石榴皮约占石榴果实的40%,通常作为加工副产物而废弃,石榴皮含有多种生物活性物质,其中酚类化合物是石榴皮中的主要活性物质
[1]。研究表明,从石榴皮中获得的提取物具有良好的抗菌、抗病毒、抗氧化、抗炎和抗肿瘤的生物活性
[2-3]。Haghighian等
[4]的临床试验表明:短期服用石榴皮提取物(PPE)对患有膝盖骨关节炎的肥胖妇女的总胆固醇和甘油三酯的血清水平和抗氧化状态有显著的改善效果。Gull等
[5]将PPE添加到纳米壳聚糖涂层中,可显著延缓杏的重量损失和腐烂。PPE可作为抗氧化剂、抗菌剂或功能性食品成分的潜在来源
[6],因此对石榴皮进行资源再利用具有较好的环境与经济价值。
PPE的提取方法主要有:超声波辅助提取(空化现象和改善传质)、高压辅助提取(破坏植物组织和增强传质效应)、高压放电辅助提取(电击穿现象破坏细胞结构)、超临界流体提取(溶剂具有低粘度和高扩散系数)、微波辅助提取(微波辐射和较高温度的破坏作用)、酶辅助提取(酶水解细胞壁)和溶剂浸提。溶剂浸提具有操作简单方便、提取成本低、无需大型仪器参与等优点,是实现PPE批量生产的最佳方法之一。
本研究采用溶剂浸提法,通过响应面法优化提取(提取时间、乙醇浓度、温度、料液比),得到最佳提取条件,为简便、大批量、低成本获取PPE研究应用提供参考。并评估3种常见PPE(HL、MZ、TN)的组成成分、抗氧化性能(DPPH自由基清除能力、羟自由基清除能力、超氧阴离子清除能力、铁还原能力)和抗菌性能(荧光假单胞菌、大肠杆菌、金黄色葡萄球菌),为PPE的功能研究以及特殊产品开发提供理论依据与参考。
1 材料与方法
1.1 试剂与仪器
3种新鲜石榴,杨凌润美农业发展有限公司;抑制与产生超氧阴离子自由基测定试剂盒(比色法),南京建成生物工程研究所;福林酚试剂,北京索莱宝科技有限公司;其它化学试剂均为分析纯。Varioskan Flash荧光酶标仪,美国赛默飞世尔科技公司。
1.2 石榴皮粉制备
手工剥离石榴皮,40 ℃烘箱干燥60 h,粉碎,过40目筛,4 ℃储藏备用。
1.3 绘制没食子酸标准曲线
采用福林酚法
[7]。配制没食子酸标准溶液,将100 μL各浓度标准溶液、6 mL双蒸水和500 μL Folin-Ciocalteau试剂混合均匀。静置8 min,加入1.5 mL Na
2CO
3溶液(20%w/v),充分混合,静置30 min,765 nm处测量吸光度。以吸光度为Y轴,没食子酸浓度为x轴,绘制标准曲线。得回归方程:
Y=0.771 5x+0.051 9,R2=0.999 6
1.4 多酚提取与测定
取3.0 g石榴皮粉,按照一定的提取时间、温度、料液比、乙醇浓度进行浸提。提取后离心取上清液,稀释,按1.3所诉方法测定吸光度。以下列公式计算总酚含量(TPC):
式中:Y:总酚含量(mg/g);c:所测样品总酚浓度(mg/mL);X:稀释倍数;V:提取液体积(mL);m:样品质量(g)。
1.5 单因素试验
按1.3、1.4所述方法,固定其它条件不变,研究时间(10、30、50、70、90、110 min)、乙醇浓度(0、15、30、45、60、70%)、温度(30、40、50、60、70、80 ℃)、料液比(1∶10、1∶20、1∶30、1∶40、1∶50、1∶60)对TPC的影响,确定最佳提取条件。
1.6 响应面试验设计
根据单因素试验,利用Box-Behnken模型,以时间(X
1)、乙醇浓度(X
2)、温度(X
3)、料液比(X
4)为优化因素。TPC(Y)作为响应值。试验因素和水平见
表1。二阶多项式模型如下:
M0、Mi 、Mii 、Mij 为回归系数;Xi 和Xj 为变量。
1.7 不同品种PPE制备
按1.2和1.4所述的方法制备HL、TN、MZ的提取液。经旋转蒸发、冷冻干燥得提取物固体,-22 ℃储存备用。
1.8 PPE组成成分分析
采用1H-NMR光谱分析3种PPE组成成分,1H-NMR试验采用Z116098_0762探头,扫描频率400.13 MHz,测定温度297.8 K,谱宽8 196.7 Hz,扫描次数16次,溶剂为D2O。
1.9 抗氧化活性测定
测定3种PPE的各项抗氧化能力,并以丁基羟基茴香醚(BHA)作为对照。
1.9.1 DPPH自由基清除能力
参考Ivanovic等
[8]的方法,将提取物水溶液(100 μL)与甲醇(1 mL)和0.2 mmol/L DPPH溶液(1 mL)混匀。室温下,黑暗中孵育30 min,517 nm处测定吸光度。以下列公式计算清除率:
式中:A0:空白吸光度;A1:样品吸光度。
1.9.2 羟自由基清除能力测定
参考王巨存等
[9]的方法,0.5 mL蒸馏水代替样品作空白,1.5 mL蒸馏水代替EDTA-Fe
2+和样品作对照。以下列公式计算清除率:
清除率=
式中:A0:空白组吸光度;A1:对照组吸光度;A2:样品组吸光度。
1.9.3 超氧阴离子清除能力
采用抑制与产生超氧阴离子自由基测定试剂盒(比色法)测定。
1.9.4 铁还原能力的确定
参考Szabo等
[10]的方法。将1 mL样品、1 mL磷酸盐缓冲液(pH:6.6)和1 mL铁氰化钾(1% w/v)混合,50 °C下孵育20 min。然后,在混合物中加入1 mL三氯乙酸(10% w/v),混合均匀,3 000 r/min下离心10 min。最后取1 mL上清液与200 μL氯化铁(0.1% w/v)和1 mL蒸馏水混合,室温下孵育10 min,700 nm处测定吸光度。吸光度越高还原能力越强。
1.10 抑菌试验
参考Zhang等
[11]的方法。石榴皮提取物的抗菌活性以抑菌圈直径(mm)来表示。
1.11 数据统计分析
所有试验一式三份,软件Design-Expert.V8.0.6.1用于响应面试验设计及方差分析,Origin 2021b用于图表处理及显著性分析。
2 结果与分析
2.1 单因素试验
2.1.1 提取时间对TPC的影响
由
图1可知,TPC随时间的增加,呈现先增后减的趋势。因为石榴皮粉暴露在介质中的时间越长,转移到介质中的多酚量越多。在70 min时,达到介质萃取极限或粉与介质达到动态平衡,TPC取得最大值。继续延长提取时间,多酚长时间暴露,与空气中氧气接触导致氧化降解,TPC呈缓慢下降趋势
[12]。而且较长的提取时间会导致更多的多糖等杂质析出。Aleksandra等
[13]在试验中发现了相似的结果,利用乙醇溶液浸提百里香中的多酚类物质,发现多酚提取量与时间呈一定正相关性,达到最高值后呈缓慢下降趋势,但无统计学意义上的显著性差异,多酚化合物在水相中长时间暴露会发生酶促降解和氧化以及与不溶性化合物聚合,从而降低产率。因此选择提取时间为70 min。
2.1.2 乙醇浓度对TPC的影响
由
图2可知,TPC随乙醇浓度的增加,呈先增后减的趋势,在乙醇浓度为30%时,TPC取得最大值。乙醇浓度不断降低,乙醇溶液极性会不断增加,根据相似相溶原理,能提取更多极性酚类化合物
[14];而且在极性更大的介质中,氢键更容易断裂,萃取酚类化合物也更容易
[15];乙醇溶液中的水会增强植物材料溶胀,增加固体材料与溶剂之间的接触面积,并且乙醇可破坏溶质与植物基质之间的键合,从而使化合物更好地进行转移。因此,水和乙醇之间具有协同作用
[16]。Delphine等
[17]在对菊苣渣中多酚的提取工艺优化研究中得出了相似的结论,当乙醇含量从0%增加到 50%~60%时,观察到提取率不断增加;当乙醇含量超过60%时,提取率迅速下降。因此选择乙醇浓度为30%。
2.1.3 温度对TPC的影响
由
图3可知,TPC随提取温度的增加,呈先增加后趋于稳定有逐渐减小的趋势,在提取温度为60 ℃时,TPC取得最大值。温度升高可加快多酚分子的布朗运动,缩短多酚进入溶剂的时间,降低溶剂表面张力和粘度、提高溶剂渗透率和对多酚的溶解度,使植物基质和细胞结构更易降解,提高细胞渗透性,减弱酚类化合物与蛋白质或多糖之间的相互作用,从而提高TPC
[15]。然而随着温度继续升高,会加速多酚的降解,减少得率;溶解出更多杂质(如多糖),影响产品纯度。导致石榴细胞壁中纤维过多的溶胀,阻碍分子从细胞基质向溶剂的渗透
[18]。在高温下并未观察到TPC显著降低,这是由于石榴皮多酚在高温下较为稳定,不易分解。Zivkovi等
[15]具有相似的研究结论,其利用超声辅助提取法提取石榴皮多酚,研究发现TPC随着温度的升高而急剧增加,并且石榴皮中的酚类物质在高温条件下是稳定的。综合能耗考虑,选择提取温度为60 ℃。
2.1.4 料液比对TPC的影响
由
图4可知,TPC随料液比的减小,呈先增加后减小的趋势,在料液比为1∶40时,TPC取得最大值。料液比越小,植物细胞内外浓度差就越大,扩散速率越大
[19]。然而,料液比过小,则会延长分子的扩散距离,增加提取与纯化成本。这与Nada等
[20]的研究结果相似,使用浸渍法提取苦莓干多酚,其提取率从1∶10到1∶20时显着增加,随后在1∶30时略有下降。
2.2 响应表面分析
试验条件和结果见
表2,方差分析见
表3。根据
表3的方差分析,模型具有显著性(
P<0.000 1),失拟项不显著(
P>0.05),表明该模型具有统计学意义,拟合性较好
[21];
R2为0.956 4,二阶多项式能较好地预测实际结果,变异系数C.V.为0.66%,表明模型重现性较好。此外,
X1、
X2、
X3、
X1X4、
X3X4、
X12、
X22、
X32和
X42对PPE的TPC影响显著,影响TPC的因素依次是乙醇浓度>提取时间>温度>料液比。在
图5中,二维响应面图和三维响应面图呈现了两个因素之间的相互作用,椭圆形的离心率越小,表示两个因素之间的相互作用越低
[22],相互作用大小依次为:
X3X4 >
X1X4>
X2X4 >
X2X3 >
X1X2 >
X1X3。TPC的二阶多项式模型可表示为:
Y=234.95+2.61X1+4.02X2+2.59X3-0.07X4+0.80X1X2+0.48X1X3+2.01X1X4-0.91X2X3-1.09X2X4-3.65X3X4-3.99X12 -4.94X22 -2.50X32 -4.05X42
通过模型得到最佳工艺条件为:时间76.73 min、乙醇浓度36.04%、温度66.85 °C、料液比1∶37.13,TPC预测值为237.096 mgGAE/g。根据实际情况将条件调整为时间77 min、乙醇浓度36.0%、温度66.9 ℃、料液比1∶37。在此条件下,实际TPC为(242.026±1.94)mgGAE/g,预测值与实际值较为符合。Zivkovi等
[15]通过超声辅助提取,得到的TPC为(149.12±7.46)mgGAE/g,而Ankita
[23]的研究则发现TPC高达510 mgGAE/g。Nejib等
[24]针对不同品种的石榴进行提取,结果表明TPC为205-276 mgGAE/g,品种的差异会显着影响PPE的TPC。同时提取方法、种植的地理环境和成熟度也会影响TPC
[25]。
2.3 PPE成分分析
PPE的
1H-NMR核磁图谱如
图6所示,根据化学位移情况,将化学位移区间分为三部分,第一部分为0.5~3.0 ppm(高场区),是脂肪族氨基酸和有机酸的信号区间;第二部分为3.0~5.5 ppm(中场区),是果糖、多糖等糖类的信号归属区间;第三部分为6.0~9.0 ppm(低场区),是氨基酸和酚类化合物的信号区间
[26]。3种PPE在3种场区的积分分布情况如表4所示。由
图6可知,3种PPE的核磁图谱相似度较高。图谱的主要差异体现在峰高上,其原因是3种PPE的化学成分的相对含量不一致。其中在位移区间0.5~3.0 ppm和6.0~9.0 ppm的峰高差异最为明显,表明3种PPE的有机酸和酚类化合物的相对含量存在差异。
3种PPE在高场区的图谱如
图7所示,它们均在1.0~2.4 ppm区间有5个相同的信号峰区域,但是各峰的积分面积不相同,相对峰面积分别为7.71、5.37、1.27,该部分化学组成基本相同,相对含量有较大差异。研究表明:2.40~0.50 ppm区间主要是甾体皂苷的信号峰
[27]。2.5~3.0 ppm区间主要是EGCE、ECG的信号峰
[28],HL和MZ在此区间的峰区域种类较TN略少,但是相对积分面积较高(分别为3.91、2.61、5.26)。
3种PPE在低场区的图谱如
图8所示,3种PPE的图谱大致相同,其中TN的化合物有效峰个数显著大于HL和MZ(分别为40、24、25),相对积分面积分别为8.69、3.72、2.91。其中8.30~7.00 ppm区域主要是3-苯基色原酮衍生物在苯环上氢或酚羟基氢的信号峰
[27]。TN、HL、MZ在该区域的有效化合物峰个数为8、3、4,相对积分面积分别为1.79、1.61、0.61。通过比较高场区、低场区、全谱的核磁图谱和位移区间积分分布情况表可以推断出PPE的主要成分物质为糖类,因为石榴皮多酚提取过程中,会存在较多的石榴皮果胶析出,果胶主要存在于植物细胞壁中,约占水果细胞壁的40%(以干物质计)
[29]。Ganesh等
[30]以水为溶剂在较高温度下(62 ℃),从石榴皮中提取得到大量果胶。TN有机酸和酚类化合物的种类最多。HL与MZ有机酸和酚类化合物种类数量差距不大。TN和HL有机酸和酚类化合物相对含量高于MZ,其中TN的含量略高于HL。HL和MZ均为硬籽石榴,TN为软籽石榴,其活性物质种类的数量或许与硬软籽有关,但还需进一步的验证。同时品种是影响有机酸和酚类化合物含量的重要因素。Francesca等
[31]研究了7种石榴皮的有机酸和酚类化合物的种类和含量,发现果皮富含有机酸和酚类化合物,并且品种类型和种子硬度显著影响果皮活性物质质量。
2.4 PPE抗氧化活性
由
图9可知,3种PPE对DPPH自由基清除能力均优于BHA,其中MZ的清除能力显著低于HL和TN,HZ与TN在较低浓度时(<0.8 mg/mL)无显著差异,在浓度为1 mg/mL时,TN的DPPH自由基清除活性最高。在
图10中,BHA羟自由基清除能力是最强的,在较低浓度(≤0.1 mg/mL)时,PPE的清除能力依次为:HL>TN>MZ。在
图11中,BHA超氧阴离子基清除能力是最弱的;在浓度较低时(<0.05 mg/mL),3种PPE的超氧阴离子基清除能力没有显著差异;当浓度较高时(≥0.1 mg/mL),PPE清除能力如下:HL>MZ>TN。
图12显示,铁还原能力最差的是MZ;HL和TN没有显著性差异,BHA 比他们略低。所有结果都表明,抗氧化剂活性与PPE浓度呈正相关,Zahra等也得出了相同的结论
[32],而且提取物中抗氧化剂的结构和相互作用也会影响总体的抗氧化能力
[33]。抗氧化试验表明,HL具有最好的抗氧化性能,MZ最差,3种PPE综合抗氧化能力优于BHA。
2.5 PPE抗菌活性
由
图13可知,3种PPE对大肠杆菌、金黄色葡萄球菌、荧光假单胞菌生长均有较好的抑制作用。3种PPE对大肠杆菌和金黄色葡萄球菌的抑制作用没有显著差异;HL对荧光假单胞菌具有最好的抑制作用。抑菌试验还表明:荧光假单胞菌对PPE最敏感,大肠杆菌对PPE最耐受,这与Zelika等
[34]的发现一致,其结果表明:通过乙醇水溶液提取的PPE 对大肠杆菌、金黄色葡萄球菌有良好的抑制作用,且对金黄色葡萄球菌的抑制作用优于大肠杆菌。然而,Erin等
[35]声称:通过取水提取的PPE对金黄色葡萄球菌有抑制作用,但对大肠杆菌没有抑制作用。Al-zoreky的研究表明:水提取的PPE几乎没有抗菌能力,甲醇提取的PPE具有广泛的抗菌能力
[36]。此外,通过甲醇水溶液提取的含有13%鞣花酸标准化的PPE对金黄色葡萄球菌等革兰阳性细菌有抑制作用,但对大肠杆菌和其他革兰氏阴性细菌没有抑制作用
[37]。因此,提取溶剂对PPE的抗菌活性具有很大的影响,PPE中的每一种活性物质对每种微生物都有不同的抑制作用,PPE的纯化可能会影响其广谱抗菌性。
3 结论
本研究得到的PPE最佳提取条件为:时间77 min、乙醇浓度36.0%、温度66.9 ℃、料液比1∶37。在此条件下,TPC为(242.026±1.94)mgGAE/g,,与理论值相近,表明模型具有较好的拟合性,具有实际价值。PPE成分分析表明,其主要成分为果胶等糖类、有机酸、酚类化合物和少量的氨基酸,品种是影响PPE的成分种类及相对含量的重要因素。其中有机酸和酚类化合物种类和相对含量最多的是TN。抗氧化试验结果表明PPE具有较好的抗氧化能力,其中能力最强的是HL。抑菌试验表明PPE对大肠杆菌、荧光假单胞菌、金黄色葡萄球菌均具有一定的抑制作用,其对PPE的敏感度依次为荧光假单胞菌>金黄色葡萄球菌>大肠杆菌,其中HL的抑菌效果最好。PPE有望成为天然抗氧化剂和食品防腐剂的重要来源。