夏枯草抑制人胃癌细胞上皮间质化的机制

李云川 ,  王刚 ,  李强 ,  李玉庆

西北药学杂志 ›› 2024, Vol. 39 ›› Issue (2) : 93 -98.

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西北药学杂志 ›› 2024, Vol. 39 ›› Issue (2) : 93 -98. DOI: 10.3969/j.issn.1004-2407.2024.02.015
论著

夏枯草抑制人胃癌细胞上皮间质化的机制

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Mechanism of Prunella vulgaris inhibiting epithelial mesenchymal transitions of human gastric cancer cells

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摘要

目的 探讨夏枯草对胃癌细胞上皮间质化(epithelial mesenchymal transitions,EMT)的抑制作用及其可能的作用机制。 方法 选取人胃癌细胞株HGC-27,将细胞随机分为对照组及夏枯草低、中、高剂量组(20、40、80 μg·mL-1 夏枯草提取物)。用四甲基偶氮唑盐[3-(4,5)-dimethylthiahiazo(-z-y1)-3,5-di-phenytetrazolium bromide,MTT]法检测细胞增殖抑制率;划痕实验检测细胞迁移率;Transwell小室实验检测细胞侵袭能力;反转录∙聚合酶链反应(reverse transcription-polymerase chain reaction,RT-PCR)检测miR-155、糖原合成酶激酶-3β(glycogen synthase kinase-3β,GSK-3β)和β连环蛋白(β-catenin)mRNA表达情况;蛋白质印迹法(Western blotting)检测GSK-3ββ-catenin、E-钙黏蛋白(E-cadherin)、神经性钙黏蛋白(N-cadherin)、波形蛋白(Vimentin)和锌指蛋白(Snail)表达情况。 结果 与对照组比较,夏枯草3组胃癌细胞增殖抑制率、GSK-3β mRNA、GSK-3β和E-cadherin蛋白表达水平升高,细胞迁移率、细胞侵袭数量、miR-155、β-catenin mRNA水平、β-catenin、N-cadherin、Vimentin和Snail蛋白的表达水平降低(P<0.05)。与夏枯草低剂量组比较,夏枯草中剂量组、夏枯草高剂量组胃癌细胞增殖抑制率、GSK-3β mRNA、GSK-3β和E-cadherin蛋白的表达水平升高,细胞迁移率、细胞侵袭数量、miR-155、β-catenin mRNA水平、β-catenin、N-cadherin、Vimentin和Snail蛋白的表达水平降低(P<0.05),夏枯草高剂量组诸项指数变化尤其明显(P<0.05)。 结论 夏枯草对胃癌细胞增殖、迁移和侵袭有一定的抑制作用,并能有效阻断胃癌细胞发生EMT,可能是通过降低miRNA-155表达水平、抑制Wnt/β-catenin信号通路发挥作用。

Abstract

Objective To investigate the inhibitory effect of Prunella vulgaris on epithelial mesenchymal transitions (EMT) of gastric cancer cells and its possible mechanism. Methods Human gastric cancer cell line HGC-27 was selected and the cells were randomly divided into control group, low, medium and high doses of Prunella vulgaris groups (20, 40 and 80 μg·mL-1Prunella vulgaris). The inhibition rate of cell proliferation was detected by 3-(4,5)-dimethylthiahiazo(-z-y1)-3,5-di-phenytetrazolium bromide (MTT) assay. The cell mobility was detected by scratch test. The invasion ability of cells was detected by Transwell chamber experiment. The levels of miR-155, glycogen synthase kinase-3β (GSK-3β) and β‍-catenin mRNA expression were detected by reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR). The levels of GSK-3ββ-catenin, E-cadherin, N-cadherin, Vimentin and Snail protein expression were detected by Western blotting. Results Compared with the control group, the inhibition rate of gastric cancer cell proliferation, the levels of GSK-3β mRNA expression, GSK-3β and E-cadherin protein expression were increased, the cell migration rate, the numbers of cell invasion, the levels of miR-155, β-catenin mRNA expression, β-catenin, N-cadherin, Vimentin and Snail protein expression were decreased in low, medium and high doses of Prunella vulgaris groups (P<0.05). Compared with the low dose group of Prunella vulgaris, the proliferation inhibition rate of gastric cancer cells, the expression levels of GSK-3β mRNA, GSK-3β and E-cadherin proteins increased, and the cell migration rate, the number of cell invasions, the mRNA levels of miR-155 and β-catenin mRNA, β-catenin, N-cadherin, Vimentin and Snail proteins expression increased in the medium dose and high dose groups of Prunella vulgarisP<0.05). The indexes of high dose of Prunella vulgaris group changed significantly (P<0.05). Conclusion Prunella vulgaris has a certain inhibitory effect on the proliferation, migration and invasion of gastric cancer cells, and can effectively block the EMT of gastric cancer cells, possibly by reducing the expression of mirna-155 and inhibiting Wnt/β-catenin signaling pathway plays a role.

Graphical abstract

关键词

夏枯草 / miR-155 / 胃癌细胞 / 上皮间质化 / 糖原合成酶激酶-3β / β连环蛋白

Key words

Prunella vulgaris / miR-155 / gastric cancer cells / epithelial mesenchymal transitions / glycogen synthase kinase-3β / β catenin

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李云川,王刚,李强,李玉庆. 夏枯草抑制人胃癌细胞上皮间质化的机制[J]. 西北药学杂志, 2024, 39(2): 93-98 DOI:10.3969/j.issn.1004-2407.2024.02.015

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胃癌是全球常见的恶性肿瘤之一,胃癌的治疗包括手术、化疗药物与放射治疗相结合辅助治疗方式等1-2。夏枯草是提取自唇形科植物夏枯草干燥果穗的有效活性成分,具有降压、降血糖、抗炎、抗肿瘤和提高机体免疫力等药理作用,临床常用于治疗高血压病、肝气腹痛等3-5。研究发现,夏枯草可直接或间接影响肿瘤细胞上皮间质化(epithelial mesenchymal transitions, EMT)相关致癌通路,如分泌型糖蛋白(secretory glycoprotein, Wnt)/β连环蛋白(β-catenin)信号通路,从而发挥抗肿瘤作用6。因此,本研究通过检测不同质量浓度夏枯草对胃癌细胞HGC-27增殖、迁移侵袭和EMT的影响,探讨其可能的作用机制,为临床治疗胃癌提供参考。

1 仪器与材料

1.1 仪器

ND-100分光光度计(湖南湘仪实验室仪器开发有限公司);HF-90型CO2恒温细胞培养箱(上海力申科学仪器有限公司)。

1.2 试药

夏枯草提取物(规格20∶1,西安莱保生物科技有限公司);β-actin多克隆抗体、糖原合成酶激酶-3β(glycogen synthetase kinase, GSK-3β)、β-catenin、E-钙黏蛋白(E-cadherin)、神经性钙黏蛋白(N-cadherin)、波形蛋白(Vimentin)、锌指蛋白(Snail)抗体和山羊抗兔二抗免疫球蛋白G(immunoglobulin,IgG)均购自美国Abcam公司;RPMI1640细胞培养基、10 g·L-1胎牛血清、氨苄青霉素、硫酸链霉素和胰蛋白酶均购自上海碧云天生物技术有限公司。

1.3 细胞株

人胃癌HGC-27细胞株,购自中国科学院上海细胞生物学研究所。

2 方法

2.1 细胞培养

取人胃癌HGC-27细胞株培养于含有100 g·L-1胎牛血清和双抗(青霉素/链霉素)的RPMI-1640细胞培养基中,置于37 ℃、含有体积分数5% CO2的恒温培养箱中培养24 h。

2.2 细胞分组

将人胃癌HGC-27细胞株随机分为对照组及夏枯草低、中、高剂量组。于显微镜下观察细胞状态,确认细胞生长状态良好且密度约为体积分数90%时即可加药,夏枯草低、中、高剂量组分别加入20、40、80 μg·mL-1 夏枯草提取物7-8,对照组加入等量完全培养基,加药后继续置于37 ℃、含有体积分数5% CO2的恒温培养箱中培养24 h。

2.3 四甲基偶氮唑盐[3-(4,5)-dimethylthiahiazo(-z-y1)-3,5-di-phenytetrazolium bromide,MTT]法检测细胞的增殖抑制率

用MTT实验检测细胞增殖能力,取处于对数生长期的HGC-27细胞加入0.25 g·L-1胰蛋白酶消化细胞,调整细胞密度为105个·mL-1,将细胞接种于96孔板中,每孔100 μL,设置5个复孔。按照2.2项下方法给药培养,在24、48 h后取出96孔板,每孔加入含有0.5 mg·mL-1 MTT溶液100 μL,继续培养4 h,再加入DMSO溶解液孵育过夜。用酶联免疫检测仪于波长450 nm处检测各孔吸光度(A)值,评估细胞增殖能力并计算细胞增殖抑制率,实验重复3次。细胞增殖抑制率(%)=(1-夏枯草各剂量组A值/对照组A值)×100%。

2.4 划痕实验检测细胞迁移能力

将HGC-27细胞按照2.2项下方法给药培养24 h后,取对数生长期HGC-27细胞接种于6孔板中(细胞密度为105个·孔-1),待细胞融合率至90%时,用200 μL无菌移液枪头尖端轻轻刮过细胞(穿过孔中心),冲洗散落细胞加入新鲜培养基继续培养24 h,分别于0、24 h显微镜下观察划痕并拍照,分析细胞迁移能力,计算细胞迁移率,实验重复3次。细胞迁移率(%)=[(0 h划痕距离-24 h划痕距离)/0 h划痕距离]×100%。

2.5 Transwell检测细胞侵袭能力

HGC-27细胞按照2.2项下方法给药培养24 h后,收集HGC-27细胞制备密度为105个·mL-1的细胞悬液,接种于铺满Matrix胶稀释液Transwell小室的上室内,在小室的下室内加入600 μL 10 g·L-1胎牛血清培养液,置于37 ℃、含有体积分数5% CO2恒温培养箱中培养24 h。取出小室并吸干上室中的培养液,用体积分数95%乙醇溶液固定20 min,再用PBS溶液清洗2次,滴加结晶紫染液染色10 min,PBS溶液清洗后在光学显微镜下拍照、观察并统计细胞数量,实验重复3次。

2.6 反转录∙聚合酶链反应(reverse transcription-polymerase chain reaction,RT-PCR)检测mRNA的表达水平

按照TRIzol试剂盒说明书操作提取胃癌细胞HGC-27中的总RNA,鉴定RNA质量与纯度后用反转录试剂盒合成cDNA。配制PCR反应体系(20 μL):cDNA 1 μL,上、下游引物各1 μL,2×Reaction Mix 10 μL,ddH2O 7 μL。反应条件:95 ℃ 5 s,94 ℃ 30 s,55 ℃ 30 s,72 ℃ 30 s,72 ℃ 10 min,循环40次。以2-△△CT法计算目的基因相对内参表达量。引物序列为miR-155-F(5′⁃ACACTCCAGCTGTAAACATCCT-3′‍),miR-155-R(5′-CTCAACTGGTGTCGTGGA-3′);U6-F(5′-CGTTCACGCATCTTTAAAATTGGA-3′),U6-R(5′-TTATGCGTGTCATCCTTGCG-3′);GSK-3β-F(5′-ATGGCAGCAAGGTAACCACAG-3′),GSK-3β-R(5′-TCTCGGTTCTTAAATCGCTTGTC-3′);β-catenin-F(5′-ATGGCAGCAAGGTAACCACAG-3′),β-catenin-R(5′-TCTCGGTTCTTAAATCGCTTGTC-3′);β-actin-F(5′-GTGACGTTGACATCCGTAAAGA-3′),β‍-actin-R(5′-GCCGGACTCATCGTACTCC-3′)。

2.7 蛋白印迹法(Western blotting)检测蛋白表达量

取胃癌细胞HGC-27,加入RIPA裂解液500 μL 提取总蛋白,冰上孵育30 min,4 ℃下以12 000 r·min-1离心10 min,取上清液。BCA法检测蛋白质量浓度,确定蛋白上样量,配制好分离胶与浓缩胶后加入蛋白40 μg,恒压80 V电泳30 min,恒压120 V电泳至溴酚蓝到达底部。将其转至PVDF膜上,加入含有脱脂奶粉的封闭液,置于摇床中封闭2 h,弃液加入TBST冲洗,再加入1∶2 000稀释一抗,于4 ℃孵育过夜,TBST冲洗后加入1∶5 000稀释标记二抗室温下封闭2 h,用TBST清洗,滴加化学发光剂进行显影。采集图像,以β-actin为内参,计算待测蛋白的相对表达量。

2.8 统计学方法

用SPSS 23.0统计学软件分析数据,计量数据以(x¯±s)表示,用单因素方差分析(One-way ANOVA)进行多组间比较,LSD-t检验进行两组间比较。P<0.05为差异有统计学意义。

3 结果

3.1 胃癌细胞增殖抑制率的比较

低、中、高剂量夏枯草作用于胃癌HGC-27细胞24、48 h后,与对照组比较,夏枯草低、中、高剂量组胃癌细胞增殖抑制率均升高(P<0.05)。与夏枯草低剂量组比较,夏枯草中、高剂量组胃癌细胞增殖抑制率均升高(P<0.05),夏枯草高剂量组升高更显著(P<0.05)。与24 h比较,48 h后夏枯草低、中、高剂量组胃癌细胞增殖抑制率均升高(P<0.05)。见表1

3.2 胃癌细胞迁移能力的比较

与对照组比较,夏枯草低、中、高剂量组胃癌细胞迁移率均降低(P<0.05)。与夏枯草低剂量组比较,夏枯草中、高剂量组胃癌细胞迁移率均降低(P<0.05),夏枯草高剂量组降低得更显著(P<0.05)。见表2图1

3.3 胃癌细胞侵袭能力的比较

与对照组比较,夏枯草低、中、高剂量组胃癌细胞侵袭数量均减少(P<0.05)。与夏枯草低剂量组比较,夏枯草中、高剂量组胃癌细胞侵袭数量均减少(P<0.05),夏枯草高剂量组减少得更显著(P<0.05)。见图2表3

3.4 miR-155、GSK-3ββ-catenin mRNA水平的比较

与对照组比较,夏枯草低、中、高剂量组胃癌细胞中miR-155表达、β-catenin mRNA表达水平均降低,GSK-3β mRNA的表达水平均升高(P<0.05)。与夏枯草低剂量组比较,夏枯草中、高剂量组胃癌细胞中miR-155、β-catenin mRNA表达水平均降低,GSK-3β mRNA的表达水平均升高(P<0.05),夏枯草高剂量组诸项指数变化更显著(P<0.05)。见表4

3.5 Wnt/β-catenin通路相关蛋白水平的比较

与对照组比较,夏枯草低、中、高剂量组胃癌细胞中GSK-3β蛋白表达水平均升高,β-catenin蛋白表达水平均降低(P<0.05)。与夏枯草低剂量组比较,夏枯草中、高剂量组胃癌细胞中GSK-3β蛋白表达水平均均升高,β-catenin蛋白表达水平均降低(P<0.05),夏枯草高剂量组诸项指标变化更显著(P<0.05)。见表5图3

3.6 EMT相关蛋白水平的比较

与对照组比较,夏枯草低、中、高剂量组胃癌细胞中的E-cadherin蛋白表达水平均升高,N-cadherin、Vimentin和Snail蛋白的表达水平均降低(P<0.05)。与夏枯草低剂量组比较,夏枯草中、高剂量组胃癌细胞中的E-cadherin蛋白表达水平均升高,N-cadherin、Vimentin和Snail蛋白表达水平均降低(P<0.05),夏枯草高剂量组各种蛋白的表达水平变化更显著(P<0.05)。见图4表6

4 讨论

本研究用不同质量浓度夏枯草处理体外培养的胃癌细胞HGC-27,从分子机制上探讨夏枯草对胃癌细胞增殖、迁移侵袭和EMT的影响。结果显示,在MTT实验、划痕实验和Transwell小室实验中,夏枯草低、中、高剂量组与对照组比较,胃癌细胞增殖抑制率均显著升高,细胞迁移率和侵袭细胞数量均处于下降趋势。表明在给予不同质量浓度夏枯草处理后,胃癌细胞HGC-27的生长活性受到抑制,且在高质量浓度(80 μg·mL-1)夏枯草作用下抑制作用更明显。

EMT是一种癌症细胞在病理状态下由上皮样细胞向间质细胞转化的过程,在恶性肿瘤发展的各个阶段均起关键作用9-10。主要表现为上皮细胞表型特征逐渐减少、消失,细胞极性消失且黏附力下降,而间质细胞表性特征逐渐凸显11,肿瘤细胞基底膜降解且细胞外基质重构,细胞生物学行为(如细胞迁移、侵袭能力)增强12-13。微小RNA是一类内源性非编码小分子单链RNA的总称,长度多为19~22个核苷酸,在基因调控中的转录过程发挥着重要作用,参与细胞的增殖、分化转移和凋亡等多种生理活动14。研究报道,miRNA可直接调控EMT过程,在肿瘤发展过程中扮演着重要角色,miRNA-155在胃癌组织中的表达水平远高于癌旁组织15。多项研究报道,多个致癌信号通路均参与到EMT中,Wnt/β-catenin信号通路就是其中之一16-17。在正常生理条件下,Wnt蛋白缺失且β-catenin降解,信号通路并无活性,当受到异常表达的miRNA-155刺激后,Wnt配体与低密度脂蛋白受体相关蛋白结合18,促使GSK-3β形成的蛋白复合物降解,β-catenin蛋白在细胞质中累积,与转录因子相互作用,启动下游原癌基因,调控癌症细胞的增殖、分化和转移等过程19。ZHANG Y等20研究发现,在胃癌组织中检测到异常表达的miRNAs,可能与Wnt/β-catenin信号通路息息相关,抑制该信号通路可有效降低肿瘤转移率。在本研究中,与对照组比较,夏枯草低、中、高剂量组细胞中miRNA-155表达水平均降低,GSK-3β mRNA和蛋白表达水平均升高,β-catenin mRNA和蛋白表达水平均降低。此外,上皮标志物E-cadherin蛋白表达水平升高,间质标志物N-cadherin、Vimentin和Snail蛋白表达水平降低,表明夏枯草可能通过抑制胃癌细胞内miRNA-155表达,降低GSK-3ββ-catenin蛋白水平,阻断Wnt/β-catenin信号通路,从而抑制胃癌细胞中的EMT过程。表明夏枯草可以通过阻碍胃癌细胞发生EMT,降低细胞的迁移和侵袭能力。

综上所述,夏枯草对胃癌细胞HGC-27增殖、迁移和侵袭有一定的抑制作用,并能有效抑制胃癌细胞发生EMT,可能是通过降低miRNA-155表达、抑制Wnt/β-catenin信号通路发挥作用,为临床治疗胃癌提供实验依据。

参考文献

[1]

WEI LSUN JZHANG Net al. Noncoding RNAs in gastric cancer: Implications for drug resistance‍[J]. Mol Cancer202019(1):62-63.

[2]

CHEN CTANG XLIU Yet al. Induction/reversal of drug resistance in gastric cancer by non-coding RNAs[J]. Int J Oncol201954(5):1511-1524.

[3]

JIAO XLIU HLU Qet al. Study on the mechanism of prunella vulgaris l on diabetes mellitus complicated with hypertension based on network pharmacology and molecular docking analyses‍[J]. J Diabetes Res202121(10):994-998.

[4]

WANG S JWANG X HDAI Y Yet al. Prunella vulgaris: A comprehensive review of chemical constituents, pharmacological effects and clinical applications‍[J]. Curr Pharm Des201925(3):359-369.

[5]

ZHANG XSHEN TZHOU Xet al. Network pharmacology based virtual screening of active constituents of prunella vulgaris. and the molecular mechanism against breast cancer[J]. Sci Rep202010(1):1573-1578.

[6]

NECULA LMATEI LDRAGU Det al. Recent advances in gastric cancer early diagnosis[J]. World J Gastroenterol201925(17):2029-2044.

[7]

SHEN XYANG RAN Jet al. Analysis of the molecular mechanisms of the effects of prunella vulgaris against subacute thyroiditis based on network pharmacology‍[J]. Evid Based Complement Alternat Med202011(10):981-992.

[8]

GAO WXU H. Root extract of prunella vulgaris inhibits in vitro and in vivo carcinogenesis in MCF-5 human breast carcinoma via suppression of angiogenesis, induction of apoptosis, cell cycle arrest and modulation of PI3K/AKT signalling pathway‍[J]. J BUON201924(2):549-554.

[9]

DONGRE AWEINBERG R A. New insights into the mechanisms of epithelial-mesenchymal transition and implications for cancer‍[J]. Nat Rev Mol Cell Biol201920(2):69-84.

[10]

LEE JYOU J HKIM M Set al. Epigenetic reprogramming of epithelial-mesenchymal transition promotes ferroptosis of head and neck cancer‍[J]. Redox Biol202037(10):1016-1021.

[11]

YOU J HLEE JROH J Let al. Mitochondrial pyruvate carrier 1 regulates ferroptosis in drug-tolerant persister head and neck cancer cells via epithelial-mesenchymal transition[J]. Cancer Lett2021507(6):40-54.

[12]

DEPIANTO D JHEIDEN J AMORSHEAD K Bet al. Molecular mapping of interstitial lung disease reveals a phenotypically distinct senescent basal epithelial cell population‍[J]. JCI Insight20216(8):1436-1442.

[13]

ZHANG YJIANG MNOURAIE Met al. GDF15 is an epithelial-derived biomarker of idiopathic pulmonary fibrosis‍[J]. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol2019317(4):510-521.

[14]

ALI S ZLANGDEN S SMUNKHZUL Cet al. Regulatory mechanism of microRNA expression in cancer[J]. Int J Mol Sci202021(5):1723-1728.

[15]

CHEN GZHANG MLI Yet al. Research progress in the role of microRNA-155 in regulation of autophagy and diagnosis and treatment for gastric cancer‍[J]. J Central South University201944(1):87-91.

[16]

YU ZJIANG XQIN Let al. A novel UBE2T inhibitor suppresses Wnt/β-catenin signaling hyperactivation and gastric cancer progression by blocking RACK1 ubiquitination[J]. Oncogene202140(5):1027-1042.

[17]

闫小飞, 张富军, 杜小娟, . 丹参素通过激活Wnt/β-catenin通路促进大鼠原代成骨细胞的分化[J]. 西北药学杂志201833(5):607-611.

[18]

LIU XLONG ZCAI Het al. TRIM58 suppresses the tumor growth in gastric cancer by inactivation of β-catenin signaling via ubiquitination‍[J]. Cancer Biol Ther202021(3):203-212.

[19]

FENG YREN JGUI Yet al. Wnt/β-catenin-promoted macrophage alternative activation contributes to kidney fibrosis[J]. J Am Soc Nephrol201829(1):182-193.

[20]

ZHANG YXU JFU Het al. UBE3C promotes proliferation and inhibits apoptosis by activating the β-catenin signaling via degradation of AXIN1 in gastric cancer‍[J]. Carcinogenesis202142(2):285-293.

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