农田杂草是危害农作物产量和品质的罪魁祸首之一
[1],近年来我国农田草害发生面积约为9 246.7万hm
2[2],大大降低了农作物的收获量。目前,杂草防除主要使用化学农药,造成了严重的环境污染,打破了生态平衡
[3]。化学农药的副作用,使得人们对开发生防制剂产生了更大的兴趣
[4]。微生物除草剂的产生,极大地改善了农田药害问题,使得生物防治成为了农田病虫草害的最佳防治技术
[5]。
前人对于微生物除草剂的报道已经有很多。例如,强胜等
[6]开发研制出的生物除草剂杀草毒素AAC-Toxin对杂草的防效两天内达100%。陈超
[7]研究发现,从特定环境中筛选出了具有生防潜力的毛壳菌,该菌可以诱导植物产生抗性。Thomas等
[8]发现了一种马缨丹柄锈菌可以防治马缨丹,尤其在热带雨林地区特别成功。从向日葵上分离的镰刀菌属(
Fusarium sp.)真菌能抑制列当种子的萌发
[9]。埃及科学家筛选出的链格孢属真菌(
Alternaria alternate)可有效控制水葫芦,从该菌中分离得到的毒素还可以破坏某些植物的光合作用,例如紫茎泽兰(
Eupatorium edenophorum),从而对其产生毒害
[10]。
随着发酵技术的日趋优化和成熟,优化工艺配方为微生物除草剂的生产提供了技术支持,是微生物除草剂实现产业化生产的关键,为生物农药提供了前所未有的发展契机
[11]。梁玎玎
[12]研究发现草茎点霉(
Phoma herbrum)SYAU-06菌株经过发酵优化制成水乳剂对盆栽鸭跖草(
Commelina communis)的防治效果达到51.36%。Li等
[13-14]利用固体发酵方式对毛壳霉属和曲霉属真菌进行发酵,从其代谢产物中分离得到了抗肿瘤物质。王国平等
[15]为了提高木霉菌素的产量,通过优化得到了最佳培养基配方。朱海霞等
[16]利用正交设计法对极细链格孢的最适碳氮源、初始含水量、接种量等优化获得了菌株发酵所需的最佳条件。
除草活性链格孢(Alternaria alternate)真菌HY-02菌株是从青海省湟源县波航乡采样,由自然感病的巴天酸模(Rumex patientia L.)叶片分离得到,经过前期致病性和作物安全性研究发现,该菌株对恶性阔叶杂草藜(Chenopodium album)、猪殃殃(Galium spurium)、萹蓄(Polygonum aviculare)、酸模叶蓼( Polygonum lapathifolium)、冬葵(Malva verticillata)、密花香薷(Elsholtzia densa)均具有不同程度的致病性,对禾本科作物小麦 、青稞表现安全。为了明确该菌株发酵所需的培养基配方和发酵工艺,本研究通过对HY-02菌株进行发酵条件优化,旨在探究该菌株的最佳产孢量以及最佳发酵条件,为探究其除草活性组分奠定基础,为下一步将其制成生防除草剂提供技术参考。
1 材料与方法
1.1 供试菌株
菌株HY-02从自然感病的巴天酸模分离得到,此菌株被鉴定为链格孢(Alternaria alternate)真菌,将菌株培养于PDA斜面上,保存于青海省农科院植保所有害生物综合防治实验室。
1.2 菌株培养
取斜面上培养的菌丝于PDA培养基上培养5 d,备用。
1.3 试验方法
1.3.1 固体培养基的筛选
选择7种不同的固体培养基(
表1),将培养好的菌株打菌饼(
Φ=8 mm),接于7种培养基平板中央,放在25 ℃培养箱中培养7 d,每天观察并测量其菌落直径及菌落形态,重复3次,选择长势(菌落直径和菌丝形态)最好的培养基为固体基础培养基。
1.3.2 培养基的优化
以察氏培养基为基础培养基,对培养基各成分进行单因素试验。将活化的培养基中打菌饼(
Φ=8 mm)接于装有基础培养液的三角瓶(250 mL)中,于25 ℃、180 r/min条件下摇床培养7 d,测定最大吸收波长
λ=640 nm的
D值,重复3次。培养基各成分及水平选择如
表2所示。
1.3.3 成分及配比优化
根据中心组合设计原理,对碳、氮源及无机盐进行成分配比优化,以单因素结果为中心点,菌株HY-02的
D(
D=600 nm)值为响应值(
Y),设计3因素3水平的响应面(RSM)试验,其因素及水平如
表3所示。
1.3.4 发酵条件优化
以优化的培养基为发酵培养基,分别测定不同培养温度(22、25、28、31和34 ℃)、摇床转速(150、165、180、195和210 r/min)、初始发酵时间(1、2、3、4、5、6和7 d)、pH(5、6、7、8和9)和装液量(75、100、125、150、175、200和225 mL/瓶)对菌株HY-02的OD值的影响,每处理重复3次。
1.4 统计分析
采用DPS 9.0、Design Expert 12和Excel对试验数据进行统计分析,采用新复极差法比较差异显著性。
2 结果与分析
2.1 培养基的筛选
7 d后,菌株HY-02在7种培养基上的形态如
图1所示,在PDA培养基上,菌落呈灰色,气生菌丝不发达,边缘不整齐,菌丝呈絮状;在PSA培养基上,菌落呈灰黑色,菌落边缘整齐,气生菌丝发达,菌丝呈絮状;在NB 培养基上,菌落呈黄褐色,气生菌丝发达,菌丝呈绒毛状;在察氏培养基上,菌落白色,呈绒毛状,长至后期颜色变为粉红色,菌落边缘整齐,气生菌丝发达;在孟加拉红培养基上,前期菌落表面呈白色,后期呈黄色,菌丝呈绒毛状边缘整齐,气生菌丝不发达,菌落不扩大生长;在培养基Ⅰ上,菌落呈白色,菌丝呈雪花状,边缘不整齐,后期菌丝体退化;在培养基Ⅱ上,菌落呈灰白色,边缘不整齐,菌丝呈絮状,气生菌丝不发达,生长后期凹凸不平。
菌株HY-02在7种培养基上菌落直径大小比较如
图2和
表4所示,5 d后,察氏培养基中菌落直径最大,为5.70 cm;孟加拉红培养基中直径最小,为3.03 cm;7种培养基菌落直径之间差异显著。7 d后,7种培养基菌落直径相比较差异显著,察氏培养基中菌落直径最大,为7.50 cm;菌丝体发达如
图1所示。
2.2 培养基单因素优化
2.2.1 蔗糖
由
图3-A可知,随着蔗糖含量增加,菌株HY-02的
D值先降低后增加,当蔗糖的含量是70 g/L时,
D值最大,之后随蔗糖含量增加,
D值减小。说明70 g/L的蔗糖为菌株HY-02发酵的最适碳源量。
2.2.2 硝酸钠
由
图3-B可知,随着硝酸钠含量增加,菌株HY-02的
D值先增加后降低,当硝酸钠含量为12 g/L时,
D值最大,之后随硝酸钠含量增加,
D值减小。说明12 g/L的硝酸钠为菌株HY-02发酵的最适氮源量。
2.2.3 K2HPO4
由
图4-A可知,随着无机盐K
2HPO
4含量的增加,菌株HY-02的
D值先增加后降低,当K
2HPO
4含量为6 g/L时,
D值最大,之后随K
2HPO
4含量增加,
D值减小。说明6 g/L的K
2HPO
4为菌株HY-02发酵的最适含量。
2.2.4 KCl
由
图4-B可知,随着KCl含量增加,菌株HY-02的
D值先降低后增加,当KCl为1.5 g/L时,
D值最大,之后随KCl含量增加,菌株HY-02D的
D值先降低再增加又降低。说明1.5 g/L的KCl为菌株HY-02发酵的最适含量。
2.2.5 MgSO4·7H2O
由
图5-A可知,随着MgSO
4·7H
2O含量增加,菌株HY-02的
D值先降低后增加,当MgSO
4·7H
2O含量为2.0 g/L时,
D值最大,之后随着MgSO
4·7H
2O含量增加,
D值先增加后减小。说明2.0 g/L的MgSO
4·7H
2O为菌株HY-02发酵的最适含量。
2.2.6 FeSO4
由
图5-B可知,随着FeSO
4含量增加,菌株HY-02的
D值呈增加趋势,当FeSO
4含量为0.04 g/L时,
D值最大,之后随FeSO
4含量增加,
D值先减小后增加。说明0.04 g/L的FeSO
4为菌株HY-02发酵的最适含量。
2.3 成分配比及优化
根据单因素优化结果,对菌株HY-02的液体培养条件,利用中心组合试验设计3因素3水平试验,结果如
表5所示。
以菌株HY-02发酵液的
D值(Y)为响应值,根据中心组合的试验结果(
表6)进行分析得到
D值与蔗糖(
A)、NaNO
3(
B)、无机盐(
C)的二次多项回归方程:
Y=0.665 2+0.008 1A+0.059 8B-0.001 4C-0.071 3AB+0.071 5AC-0.038 7BC-0.109 1A2-0.142 9B2-0.173 6C2。
通过方差分析上述回归模型可知(
表6),回归模型的
P=0.001 5,失拟项的
P值0.099 4>0.05,模型回归检验极显著,失拟检验不显著,说明未知因素对试验的干扰很小,模型稳定,回归方程的决定系数为94.23%,说明该方程与实际情况符合,反映了菌株HY-02的
D值与碳源、氮源和无机盐之间的关系,该模型能够对菌株HY-02的
D值进行分析和模拟。
模型数据显示,一次项B及交互项AB、AC及二次项A2、B2、C2影响显著,各因子的影响主次顺序:C2> B2> A2> B >AB> AC > BC >A> C。
根据试验因素间交互效应三维立体响应面和等高线图(图
6~
8),在确定一个因素的情况下,观察其他两个因素对
OD值的影响,蔗糖、硝酸钠、无机盐三者交互作用响应面为开口向下的凸形曲面,且交互效应的等高线形状为圆形,说明两两之间的交互作用效果较显著。利用回归方程得到菌株HY-02液体发酵培养基产孢量的培养基条件为:蔗糖79.789 g/L,硝酸钠8.763 g/L,无机盐5.472 g/L(其中K
2HPO
4 3.442 g/L、KCl 0.860 g/L、MgSO
4•7H
2O 1.147 g/L、FeSO
4 0.0229 g/L)。
2.4 发酵条件优化
2.4.1 发酵温度
由
图9-A可知,随着发酵温度的升高,菌株HY-02的
D值呈增加趋势,当温度为25 ℃时,
D值最大,之后随温度的升高,
D值减小,说明25 ℃为最佳发酵温度。
2.4.2 转速
由
图9-B可知,随着转速的增加,菌株HY-02的
D值也随之升高,当转速达到165 r/min时,菌株HY-02的
D值达到最大,之后随转速增加,
D值逐渐减小。故菌株HY-02的最适转速为165 r/min。
2.4.3 装液量
根据锥形瓶容量的不同分别设置不同梯度的装液量,由
图10-A可知,随着装液量的增加,菌株HY-02发酵液的
D值先增加后减小,当装液量为200 mL/瓶时,菌株HY-02的
D 值最大,之后随装液量增加,
D减小。说明最适装液量为200 mL/瓶。
2.4.4 发酵时间
分别于不同发酵时间测定菌株HY-02的
OD值。由
图10-B可知,在发酵时间为1~3 d,菌株HY-02的
D值先减小后变大,当菌株发酵到第4天时,菌株的
D值达到最大值,之后随时间变长,
D值先减小后增加,但第7天测得的
D值较最大值略小,所以,选择发酵时间为4 d作为菌株HY-02的最适发酵时间。
2.4.5 pH
分别设置不同的pH梯度测定菌株HY-02的
D值。由
图11可知,随pH值增加,菌株
D值呈增加趋势,当pH=7时,菌株
D值最大,之后菌株
D值也变小。故选择pH=7为该菌株最适pH。
3 讨论与结论
微生物除草剂不仅可以消除化学农药的抗药性、残留等缺点,而且可以弥补菌株退化、货架期短等的不足,为农业生产带来很多便利。微生物的发酵会受到碳氮源、基质含水量、发酵温度、发酵时间、转速、pH等发酵条件的影响,不同因素对菌体生长和产物合成产生不同的影响差异
[17-18]。通过微生物发酵条件优化,既能提高菌剂的防效,又能促进活性物质的产生
[19-20]。
前人利用固体和液体发酵方式获得活性物质,例如Abouzied等
[21]利用大米为基础培养基对不同镰刀菌进行发酵优化,并分离出了化合物。Ahsan等
[22]筛选了链霉菌(
Streptomyces sp.)TA 1123菌株,并对其进行发酵条件的优化,提高了菌株TA 1123的抗生素产量和质量。在本研究中,菌株HY-02的最适碳源为蔗糖,这与杜艳丽等
[23]的研究结果一致。尹艳楠等
[24]对蜡样芽孢杆菌(
Bacillus cereus) NJSZ-13菌株进行优化,其用pH=7的条件发酵菌株,使菌株产孢量增加,与本研究结果相似。朱海霞等
[25]通过对具有除草活性的生防菌株HZ-31进行发酵条件优化,选择无机氮源作为发酵优化的最适氮源与本研究结果一致,能够增加菌株HY-02的产孢量。杨莹等
[26]利用中心组合优化PA-2菌株所用的无机盐,与本研究中所采用的无机盐的作用相似,均能起到调节作用,能促进菌株产孢。本研究利用7种不同固体培养基筛选得到最适培养基为察氏培养基,以察氏培养基为基础,对各组分进行优化得到最佳配比(蔗糖:79.789 g/L,NaNO
3:8.763 g/L,无机盐:5.472 g/L),为除草活性物质的分离和纯化奠定了基础。
本研究对菌株HY-02发酵条件进行优化,得到最佳碳、氮源及无机盐的成分配比为:蔗糖:79.789 g/L,NaNO3:8.763 g/L,无机盐:5.472 g/L(其中K2HPO4 3.442 g/L、KCl 0.860 g/L、MgSO4•7H2O 1.147 g/L、FeSO40.022 9 g/L)。最适发酵条件为:温度25 ℃,转速165 r/min,装液量200 mL,发酵时间4 d、pH=7。菌株HY-02的液体发酵优化,为菌株的液体发酵提供了最优配方和条件,但未对固态发酵条件探索,是否满足工业生产和田间防除杂草还需要更多的发酵数据去验证。下一步将对该菌株的剂型、田间药效、除草机理等进行系统研究,为该菌的剂型研究以及以后菌剂的规模化生产提供技术参考,为菌株HY-02开发出新型生物除草剂奠定基础。
青海省中央引导地方科技发展资金项目“复合微生物除草剂的开发及利用”(2022ZY034)