过氧化氢(H
2O
2)在马铃薯愈伤中具有重要作用,早期产生的H
2O
2作为信号分子调控与愈伤相关的反应,中后期产生的H
2O
2则主要参与愈伤组织形成的氧化交联
[1]。马铃薯愈伤期间所需的H
2O
2主要来源于NADPH氧化酶(NADPH oxidase,NOX)
[2]。NOX的上游元件钙依赖蛋白激酶(calcium-dependent protein kinases,CDPK)先感受钙信号,通过磷酸化NOX产生超氧阴离子(O
2·-),后者被超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)歧化为较为稳定的H
2O
2[3]。苯并噻二唑(Benzo (1,2,3)-thiadiazole-7-carbothioic acid,BTH)是水杨酸(SA)类似物,也是第一个人工合成的化学诱抗剂,BTH诱导的果蔬采后抗病性与其促进H
2O
2的产生密切相关
[4]。BTH可显著上调火龙果果实的
HuSOD1表达,增加SOD活性,提高贮藏初期的H
2O
2水平
[5]。BTH还可促进芒果果实O
2·- 和H
2O
2的积累
[6]。BTH通过提高桃和草莓果实的SOD活性,促进H
2O
2的积累
[7-8]。BTH可提高蓝莓果实贮藏早期的SOD活性,显著增加H
2O
2的含量
[9]。前期研究发现,BTH可提高愈伤期间甜瓜果实的 NOX和SOD活性,并促进O
2·-及H
2O
2的积累,使用NOX的专一性抑制剂二苯碘处理会抑制伤口处O
2·-和H
2O
2的产生
[10]。BTH还可增加马铃薯块茎愈伤期间的NOX和SOD活性以及H
2O
2含量
[2]。近期发现,BTH显著上调了马铃薯块茎愈伤14 d内
StCDPKs家族成员的表达,处理4 h与72 h时伤口处胞内钙离子的荧光强度显著增强
[11]。尽管已有BTH提高块茎愈伤期间伤口处胞内钙离子浓度,上调
StCDPKs各家族成员表达的报道,但BTH处理对马铃薯块茎愈伤早期(24 h内)胞内钙浓度和CDPK活性,以及
StRbohs和
StSODs成员表达和O
2·- 及H
2O
2积累的影响还未见报道。本研究用BTH处理模拟损伤的大西洋马铃薯块茎,测定愈伤早期块茎伤口处组织钙离子浓度,分析
StCDPK14表达量和CDPK活性,以及
Strbohs和
StSODs家族成员基因表达水平,测定H
2O
2和O
2·- 含量,结果可丰富马铃薯块茎愈伤早期的活性氧产生机理。
1 材料与方法
1.1 材料
供试大西洋马铃薯(Solanum tuberosum L.cv.Atlantic)块茎购自甘肃省定西市渭源县爱兰马铃薯种业有限公司。选取外观良好、大小一致、无病虫害且无机械损伤的马铃薯块茎装入网袋,24 h内运至实验室后于室温下(20~25 ℃,RH 70%~80%)贮藏待用。苯丙噻二唑(BTH)购自Sigma公司,有效浓度为98%。用蒸馏水配制成100 mg/L的BTH溶液待用。
1.2 方法
1.2.1 人工损伤及BTH处理
块茎经清水清洗后,用2%的次氯酸钠浸泡3 min,晾干后用不锈钢刀对半切开。用 100 mg/L BTH浸泡已损伤块茎3 min,取出自然晾干后于常温(20~25 ℃,
RH70%~80%)黑暗条件下贮藏
[12]。以蒸馏水处理作对照。
1.2.2 取样
在BTH处理后的第0、4、8、12和24小时,用不锈钢刀片垂直块茎伤口表面取2~3 mm深的伤口组织,液氮冷冻后立即用研磨机(IKA A11 basic型,德国)研成粉末,装入50 mL的离心管中,于-80 ℃下保存待用
[12]。 每个马铃薯块茎取样2个伤口,每个伤口取样0.3 g,共用150个块茎。
1.2.3 胞内Ca2+浓度测定
参照上海铭博生物科技有限公司Fluo-3-AM试剂盒说明书进行测定。取1 g 冷冻粉末,加1 mL预冷的裂解液,研成匀浆,在4 ℃,5 000 g下离心10 min,小心移出上清液待测。设置样品孔、标准孔、空白对照孔于黑色96孔板,分别加入100 μL上清液、100 μL标准液和100 μL阴性液。在所有孔中加入100 μL含有特异性 Ca2+ 酯化型探针 Fluo-3-AM(5 μmol/L)的反应液,室温(22 ℃)下避光孵育30 min后立即使用多功能酶标仪(Bio Tek SynergyTM H1型,美国)检测钙离子相对荧光强度(relative fluorescence unit,RFU)变化,激发波长和发射波长分别为485 nm和520 nm。Ca2+ 浓度以 μmol/L表示。
1.2.4 活性氧产生关键基因表达量分析
Rboh相关基因的选择依据Jiang等
[11]在损伤马铃薯块茎中,
Strbohs 6个成员上调表达的结果。
SOD基因的选择依据任映月等
[13]在损伤马铃薯块茎中,
StSODs家族成员鉴定的结果。
1.2.4.1 RNA的提取
取100 mg冷冻粉末于1.5 mL离心管中,依照TIANGAN 生物科技公司TRNZOL法提取。
1.2.4.2 cDNA合成与引物设计
以提取的总 RNA 为模板,通过 cDNA 合成试剂盒(美国MCE生物科技公司)进行第一链 cDNA 的合成。在RNase-free PCR管中依次加入:2 μL 5×gDNA digester Buffer,1 μL gDNA digester,1 ng总RNA,加RNase-free dd H
2O
2至10 μL,42 ℃孵育(恒温培养箱,SPX-30085H-II 型,上海新苗医疗器械制造有限公司,中国)5 min。然后再加入10 μL 2× Super RT Mix,用移液器轻轻吹打混匀,之后置于 PCR 扩增仪(BIO-RAD S 1000型,上海奥陆生物科技有限公司,中国)中,在25 ℃孵育5 min,42 ℃孵育42 min,再85 ℃孵育2 min 后终止反应。反应结束后置冰上冷却,于-20 ℃保存。引物设计如
表1所示。
1.2.4.3 实时荧光定量PCR
将cDNA模板稀释100倍进行检测。在冰浴条件下建立PCR体系:10 μL 终浓度为1×的2×SYBR Green Mix (Low Rox),0.4 μL 终浓度为 0.2 μmol/L的Forward Primer(10 μmol/L) 0.4 μL 终浓度为 0.2 μmol/L 的 Reverse Primer(10 μmol/L),2 μL cDNA模板,7.2 μL RNase-free ddH
2O。PCR反应条件:95 ℃预变性5 min;95 ℃ 10 s,60 ℃ 30 s,40 cycle;95 ℃ 15 s,60 ℃ 1 min,95 ℃ 15 s,1 cycle。完成上述操作后,将样品加入 96 孔板放在 LightCycler®96 SW 1.1 中进行反应。基因相对表达量的计算根据公式 2
-△△C(T)进行
[14]。
1.2.5 CDPK活性测定
钙依赖蛋白激酶(calcium-dependent protein kinases,CDPK)活性测定采用上海古朵生物科技有限公司的酶联免疫吸附(ELISA)法。往预先包被钙CDPK抗体的包被微孔中,依次加入样本、标准品、HRP标记的检测抗体,经过温育并彻底洗涤后用酶标仪(1510型,赛默飞世尔(上海)仪器有限公司,中国)在450 nm 波长下测定吸光度,以每分钟450 nm 处吸光度值变化0.01为1个酶活力单位(U),CDPK活性表示为U/mg prot。
1.2.6 O2·-和H2O2含量测定
超氧阴离子(O
2·
-)和H
2O
2 含量的测定分别参照Wu等
[15]和Zhang等
[16]的方法并作一定修改。分别在530 nm和410 nm下测定吸光度值,O
2·
- 和H
2O
2含量均以 μmol/g FW表示。
1.3 数据统计
上述所有基因表达分析和生化测定至少重复3次,用Microsoft Excel 2010 计算平均值和标准误(±SE)。用SPSS19.0进行Duncan’s 多重差异显著性分析(α=0.05)。
2 结果与分析
2.1 BTH处理提高了愈伤早期块茎伤口处组织的胞内Ca2+浓度
Ca
2+是植物体内重要的第二信使,同时也是CDPK的激活剂
[17]。愈伤早期,BTH处理后块茎伤口处组织的胞内Ca
2+浓度迅速升高,4 h时达到峰值后逐渐降低,12 h后又再次升高。对照块茎伤口处组织的胞内Ca
2+浓度呈单峰型变化,4 h时达到峰值。处理块茎的胞内Ca
2+浓度显著高于对照(
图1)。上述结果表明,BTH处理显著提高了愈伤早期马铃薯块茎伤口处组织的胞内Ca
2+浓度。
2.2 BTH处理提高了愈伤早期块茎伤口处StCDPK14表达量及CDPK活性
CDPK是一种丝氨酸/苏氨酸特性的蛋白激酶,可直接被Ca
2+激活
[18]。愈伤早期,BTH处理和对照伤口处的
StCDPK14表达量先迅速升高,8 h时达到峰值,后急速降低,12 h后再升高。除12 h外,处理块茎的表达量显著高于对照,在8 h和24 h时分别高出对照31.3%和73.2%(
图2-A)。愈伤早期,处理和对照块茎伤口处的CDPK活性变化与
StCDPK14的变化趋势基本一致,处理块茎的CDPK活性显著高于对照,8 h和24 h时分别高出对照31.1%和12.6%(
图2-B)。上述结果表明,BTH处理上调了愈伤早期块茎伤口处的
StCDPK14的表达水平,显著提高了CDPK活性。
2.3 BTH处理上调了愈伤早期块茎伤口处StRbohs的表达量
Rboh 是CDPK的下游元件,参与O
2·
- 的产生,马铃薯
StRbohs共有6个成员。愈伤早期,BTH处理和对照块茎伤口处
StrbohA和
StrbohB的表达量均呈双峰型变化,除12 h外,处理块茎
StrbohA和
StrbohB的表达量均显著高于对照(
图3-A,3-B)。处理和对照块茎伤口处的
StrbohC和
StrbohD表达量均呈单峰型变化,峰值均出现在8 h,处理块茎的
StrbohC和
StrbohD表达量显著高于对照,8 h时分别高出对照43.3%和10.5%(
图3-C,3-D)。处理和对照块茎伤口处的
StrbohE 和
StrbohH的表达量均迅速升高至8 h后急速降低,除4 h处理块茎的
StrbohE高出对照外,其他时间点处理与对照块茎间无显著差异(
图3-E)。处理块茎的
StrbohH在4 h和8 h处显著高于对照(
图3-F)。上述结果表明,BTH处理上调了马铃薯块茎愈伤早期的
Strbohs表达,其中对
StrbohA、
StrbohC和
StrbohH的上调作用更为明显。
2.4 BTH处理上调了愈伤早期块茎伤口处StSODs的表达量
SOD是唯一可将O
2·- 歧化为H
2O
2的酶,马铃薯
StSODs共有8个成员。愈伤早期,BTH处理和对照块茎的
StCSD1表达量均逐渐升高,除24 h外,处理块茎的
StCSD1表达量均显著高于对照(
图4-A)。处理和对照块茎的
StCSD2表达量先升高后迅速降低再略有升高,除12 h外,处理块茎的
StCSD2表达量均显著高于对照,8 h时处理高出对照20.5%(
图4-B)。处理和对照块茎的
StCSD3、StFSD1和
StMSD的表达均呈单峰型变化,峰值出现在8 h。除24 h外,处理的表达量显著高于对照,峰值时分别高出对照26.3%、65.4%和39%(
图4-C,4-E,4-H)。处理和对照块茎伤口处的
StCCS和
StFSD3均呈先升高后降低的趋势,均在愈伤前8 h有显著表达,且8 h时达到峰值(
图4-D,4-G)。此外,处理和对照块茎伤口处
StFSD2的表达呈单峰型变化,且在愈伤8 h和12 h时显著高于对照(
图4-F)
。上述结果表明,BTH处理可上调愈伤早期
StSODs家族成员的表达,其中对
StCSD1、
StCSD2 、
StFSD1和
StMSD表达的上调作用更为显著。
2.5 BTH处理提高了愈伤早期块茎伤口处O2·-和H2O2的含量
O
2·
- 由NOX转移电子产生,而产生的O
2·
- 很快被SOD歧化为H
2O
2。愈伤早期,处理和对照块茎伤口处的O
2·
-含量先迅速升高,后下降再上升,处理显著高于对照(
图5-A)。处理和对照块茎伤口处的H
2O
2含量均逐渐升高,处理的H
2O
2含量显著高于对照,24 h高出对照63.05%(
图5-B)。上述结果表明,BTH促进了愈伤早期马铃薯块茎伤口处O
2·
-和H
2O
2的积累。
3 讨论
Ca
2+ 信号作为第二信使,在植物生长发育和响应逆境胁迫方面扮演着重要角色
[17]。机械损伤、干旱及盐胁迫均会引发植物细胞产生Ca
2+信号,随后激活胞内各种钙离子传感器(Ca
2+ sensors),使其对外界刺激产生的特异性 Ca
2+信号进行识别,诱导H
2O
2产生并引起下游的一系列防卫反应
[19]。当植物细胞受到各种生物或非生物胁迫时,胞外Ca
2+可通过细胞膜上的Ca
2+通道内流进入细胞质
[20],从而使胞质内Ca
2+浓度升高。1,4,5-三磷酸肌醇(IP
3)途径是植物细胞内钙信号产生的主要途径,它通过与细胞内质膜上依赖 IP3 的钙通道蛋白结合而打开钙通道,促进Ca
2+内流
[21]。本研究发现,BTH处理后马铃薯块茎伤口处Ca
2+浓度显著升高(
图1),该结果与BTH处理马铃薯块茎导致胞质中Ca
2+荧光强度迅速增加的结果类似
[11]。研究表明,ATP可通过G蛋白偶联途径激活IP
3,且ATP水平越高,IP
3越容易被激活
[22]。由于BTH可提高苹果果实的ATP水平
[23],因此,推测BTH可能通过提高ATP水平来激活IP
3,从而导致胞内Ca
2+浓度升高。CDPK是钙调节信号级联反应的关键枢纽,具有钙离子结合蛋白共有的EF-hand 结构域,其活性可在结合钙离子后被激活
[18-24]。本研究发现,BTH处理后,马铃薯块茎伤口处
StCDPK14在愈伤早期的表达量显著升高,同时CDPK的活性也显著增加(
图2),该结果与BTH处理上调马铃薯块茎伤口处
StCDPKs表达的结果类似
[11]。研究发现,钙的内流可激活其下游CDPK活性,CDPK进一步磷酸化下游转录因子
[25]。据此认为,BTH处理通过增加块茎伤口处胞内钙浓度来激活CDPK。
NOX也可称为呼吸爆发氧化酶同系物 (Respiratory burst oxidase homologue,Rboh) ,是植物产生活性氧的关键酶系
[26]。Rbohs是CDPK的下游调控元件,马铃薯CDPK可直接磷酸化Rbohs,导致O
2·-的产生
[3]。本研究发现,BTH处理后,块茎伤口处
Strbohs各成员迅速上调表达(
图3)。有研究表明,定位于细胞质膜的
Strboh A可通过氧化爆发诱导的伤口愈合来提高马铃薯块茎的抗性,它介导了块茎损伤后O
2·
- 的最初生成,当
Strboh A基因缺失时,块茎的愈伤形成能力会下降
[27]。此外,过表达
StrbohC可促进O
2·
- 的积累,提高马铃薯块茎对非生物胁迫的抗性
[28]。本研究结果显示,BTH显著提高O
2·- 的含量(
图5-A),该结果与前期在马铃薯愈伤7 d内观察到的结果类似。因此认为,BTH激活的CDPK通过与Rbohs磷酸化促进了O
2·
-的产生。
SOD是一种H
2O
2合酶,在植物中促进O
2·
- 催化转化为H
2O
2[29]。本研究发现,BTH处理后马铃薯块茎伤口处组织的H
2O
2含量升高(
图5-B),同时
StSOD家族成员明显上调(
图4),该结果与BTH处理火龙果果实的研究结果类似
[5]。
StSODs启动子区富含ABA响应元件
[13],表明
StSOD基因可能是ABA信号通路中直接受关键转录因子调控的下游基因
[30-31]。转录组结果显示,BTH还可促进愈伤早期ABA的合成,ABA可上调ABA信号通路下游ABF转录因子来直接与SOD基因启动子序列结合,从而促进SOD的基因表达
[32]。因此,推测BTH可能通过促进ABA的合成和信号传导来上调
StSODs,导致了伤口处H
2O
2含量的提高。
4 结论
BTH处理增加了愈伤早期(24 h内)马铃薯块茎伤口处组织的胞内Ca2+浓度,促进了StCDPK14的表达,提高了CDPK活性。BTH还显著上调了Strbohs和StSODs家族成员的表达,促进了O2·-和H2O2的形成。BTH对马铃薯块茎愈伤早期活性氧产生的显著作用,可为今后研究BTH诱导其他作物活性氧产生所借鉴。