对照组(CK1,用清水浸种,培养皿中不添加Pb(NO3)2溶液催芽)和Pb胁迫组(CK2,用清水浸种,培养皿中也同样添加Pb(NO3)2溶液催芽)。同1.2.1试验方法测定发芽势、发芽率及株高、根长及各项生理指标。
1.3 花生幼苗生理指标测定
在花生幼苗4叶期,采集叶片测定幼苗生理指标。采用丙酮—乙醇提取法测定叶绿素和类胡萝卜素含量
[18],采用考马斯亮蓝法测定可溶性蛋白含量
[19],采用酸性茚三酮显色法测定游离脯氨酸(Pro)含量
[18],采用蒽酮比色法测定可溶性糖含量
[18],采用硫代巴比妥酸比色法测定MDA含量
[19];采用氮蓝四唑光化还原法测定超氧化物歧化酶(SOD)活性
[18],采用愈创木酚法测定过氧化物歧化酶(POD)活性
[18];采用氮蓝四唑(NBT)叶片染色法,根据染色结果判断超氧阴离子自由基(O
2·
-)积累量
[20]。
1.4 数据处理
采用Excel 2016软件作图,同时运用SPSS 18.0软件进行单因素方差分析,采用Ducan's在0.05水平上进行显著性分析,对EBR、Pb胁迫以及二者的互作效应进行双因素方差分析。
2 结果与分析
2.1 Pb胁迫对花生种子萌发和幼苗形态的影响
2.1.1 Pb胁迫对花生种子萌发的影响
由
表1可知,在不同质量浓度Pb胁迫下,花生种子的发芽势、发芽率和胚根长都受到一定的影响。从发芽势来看,与CK相比,高于300 mg/L Pb(NO
3)
2胁迫条件下,花生种子的发芽势降低,其中600 mg/L Pb(NO
3)
2胁迫时对种子的发芽势抑制作用最为显著,发芽势降至最低,较CK显著降低了16.79%(
P<0.05);在各Pb胁迫处理下,花生种子的发芽率均表现出抑制作用;在不同质量浓度Pb处理下,花生种子的胚根长度均受到抑制,随Pb质量浓度的上升胚根长度缩短(
图1),100、300、400、500、600 mg/L Pb(NO
3)
2处理较CK分别降低了20.03%、64.53%、70.28%、74.22%、76.85%,且差异均达显著水平(
P<0.05)。
2.1.2 Pb胁迫对花生幼苗形态指标的影响
根据植物的株高和根长,能够很直观看出植物的生长状况。从
表2可以看出,在Pb质量浓度≥100 mg/L时,花生幼苗的株高和根长受到抑制,与CK相比均显著降低(
P<0.05);在500 mg/L Pb(NO
3)
2时,花生幼苗的株高最矮,较CK显著降低20.33%(
P<0.05)。Pb胁迫下,花生幼苗的根长受到明显影响,均表现出抑制作用,与CK相比,花生幼苗的根长均显著降低(
P<0.05),其中,当Pb(NO
3)
2质量浓度为500 mg/L时,花生幼苗根长最短,较CK显著降低46.84%(
P<0.05)。
综上所述,Pb胁迫质量浓度高于300 mg/L时,花生幼苗的发芽势均降低,与CK间差异显著(P<0.05);胚根长在600 mg/L Pb(NO3)2胁迫下达到最短,与500 mg/L相比差异不显著。花生幼苗的发芽势、发芽率、胚根长、株高和根长均在大于300 mg/L Pb(NO3)2胁迫时显著降低。因此,本试验选择的Pb(NO3)2质量浓度为300 mg/L。
2.2 EBR对Pb胁迫下花生幼苗的缓解效应
2.2.1 EBR对Pb胁迫下花生种子萌发的影响
根据花生种子的萌发情况(
图2),计算和测定花生种子的发芽势、发芽率和胚根长度,从中判断种子活力的高低,以了解EBR对Pb胁迫下花生种子萌发的影响。
从
表3可以看出,5个EBR处理组对Pb胁迫下花生幼苗的发芽势均起到了促进作用,花生种子的发芽势在0.05、0.10、0.50、1.00 mg/L EBR处理下,与CK2相比,分别显著提高了26.32%、28.95%、23.68%、18.42%(
P<0.05),0.10 mg/L EBR对发芽势的促进作用最高。EBR对花生种子的发芽率也起到了促进作用,但差异均未达显著水平,0.05、0.10、0.50、1.00 mg/L EBR处理下,较CK2分别提高了7.85%、11.76%、9.80%、3.92%,0.10 mg/L EBR对发芽率的促进效果最大。EBR对花生种子的胚根长度也具有一定的促进作用,0.01、0.05、0.10、0.50 mg/L EBR处理下,较CK2分别增长了12.90%、2.15%、27.96%、1.07%,但差异未到显著水平,0.10 mg/L EBR对胚根长度的促进作用最大。说明用EBR处理花生种子,对其在Pb胁迫条件下的发芽率、发芽势、胚根长度均有一定促进作用,有利于花生种子在Pb胁迫下萌发。
2.2.2 EBR对Pb胁迫下花生幼苗形态指标的影响
植物的形态指标株高、根长的变化更能够直观地反映出植物的生长状态。
表4结果显示,EBR浸种对花生幼苗的株高、根长的增长都具有一定的促进作用,其中,花生幼苗的株高在0.10 mg/L EBR处理时最高,较CK2显著增加了6.18%(
P<0.05);在0.05 mg/L EBR处理时,花生幼苗的根长最长,较CK2显著增加了15.96%(
P<0.05)。说明外源EBR对Pb胁迫下花生幼苗株高、根长具有一定的促进作用。
2.2.3 EBR对Pb胁迫下花生幼苗叶片叶绿素和类胡萝卜素含量的影响
由
表5可知,CK2与CK1相比,花生幼苗的叶绿素和类胡萝卜素含量有所变化,单一Pb处理条件下,叶绿素a、叶绿素b、总叶绿素和类胡萝卜素分别显著下降了27.51%、34.00%、28.95%、25.80%(
P<0.05),表明在单一Pb胁迫下花生幼苗的叶绿素合成受到了抑制。外源添加不同质量浓度的EBR时,花生幼苗的叶绿素和类胡萝卜素都有所增长。其中,叶绿素a含量在0.05、0.10、0.50 mg/L EBR处理下,较CK2分别显著增加48.73%、61.50%、37.07%(
P<0.05),0.10 mg/L EBR处理的叶绿素a含量达到最大。EBR质量浓度为0.05 mg/L时,对花生幼苗叶绿素b含量的促进效果最为明显,较CK2显著增长91.77%(
P<0.05)。总叶绿素含量在0.05、0.10、0.50 mg/L EBR处理下,较CK2分别增长57.59%、67.34%、41.00%,且差异显著(
P<0.05),EBR质量浓度为0.10 mg/L时总叶绿素含量最大。EBR各处理下,类胡萝卜素含量较CK2都有所增加,EBR质量浓度为0.10 mg/L时,较CK2增长44.29%,且差异显著(
P<0.05)。Pb胁迫下,外源添加EBR可以提高花生幼苗叶绿素和类胡萝卜含量,0.10 mg/L EBR更有利于增加叶绿素a、总叶绿素以及类胡萝卜素含量,0.05 mg/L EBR更有利于促进叶绿素b含量增加,总体来看,随EBR质量浓度的增加,叶绿素和类胡萝卜素含量均呈现先上升后下降的趋势。
2.2.4 EBR对Pb胁迫下花生幼苗可溶性蛋白含量的影响
由
图3可知,CK2与CK1相比,花生幼苗可溶性蛋白含量下降了17.55%,且差异显著(
P<0.05)。EBR处理的花生幼苗可溶性蛋白含量较CK2均有所增加,0.01、0.05、0.10、0.50、1.00 mg/L EBR处理下较CK2分别增加5.89%、3.27%、19.48%、16.04%、3.27%。说明外源EBR可以增加Pb胁迫下花生幼苗可溶性蛋白含量,从而缓解自身受到Pb胁迫的危害。
2.2.5 EBR对Pb胁迫下花生幼苗游离脯氨酸含量的影响
由
图4可知,CK2与CK1相比,游离脯氨酸含量显著上升79.05%(
P<0.05)。外源添加EBR后,与CK2相比,0.01、0.05、0.10、0.50、1.00 mg/L EBR处理下,游离脯氨酸含量均显著下降(
P<0.05),0.50 mg/L EBR处理的游离脯氨酸含量下降最为显著,下降20.73%。说明外源EBR能够缓解Pb胁迫下植物体内游离脯氨酸含量的提高,各EBR处理组游离脯氨酸含量降低不同,0.50 mg/LEBR效果更好。
2.2.6 EBR对Pb胁迫下花生幼苗可溶性糖含量的影响
EBR对Pb胁迫下花生幼苗可溶性糖含量的影响如
图5所示。
从
图5可以看出,在单一Pb处理(CK2)下,花生幼苗可溶性糖含量较CK1下降了13.73%,且达显著差异水平(
P<0.05)。与CK2相比,外源0.01、0.05、0.10、0.50、1.00 mg/L EBR,可溶性糖含量分别显著增加了9.20%、11.78%、13.33%、11.74%、7.32%(
P<0.05),其中,外源0.10 mg/L EBR更有利于促进可溶性糖含量的增加。说明外源EBR能够提高Pb胁迫下植物体内可溶性糖含量,减少Pb胁迫危害。适宜浓度更有利于可溶性糖含量的增加。
2.2.7 EBR对Pb胁迫下花生幼苗丙二醛含量的影响
EBR对Pb胁迫下花生幼苗丙二醛含量的影响如
图6所示。
从
图6可以看出,在单一Pb胁迫(CK2)下,花生幼苗的丙二醛(MDA)含量较清水对照(CK1)增加了1.87%,且达显著差异水平(
P<0.05)。0.01、0.05、0.10、0.50、1.00 mg/L EBR处理下,与(CK2)相比,MDA含量分别降低1.23%、1.38%、1.67%、1.45%、1.28%,但只有0.10 mg/L EBR存在显著差异(
P<0.05),其MDA含量更接近CK1,该浓度处理条件对花生幼苗MDA含量的降低效果最为显著。说明在Pb胁迫条件下,MDA含量的积累对细胞膜造成了一定的伤害,外源EBR能够降低植物体内MDA含量,从而保证细胞膜的完整性,减少对花生幼苗细胞膜的破坏,可以缓解Pb胁迫对花生幼苗的危害。
2.2.8 EBR对Pb胁迫下花生幼苗抗氧化物酶活性的影响
在正常情况下,植物体内活性氧产生与清除处于平衡状态。由
图7可知,单一Pb胁迫(CK2)下,酶活性受到一定程度影响,SOD、POD活性较CK1分别显著下降28.42%、57.35%(
P<0.05)。外源添加EBR后,SOD、POD活性与CK2相比都有所提高,0.01、0.05、0.10、0.50、1.00 mg/L EBR处理下,对SOD、POD的活性具有促进作用,SOD活性分别显著提高了29.11%、34.09%、51.98%、37.63%、17.87%(
P<0.05);POD活性分别提高了20.69%、58.62%、172.41%、58.62%、20.69%,且在0.05、0.10、0.50 mg/L EBR处理下达到显著差异(
P<0.05)。其中,SOD、POD活性均在0.10 mg/L EBR时达到最大值。随着EBR质量浓度的增加SOD、POD活性均呈现先增高后降低的趋势,POD活性变化更为明显。因此,外源EBR可以提高Pb胁迫下花生幼苗的SOD、POD活性,有利于缓解Pb胁迫对花生幼苗的危害。
2.2.9 EBR对Pb胁迫下花生幼苗NBT染色的影响
当植物体受到逆境胁迫时,体内会积累活性氧(ROS)。从
图8可以看出,经过NBT染色后,各组叶片蓝色斑点数量发生了一定变化,CK1花生幼苗叶片蓝色斑点数量最少,且颜色较浅。外源添加EBR后,蓝色斑点数量较Pb胁迫组(CK2)有所减少,EBR质量浓度为0.05、0.10 mg/L时,叶片的蓝色斑点与CK2相比明显减少。说明该质量浓度下的超氧阴离子自由基(O
2·
-)活力较小。结果表明,花生幼苗叶片中O
2·
-活力受到Pb胁迫的影响而有所升高,外源添加EBR可以使O
2·
-活力减少,从而减少Pb胁迫对细胞膜造成的伤害,有利于缓解Pb胁迫对花生幼苗的危害。
3 结论与讨论
3.1 Pb胁迫对花生种子萌发和幼苗形态的影响
本试验表明,在单一Pb的胁迫下,花生幼苗的发芽势、发芽率、胚根长、株高和根长均在大于300 mg/L Pb(NO
3)
2时显著降低,在大于或等于500 mg/L Pb(NO
3)
2时这些指标降至最低。以往研究发现,单一Pb胁迫菊科花卉质量浓度为60 mg/L时,对种子萌发和幼苗生长就起到抑制作用
[21],胁迫浓度远小于本试验,可能与不同植物本身的生理特性和对重金属的耐受性调节机制有关。
3.2 外源EBR对Pb胁迫下花生的缓解效应
3.2.1 外源EBR对Pb胁迫下花生种子的萌发以及形态指标的影响
康云艳等
[22]研究表明,EBR能有效缓解低氧胁迫对黄瓜幼苗根系生长的抑制作用。石欣隆等
[14]研究发现,外源EBR处理增加了低温胁迫下花生幼苗的主根长度、株高。本试验用EBR对花生种子进行处理,结果表明,花生种子的发芽率和发芽势会受到EBR处理的影响,EBR对Pb胁迫下种子胚根长度以及花生幼苗的株高和根长都具有一定的促进作用,其中0.10 mg/L EBR对Pb胁迫下花生种子的发芽势、发芽率和胚根长度以及花生幼苗的株高的促进效果最佳,这与张爱敏等
[23]研究浸种法对黄瓜种子萌发的结果一致,0.05 mg/L EBR对Pb胁迫下花生幼苗根长的促进作用最佳。
3.2.2 外源EBR对Pb胁迫下花生幼苗光合色素含量的影响
植物在重金属Pb胁迫条件下,叶绿素和类胡萝卜素含量会下降,这可能是在逆境胁迫下,抑制了叶绿素前体的合成,促进叶绿素分解或直接破坏叶绿体结构,从而降低叶绿素含量及组成
[24]。有研究表明,外源EBR的添加会提高重金属胁迫下植物光合色素的水平及植物光合参数,从而缓解重金属胁迫对植物光合作用的不利影响
[25]。在本试验中,与对照相比,花生幼苗在Pb胁迫下叶绿素和类胡萝卜素含量显著下降,而外源EBR可以提高Pb胁迫下花生幼苗的叶绿素和类胡萝卜素含量,这与王舒甜等
[26-28]研究EBR缓解逆境胁迫的结果一致。总体来说,0.10 mg/L EBR对花生幼苗叶绿素和胡萝卜素含量的增加效果最好,该浓度可有效缓解Pb胁迫对花生幼苗的抑制。
3.2.3 外源EBR对Pb胁迫下花生幼苗的可溶性蛋白和可溶性糖含量的影响
在Pb胁迫下,相关酶的合成及代谢系统紊乱,引起植物的自身防御系统遭到破坏,可溶性蛋白含量下降
[29]。从本试验结果来看,在单一Pb胁迫处理下,花生幼苗的可溶性蛋白含量减少,这可能是植物为了降低自身的毒害,Pb离子进入植物体内与相关蛋白发生了结合,引起合成酶系统被破坏。外源EBR增加了Pb胁迫下花生幼苗的可溶性蛋白含量,缓解Pb胁迫对花生幼苗的影响,增强了抵抗力,这与寇江涛等
[30-31]的研究结果一致。且与Pb胁迫相比,外源添加0.10 mg/L EBR时可溶性蛋白含量达到最大,接近于清水对照。但也有较多的试验结果表明,在逆境胁迫下,植物可溶性蛋白含量会比清水处理高,这可能是由于试验材料不同。可溶性糖参与渗透调节,其可以通过降低细胞水势来抵抗胁迫环境
[32-33]。由本试验可知,在单一Pb胁迫的条件下,花生幼苗可溶性糖含量较清水处理有所减少,这可能是Pb离子进入了花生幼苗体内,花生幼苗体内的其他化合物与Pb离子结合,形成了螯合物或络合物
[34]。外源EBR能够增加花生幼苗可溶性糖含量,从而增强植物的渗透调节功能,缓解Pb胁迫对花生幼苗造成的伤害,提高花生幼苗在Pb胁迫下的耐受能力,这与赵红等
[13]的研究结果一致。
3.2.4 外源EBR对Pb胁迫下花生幼苗的游离脯氨酸和丙二醛含量的影响
游离脯氨酸在植物的生长和分化过程中起重要作用,其可作为渗透保护剂,在植物受到逆境胁迫时,体内会通过渗透调节来减轻伤害
[35-36]。本试验结果表明,花生幼苗在单一Pb胁迫下,体内的游离脯氨酸含量大量积累,较清水对照显著增加79.1%。说明Pb胁迫对花生幼苗的胁迫作用较大,外源EBR处理后,花生幼苗体内的游离脯氨酸含量较单一Pb胁迫组有所减少,在0.50 mg/L EBR时游离脯氨酸含量降到最低,接近清水处理。说明外源EBR可以降低花生幼苗在Pb胁迫下积累的游离脯氨酸含量,从而缓解Pb胁迫对花生幼苗造成的伤害。这与乔琳等
[37-38]的研究结果一致。但也有大量研究表明,在逆境胁迫条件下,外源EBR处理后,脯氨酸含量会进一步增加,这可能与胁迫条件以及环境因素有关。本试验结果表明,在Pb胁迫下,花生幼苗的丙二醛含量会显著上升,经外源EBR处理后,丙二醛含量较单一Pb胁迫条件下有所降低,这与余燕等
[39]的研究结果一致。丙二醛在逆境胁迫的条件下含量会增加,原因可能是由于植物体内积累了大量的活性氧自由基,其得不到清除
[40-41]。本试验中,通过外源添加EBR,丙二醛含量与单独Pb胁迫相比有所下降,说明在外源物质EBR处理下,植物细胞通过减少活性氧自由基的积累,从而减少Pb胁迫对植物造成的毒害。表明EBR能够缓解脂膜过氧化作用发生,激活ROS清除机制,能使Pb胁迫下花生幼苗体内积累的氧自由基减少,从而降低对细胞膜的破坏
[42]。
3.2.5 外源EBR对Pb胁迫下花生幼苗抗氧化物酶活性的影响
一般情况下,植物体内的活性氧代谢是维持平衡的,但当植物受到逆境环境胁迫时,膜脂过氧化程度加剧,植物体内的代谢发生了紊乱,酶的活性受到影响,导致细胞膜系统受损,对植物造成伤害
[43]。SOD、POD在植物的体内发挥着重要的作用,本试验表明,在单一Pb胁迫下,花生幼苗的SOD活性较清水对照下降,这可能是因为重金属Pb对花生幼苗产生了毒害作用,抑制了SOD的生成,也降低了清除O
2·
-的能力,破坏了花生幼苗体内SOD与O
2·
-的平衡,使得O
2·
-得不到及时清除,在植物体内不断积累,从而抑制了花生幼苗的生长
[6]。在受到外界环境胁迫时,H
2O
2也会在植物体内发生积累,对植物产生毒害作用,而POD可以清除植物体内积累的H
2O
2,从而保护细胞膜的完整性,避免对植物造成伤害。SOD首先将O
2·
-歧化为H
2O
2和氧气,而POD对H
2O
2具有清除作用,可催化还原型辅酶代谢
[44-45]。本试验结果表明,在Pb胁迫下,花生幼苗的POD活性有所降低,说明Pb胁迫使花生幼苗细胞内的H
2O
2积累较多,可能对细胞膜造成了一定破坏。外源EBR处理下与单独Pb胁迫相比,SOD、POD活性都有了一定增强,这与赵红等
[13-14,46]的研究结果一致。本试验表明,在0.10 mg/L EBR处理条件下,SOD、POD活性与Pb胁迫组相比显著提高,说明在此浓度下更适合缓解重金属Pb对植物造成的氧化伤害。
3.2.6 外源EBR对Pb胁迫下花生幼苗NBT染色的影响
活性氧作为植物在代谢过程中产生的一种物质,正常情况下,植物正常代谢产生的活性氧含量不足以对植物自身造成伤害。但在重金属Pb的胁迫下,植物体内的活性氧代谢失衡,会积累大量活性氧,从而破坏细胞蛋白、脂质分子等成分的稳定性,使得细胞代谢发生紊乱
[47-48]。氮蓝四唑叶片染色可以根据染色后叶片蓝色斑点的多少来判断O
2·
-的活力增加程度,颜色越深或斑点越多代表叶片活力越强
[20]。与Pb胁迫相比,外源EBR能够减少氮蓝四唑染色花生幼苗叶片的蓝色斑点数,说明其能够缓解Pb胁迫对花生幼苗的危害,其中,0.05、0.10 mg/L EBR的缓解效果较为明显。