骨肉瘤(Osteosarcoma,OS)是最常见的原发性骨肿瘤,好发于青少年,目前该病的治疗多以手术、化疗和放疗为主
[1]。EPI是骨肉瘤常用的化疗药物之一,但其应用往往受剂量相关毒性的限制
[2],因此,在不降低疗效的前提下,减少化疗药物用量以降低其毒副作用,成了探索OS治疗的新方向。
近年来,联合化疗已被证明可以提高肿瘤治疗效果和减少副作用
[3]。天然多糖具有抗肿瘤、抗氧化、抗凝血和免疫刺激等广泛的生物学活性
[4-5],有研究显示,与天然多糖联合可以提高环磷酰胺对肝癌和宫颈癌的治疗效果,并减少化疗引起的不良反应
[6-7]。FA-2-b-β来源于蘑菇科药食同源的食用菌秦巴硒菇,是一种具有生物学活性的蛋白多糖复合物
[8],课题组前期研究发现FA-2-b-β不仅具有抗肿瘤活性
[9-10],而且对叠氮胸苷的抗肿瘤活性有增敏作用
[11],但FA-2-b-β与EPI联合抗肿瘤的作用目前相关研究及报道较少,因此,本研究主要探讨FA-2-b-β联合EPI对骨肉瘤MG63细胞增殖、迁移和凋亡的影响,旨在为进一步开发新型的化疗辅助药物提供理论依据,同时为骨肉瘤的治疗提供参考。
1 材料与方法
1.1 细胞与试剂
人骨肉瘤MG63细胞购自上海富衡生物科技有限公司细胞库。秦巴硒菇多糖(FA-2-b-β)购自北京同仁堂科技发展成都有限公司;盐酸表阿霉素(EPI)、线粒体膜电位检测试剂盒、BCA蛋白浓度检测试剂盒、PVDF膜均购自北京索莱宝生物科技有限公司;DMEM培养基、0.25% Trypsin-EDTA购自美国gibco公司;Annexin V-APC/7-ADD荧光双染细胞凋亡检测试剂盒购自中国Elabscience公司;TRIgent试剂购自中国Mei5bio公司;SYBY Green Pro Tar HS预混型试剂盒Ⅱ、Evo M-MLV反转录试剂盒及引物PI3K、AKT、mTOR、Bax、Bcl-2、Caspase-3、GAPDH购自艾科瑞生物科技有限公司;山羊抗兔二抗、山羊抗小鼠二抗购自北京中杉金桥生物科技有限公司;β-Actin、鼠Bax、Bcl-2、Caspase-3、PI3K、p-PI3K、Akt、p-Akt购自美国Proteintech公司。
1.2 方法
1.2.1 细胞培养及分组
MG63细胞常规复苏后,于37 ℃、5% CO2培养箱孵育培养,2~3 d传代1次,取对数生长期细胞用于试验。根据课题组前期MTT筛选所测浓度,将试验分为Control、FA-2-b-β(2 mg/mL)、EPI(1 μg/mL)、FA-2-b-β(2 mg/mL)+EPI(0.5 μg/mL)共4组。
1.2.2 MTT试验
将对数生长期的MG63细胞(按3×10
4个/孔)接种在96孔板中常规培养24 h,待细胞贴壁后,按照实验分组分别处理细胞,48 h后每孔加入100 μL MTT试剂,4 h后弃去MTT再加入100 μL DMSO试剂,避光震荡10 min,全自动酶标仪检测490 nm处各孔吸光度(
A)值,每组设6个复孔。细胞存活率(%)=(试验组
A490值-空白对照组
A490值)/(阴性对照组
A490值-空白对照组
A490值)×100%;并根据金氏公式
[12]计算
q值:
q=E(A+B)/(EA+EA-EA×EB),其中
EA、
EB为各药单用时的抑制率,
E(A+B)为两药联合时的抑制率,当
q<0.85表示拮抗作用,
q=0.8~1.15表示相加作用,
q>1.15表示协同作用。试验独立重复3次。
1.2.3 划痕试验
将对数生长期的MG63细胞(按5×105个/mL)接种到6孔板中,37 ℃、5% CO2培养过夜,待细胞达到80%至90%后,弃去旧培养基,用干净的微量枪头垂直于板底部划痕,每孔至少穿过3条横线,用PBS清洗3次以去除划下的细胞,继续培养0、6、12、24、48 h时取样并在倒置显微镜下观察拍照。试验独立重复3次
1.2.4 DAPI染色试验
将对数生长期的MG63细胞(按3×104个/孔)接种在96孔板中,37 ℃、5% CO2培养过夜。按试验分组分别处理细胞48 h,用4%的多聚甲醛固定20 min,每孔加入DAPI染液100 μL,染色5 min后在荧光显微镜下观察并拍照。试验独立重复3次
1.2.5 流式细胞术
将各组细胞用磷酸盐缓冲液洗涤并重悬,1 500 r/ min离心5 min后,用AnnexinV -APC /7-AAD荧光双染细胞凋亡检测试剂盒将细胞在室温、避光条件下染色15 min,并在1 h内用流式细胞仪检测细胞凋亡率,试验独立重复3次。计算总凋亡率(%)=早期凋亡(%)+晚期凋亡(%)。
1.2.6 JC-1染色试验
将对数生长期的MG63细胞(按5×105个/mL)接种在6孔板中,培养24 h,按试验分组处理细胞48 h后,每孔加入JC-1染液250 μL并放置在37 ℃、5% CO2下染色,20 min后在荧光显微镜观察并拍照。试验独立重复3次
1.2.7 qPCR试验
用TRIzol根据试剂说明从细胞中提取总RNA,使用Evo M-MLV反转录试剂盒将RNA逆转转录为互补cDNA;使用SYBR Green Pro Taq HS预混行qPCR试剂盒进行实时定量聚合酶链反应(qRT-PCR)分析,GAPDH作为目的基因的内参,采用2
-ΔΔCt方法检测mRNA(归一化为GAPDH)的相对表达水平,试验独立重复3次。试验所用引物序列见
表1。
1.2.8 免疫印迹试验
根据实验分组处理细胞后,利用RIPA裂解液提取各组MG63细胞总蛋白,用BCA检测试剂盒对蛋白进行定量检测,用SDS-PAGE凝胶对蛋白进行分离,并转到PVDF膜上,用5%的脱脂奶粉封闭2 h后加入一抗(1∶1 000)4 ℃孵育过夜,PBS洗3遍,加入对应的二抗(1∶5 000)室温孵育2 h,PBS洗3遍,最后用ECL化学发光特超敏试剂盒通过凝胶成像仪检测蛋白的表达水平,试验独立重复3次。密度测量值归一化到β-Actin水平,并使用ImageJ 1.48v软件进行分析。
1.3 统计分析
应用 SPSS 21.0软件进行统计分析,数据表示为,各组数据采用单因素方差分析,组间数据比较采用独立样本t检验,P<0.05为差异有统计学意义。
2 结果与分析
2.1 FA-2-b-β和EPI联合抑制骨肉瘤MG63细胞的增殖
用MTT法分别检测了FA-2-b-β、EPI及联合用药对MG63细胞的增殖抑制作用,结果如
图1所示,与对照组相比,FA-2-b-β、EPI及联合用药处理后细胞存活率明显下降(
P<0.05),其中联合用药组细胞存活率下降较单一用药更明显(
P<0.05),当FA-2-b-β 2 mg/mL联合EPI 0.5 μg/mL作用48 h时,
q值为1.18,表现为协同作用。
2.2 FA-2-b-β联合EPI对骨肉瘤MG63细胞形态和数量的影响
在显微镜下观察FA-2-b-β、EPI及联合用药处理48 h后MG63细胞的形态与数量变化,如
图2所示,与对照组相比,FA-2-b-β、EPI及联合用药均使存活细胞数量减少,且细胞形态不同程度的发生了收缩、变圆、形状不均等变化,其中联合用药组变化更显著。
2.3 FA-2-b-β联合EPI抑制骨肉瘤MG63细胞的迁移
通过细胞划痕试验检测联合用药对MG63细胞迁移能力的影响,如
图3所示,随着培养时间的增加,与对照组相比,FA-2-b-β和EPI组划痕愈合缓慢,与单独用药组相比,FA-2-b-β联合EPI组的划痕愈合速度最慢,划痕区域保持一定的宽度。
2.4 FA-2-b-β联合EPI降低骨肉瘤MG63细胞的线粒体膜电位
细胞凋亡的早期表现为线粒体膜电位的下降,在正常细胞中,JC-1以聚合物形式存在,产生红色荧光,线粒体膜电位降低后,JC-1成为单体,产生绿色荧光。如
图4所示,对照组线粒体膜电位无明显变化,表现为红色荧光,与对照组相比,FA-2-b-β、EPI和联合用药组表现为红色荧光减弱,绿色荧光增强,且联合用药组变化最为显著,表明联合用药可显著降低MG63细胞的线粒体膜电位。
2.5 FA-2-b-β联合EPI促进骨肉瘤MG63细胞的凋亡
DAPI染色显示(
图5-A),空白对照组细胞核染色较浅,亮度较低,呈现低浓度浅蓝色荧光,与对照组相比,EPI、FA-2-b-β及联合用药组均能不同程度引起细胞调亡,凋亡细胞的细胞核呈现高亮度的蓝色荧光,破碎严重,流式细胞仪定量验证(
图5-B),FA-2-b-β、EPI及联合用药组的细胞凋亡率分别为46.0%、62.4%、92.7%。
2.6 FA-2-b-β联合EPI调控MG63细胞中PI3K/AKT/mTOR通路相关基因和凋亡相关基因的表达
PCR结果显示(
图6),与对照组相比,FA-2-b-β、EPI和联合用药组均上调了
Bax和
Caspase-3基因的相对表达(
P<0.05),下调了
Bcl-2、
PI3K、
AKT和
mTOR基因的相对表达(
P<0.05),与单独给药组比较,联合给药组作用更显著(
P<0.05)。
2.7 FA-2-b-β联合EPI调控MG63细胞中PI3K/AKT/mTOR通路相关蛋白和凋亡相关蛋白的表达
蛋白免疫印迹试验结果显示(
图7),与对照组相比,FA-2-b-β、EPI和联合用药组均上调了Bax和Caspase-3蛋白的相对表达(
P<0.05),下调了Bcl-2、p-PI3K、p-AKT和p-mTOR蛋白的相对表达(
P<0.05),使Bax/Bcl-2比值增大;与单药组相比,联合用药组作用更显著(
P<0.05)。
3 讨论
骨肉瘤确诊时80%的患者已有微小转移灶,致死率和致残率极高,传统的化疗药物在缓解疾病的同时有较严重的毒副作用,长期使用容易产生耐药性
[13-14],因此探索有效且低毒性的治疗方案是十分必要的。秦巴硒菇多糖作为一种功能性食品的天然产物,本身具有安全和毒性小的优势,因此其可成为肿瘤联合治疗的候选药物之一,课题组前期已经探讨了其多糖复合物FA-2-b-β的抗肿瘤药效学与分子生物学机理
[11],也研究证明了FA-2-b-β对非小细胞肺癌A549细胞和白血病K562细胞的增殖具有明显的抑制作用
[15-16],同时本研究也发现FA-2-b-β联合EPI组可显著抑制MG63细胞的增殖,显微镜下观察到FA-2-b-β联合EPI组存活细胞数量明显减少,且细胞收缩、变圆、形状不均等形态变化最显著,细胞划痕愈合速度也明显比单独用药缓慢。此外,研究显示线粒体膜电位的下降是线粒体损伤的标志,也是细胞发生凋亡的早期表现
[17],本研究发现联合用药组MG63细胞的线粒体膜电位比单独用药组下降更明显,表明线粒体损伤更严重。以上研究结果均表明,FA-2-b-β联合EPI可抑制MG63细胞的增殖与迁移,并诱导其凋亡。
凋亡是细胞程序性死亡的一种形式,主要有线粒体依赖和非线粒体依赖两种途径
[18],Bcl-2家族蛋白是细胞凋亡的重要调控因子,包括促凋亡蛋白Bax和抗凋亡蛋白Bcl-2,线粒体依赖途径的凋亡主要是在Bcl-2和Bax的参与下改变线粒体膜的通透性,释放细胞色素C,从而诱导半胱氨酸蛋白酶(Caspase)的活化并激活下游的效应分子引起细胞的凋亡,所以Bax/Bcl-2比值的变化反应了凋亡的程度
[19],另外,半胱氨酸蛋白酶3(Caspase-3)是细胞凋亡过程中最主要的终末剪切酶,活化的Caspase-3有助于线粒体依赖凋亡通路的激活
[20]。本研究结果显示,联合用药可上调MG63细胞Bax和Caspase-3蛋白的表达,下调Bcl-2蛋白的表达,使Bax/Bcl-2比值升高,表明细胞凋亡作用增强。综上,EPI联合FA-2-b-β可通过激活线粒体依赖凋亡通路进一步诱导MG63细胞的凋亡。
PI3K/AKT/mTOR通路作为人体中重要的信号通路之一,可通过调控下游蛋白的表达,参与细胞的增殖和凋亡
[21]。在PI3K/AKT/mTOR级联反应中,AKT被PI3K激活后进一步增加mTOR的磷酸化水平,促进肿瘤细胞增殖和恶性转化,抑制肿瘤细胞凋亡
[22],据报道,PI3K/AKT/mTOR信号通路在骨肉瘤中被反复过度激活,并与肿瘤细胞的发生、增殖、侵袭和进展等紧密相关
[23-24]。为了进一步验证EPI联合FA-2-b-β诱导MG63细胞凋亡与PI3K/AKT/mTOR信号通路的联系,本研究检测了PI3K/AKT/mTOR通路相关基因和蛋白的表达,结果显示,EPI与FA-2-b-β联合用药可显著下调MG63细胞
PI3K、
AKT和
mTOR基因及p-PI3K、p-AKT和p-mTOR蛋白的表达水平,这表明联合用药时MG63细胞内PI3K/AKT/mTOR信号通路的抑制作用更明显,进而抑制肿瘤细胞的增殖,并诱导其凋亡的作用也更显著。
4 结论
综上所述,EPI联合FA-2-b-β具有协同抗肿瘤效应,初步探讨其机制可能是通过抑制PI3K/AKT/mTOR信号通路,从而进一步抑制肿瘤细胞的增殖,并诱导细胞凋亡,因此FA-2-b-β有可能成为与EPI联合治疗骨肉瘤的理想辅助药物之一,但其具体机制仍需进一步研究。