立枯丝核菌(
Rhizoctonia solani)是一种重要的土传病原菌,不产生无性孢子,以菌丝或菌核形态存活于土壤,是危害严重的植物病原真菌
[1]。近年来,由立枯丝核菌引起的病害如水稻纹枯病等,造成较为严重的经济损失
[2]。目前,化学防治是最常用且高效的一种防治手段,但广泛使用杀菌剂会造成病原菌的耐药性和农药残留问题,污染环境,严重威胁人类健康及生物多样性。所以探索新型生态友好型抗真菌剂可以更好地帮助农业生产
[3]。
色氨酸的衍生物N-乙酰-5-甲氧基色胺,即褪黑素(melatonin, N-acetyl-5-methoxytryptamine),是一种广泛存在于植物体内的具有生物活性的小分子物质,可以通过直接或间接清除机体活性氧或抵抗自身和外界引起的氧化作用,能够与大量的ROS和RNS相互作用
[4]。褪黑素同时也作为一种植物的信号调节因子可以与植物褪黑素受体(CAND2/PMTR1)作用,调控受体依赖的气孔关闭
[5]。褪黑素可以抑制植物病菌,且其对植物病原菌具有广谱抑菌功能
[6-8]。虽然褪黑素在很多植物中存在,但因其含量低,且生物合成过程复杂,不具备价格上的优势,极大地限制了褪黑素在农业生产上的应用。因此,寻找价格低,效果好、合成效率高的褪黑素功能替代物对未来农业生产具有较高的应用价值。
5-甲氧基色胺(5-Methoxytryptamine)作为褪黑素的中间产物缺乏褪黑素的乙酰化侧链,保留游离氨基,具有较强碱性;5-甲氧基吲哚(5-Methoxyindole)作为褪黑素的化学合成的中间产物结构仅含吲哚环,5位被甲氧基取代,无侧链修饰,疏水性较强,易于穿透细胞膜。它们的合成相对简单而且可以与褪黑素被植物相同的受体蛋白识别
[9]。同时这两种物质都含有吲哚环,吲哚衍生物具有杀虫、除草、抗菌、抗癌、抗炎、生物生长调节剂等广谱生物活性,引起了众多科研人员的关注。吲哚能够通过特定的转录因子来减少生物膜的形成,影响细菌对于抗生素的抵抗性
[10];吲哚类化合物还表现出了较强的抗植物病原真菌的作用
[11]。因此,选择5-甲氧基色胺和5-甲氧基吲哚作为褪黑素的衍生物探求褪黑素对于立枯丝核菌的抑制作用。
本文探究不同浓度褪黑素及其化学结构类似物在体外条件下对立枯丝核菌菌丝生长的影响从而筛选出理想的褪黑素功能替代物,为褪黑素及其化学结构类似物在抑制立枯丝核菌的应用上提供参考依据。
1 材料与方法
1.1 材料、试剂与仪器
立枯丝核菌(
Rhizoctonia solani)由延安大学陕西省黄土高原资源植物研究与利用省市共建重点实验室保存。褪黑素(N-acetyl-5-Methoxytryptamine,MT)、5-甲氧基色胺(5-Methoxytryptamine,5-MT)和5-甲氧基吲哚(5-Methoxyindole,5-MI)(分析纯)均购自索莱宝化学试剂有限公司,化合物的分子结构式如
图1所示。
SPX智能型生化培养箱(宁波江南仪器厂);Olympus BX43普通显微镜(奥林巴斯显微镜公司)。
1.2 实验方法
1.2.1 菌落直径测定
MT、5-MT和5-MI浓度设为低浓度
C1=50 μmol·L
-1、
C2=100 μmol·L
-1、
C3=200 μmol·L
-1和
C4=400 μmol·L
-1和高浓度
C5=0.5 mmol·L
-1、
C6=1.0 mmol·L
-1、
C7=2.0 mmol·L
-1和
C8=4.0 mmol·L
-1。将不同浓度的MT、5-MT和5-MI制备PDA含药培养基,以蒸馏水为空白对照(CK),培养皿中央移入培养5 d的立枯丝核菌菌饼(
Φ=5 mm),放置于28 ℃恒温培养箱中培养3 d。待空白对照菌丝长满培养皿时,采用十字交叉法测量菌落直径
[12]。采用Excel 2010和SPSS 20.0对相关数据进行统计分析。
1.2.2 菌丝生长形态的观察
根据1.2.1结果,得出C5-C8浓度的MT对立枯丝核菌菌丝生长的抑制作用具有显著性差异,因此选用上述浓度进一步探究MT对立枯丝核菌的抑制作用影响。同理,选用浓度为C7和C8的5-MT,选用C5和C6的5-MI研究对立枯丝核菌的抑制作用。配置方法同1.2.1,并于光学显微镜下对菌丝生长形态进行观察。
1.2.3 细胞活力检测
为了进一步探究MT、5-MT和5-MI对立枯丝核菌的抑制作用,通过检测MT、5-MT和5-MI处理后立枯丝核菌细胞活力的变化,利用Hoechst33342/PI荧光双染法进行评价
[13]。选取1.2.2所需使用的观测菌丝生长形态的MT,5-MT和5-MI的浓度,使用细胞凋亡荧光Hoechst3322/PI双染试剂盒对菌丝进行染色,染色后在荧光显微镜下观察细胞凋亡活性并拍照。
1.2.4 活性氧积累检测
为了进一步探究MT、5-MT和5-MI对立枯丝核菌的抑制作用,对处理后的立枯丝核菌菌丝细胞内活性氧的含量进行检测。配置方法和浓度同1.2.2。使用对活性氧敏感的荧光染料二氯荧光黄乙酸酯(DCFH-DA)对菌丝细胞进行染色处理
[14],在荧光显微镜下观察立枯丝核菌细胞内活性氧的变化并拍照记录。
2 结果与分析
2.1 MT、5-MT和5-MI对立枯丝核菌菌丝生长的抑制作用
MT、5-MT和5-MI均对立枯丝核菌菌丝生长具有一定的抑制作用,随着处理浓度的升高,MT、5-MT和5-MI的抑制作用均呈增强趋势,立枯丝核菌菌落直径逐渐减小(
图2)。与对照组相比,随着培养基中的药液浓度增加,立枯丝核菌的菌落直径显著减小。其中,通过方差分析可以发现低浓度的MT和5-MT对立枯丝核菌的抑制效果不是很显著,但是低浓度的5-MI能显著抑制立枯丝核菌的菌丝生长(
图2A)。
此外,高浓度的MT、5-MT和5-MI(
C7和
C8)均能抑制立枯丝核菌的生长(
图2B),与对照相比,随着培养基中MT、5-MT和5-MI浓度的增加,立枯丝核菌的菌落直径显著减小。总体来看,同一浓度下(
C7和
C8),相比于MT,5-MT和5-MI抑制立枯丝核菌生长的能力显著增强,且5-MI抑制其生长的效果最好。当浓度
C5时MT和5-MI开始抑制立枯丝核菌菌丝的生长。当浓度为
C8的MT和5-MT,还不能完全抑制立枯丝核菌的生长。但是,浓度为
C7和
C8的5-MI能完全抑制立枯丝核菌的生长。
根据MT、5-MT和5-MI对立枯丝核菌菌丝生长的抑制作用结果,C5-C8的MT对立枯丝核菌菌丝生长的抑制作用具有显著性差异,因此,选用上述浓度探究MT对立枯丝核菌菌丝生长形态的影响。同理,选用浓度为C7和C8的5-MT,选用浓度为C5和C6的5-MI探究对立枯丝核菌菌丝生长形态的影响。
2.2 MT、5-MT和5-MI对立枯丝核菌菌丝生长形态的影响
探究MT、5-MT和5-MI对立枯丝核菌菌丝生长形态的影响,在光学显微镜下观察了经处理后立枯丝核菌菌丝的生长形态。显微镜观察结果显示(
图3),一定浓度的MT(
C5-
C8)、5-MT(
C7和
C8)和5-MI(
C5和
C6)处理后,立枯丝核菌的菌丝形态发生变化。对照组立枯丝核菌菌丝光滑透明,均匀细长。相较于对照组,MT、5-MT和5-MI处理后,立枯丝核菌菌丝壁出现弯曲变形,出现菌丝缠绕,菌丝体末端出现异常,造成局部变形,甚至出现菌丝体破裂。
2.3 MT、5-MT和5-MI对于立枯丝核菌细胞变化
用细胞凋亡荧光Hoechst3322/PI双染试剂盒对用MT,5-MT和5-MI处理后的立枯丝核菌菌丝进行染色。Hoechst33342是一种能够穿透细胞膜,嵌入细胞核DNA的细胞核染料,能少许的进入正常细胞,使其染为浅蓝色;凋亡细胞通透性增强,染色体DNA结构发生改变,因而进入的Hoechst33342染料也增多,与DNA结合更加稳定有效,荧光强度加大,呈亮蓝色,即正常细胞呈浅蓝色,早期凋亡细胞呈亮蓝色
[15]。碘化丙啶(PI)只能穿过破损的细胞膜从而对细胞核进行染色。即PI对细胞膜完整的正常细胞和凋亡细胞拒染,即可对坏死细胞染色呈亮红色和少量进入晚期凋亡细胞染色呈浅红色。
Hoechst3334染色结果如
图4和
图5所示,对照组的立枯丝核菌菌丝呈现出强烈的蓝色荧光,且无红色荧光,表明其为正常细胞,未发生细胞凋亡。经一定浓度的MT(
C5-
C8)处理后(
图4),随着MT浓度的增加,蓝色荧光减弱,红色荧光增强,且红色荧光的强度随着处理浓度增加而增加,在
C7和
C8的浓度下,没有蓝色荧光,且红色荧光强度最强,说明在这两个浓度下,菌丝细胞死亡。
经
C7和
C8浓度的5-MT处理后(
图5),没有发现蓝色荧光,只有红色荧光,说明在这两个浓度下,菌丝细胞死亡。经
C5和
C6的5-MI处理后(
图5),随着5-MI浓度的增加,蓝色荧光逐渐减弱,红色荧光增强,且红色荧光的强度随着处理浓度增加而增加,在
C6浓度下,仅有微弱的蓝色荧光,且红色荧光强度最强,说明在这个浓度下,菌丝细胞大面积死亡。
2.4 MT、5-MT和5-MI处理造成立枯丝核菌氧化损伤
为证明MT、5-MT和5-MI对立枯丝核菌菌丝生长形态的影响是通过活性氧积累造成的,通过DCFH-DA染色处理后,发现立枯丝核菌菌丝内源性活性氧的产生即为DCFH-DA染色的活性氧所导致的红色荧光。如
图6所示,与对照组的立枯丝核菌菌丝相比,实验组在经过处理后的菌丝观察到红色荧光,且红色荧光强度随着处理浓度的增加而增加表明活性氧浓度越高,红色荧光强度在MT和5-MT在浓度为
C8时最强,5-MI在浓度为
C6时最强,说明立枯丝核菌菌丝中的活性氧在MT、5-MT和5-MI处理后随浓度持续增多。
3 讨论
MT对抗活性氧和氮类的一种极好的抗氧化剂。它在植物中研究最多方向是在各种外界胁迫压力下发挥保护剂的作用
[4]。MT除了起到抗氧化作用外,还诱导许多基因的表达,这些应激反应有利于植物应对各种不利情况,比如加强植物应对外界各种胁迫的能力。并且与各种生理作用有关,包括种子发芽、生长、生根、光合作用和对胁迫反应的保护,是一种能起到植物主调节剂的多调节分子
[16]。
3.1 MT、5-MT和5-MI可以抑制病原菌的生长
MT对植物病原菌具有一定的抗菌作用
[17]。例如,施用外源MT能有效降低由灰葡萄孢菌(
Botrytis cinerea)造成的苹果果实灰霉病的病斑面积和发病率
[18],外源注射MT可以有效提高小麦抗氧化酶POD和CTA的活性,从而使小麦的抗氧化能力显著提升
[19]。MT能使黄曲霉菌(
Aspergillus flavus)的孢子萌发和芽管伸长受到抑制,有效减缓了由黄曲霉菌造成的开心果果实腐烂,并降低了黄曲霉毒素的积累
[8]。此外,MT能够抑制霜疫霉菌(
Peronophythora litchii)在荔枝果实的扩展
[20]。对草莓叶片和匍匐茎喷施0.5 mmol·L
-1的MT,能有效抑制链格孢菌(
Alternaria alternate)的菌丝生长,延缓其发病进程
[21]。本次研究结果表明,不同浓度的MT和5-MT及5-MI对立枯丝核菌菌丝生长均具有一定的抑制效果。通过显微镜观察表明一定浓度的MT(
C5-
C8)、5-MT(
C7和
C8)和5-MI(
C5和
C6)可以显著抑制立枯丝核菌的生长,并造成菌丝体末端异常,局部变形,且最高浓度(4.0 mmol·L
-1)的5-MT及5-MI对立枯丝核菌菌丝生长的抑制作用均强于MT。因此,MT、5-MT和5-MI可以抑制立枯丝核菌的生长,且5-MT及5-MI的效果强于MT。
3.2 MT、5-MT和5-MI可以影响病原菌的细胞活性
MT的类似物5-MI不仅能抑制禾谷镰刀菌形成、生长和分生孢子萌发,也可诱导其分生孢子的畸形、活性氧积累,从而引起细胞死亡
[22]。外源的MT单独处理或乙基素(IUPAC名称:1-乙基磺酰磺胺)表现出相似的致病性,例如抑制菌丝生长、降低细胞活力和抑制烟草假单胞菌的毒力。进一步探索MT、5-MT和5-MI是否诱导菌丝细胞发生变化,对用一定浓度的MT、5-MT和5-MI处理后的立枯丝核菌菌丝进行荧光染色。实验结果发现一定浓度的MT、5-MT和5-MI可以诱导立枯丝核菌菌丝细胞死亡。所有这些结果表明,5-MT及5-MI是一种具有成本效益的MT同源物,对立枯丝核菌具有很强的抑制性,可诱导菌丝细胞凋亡和杀死细胞。
3.3 MT、5-MT和5-MI可以影响病原菌的活性氧
正常条件下,细胞体内的活性氧(Reactive Oxygen Species,ROS)(例如O
2-、·OH、
1O
2、H
2O
2等)处于动态平衡状态,但是,当遇到生物或非生物胁迫,或自身代谢通路受到损坏时,这种平衡将会被打破
[23-24]。当细胞中ROS浓度增加时,它们会对细胞膜、蛋白质、RNA和DNA分子造成氧化损伤,甚至会导致细胞在氧化应激过程中发生氧化破坏
[25]。ROS主要作为信号传导分子发挥作用,在植物适应逆境过程中调节不同的途径,但也是逆境代谢的毒性副产物
[26]。高浓度的ROS与细胞死亡有关
[27]。MT也作为抗氧化剂直接参与活性氧的清除
[28-29]。为了评估活性氧是否参与了MT及其化学结构类似物的抗菌作用,检测了立枯丝核菌细胞内的活性氧水平。荧光染料DCFH-DA可以通过细胞膜,其水解产物被细胞内活性氧氧化,常用来检测内源性活性氧的产生
[14]。试验结果表明,一定浓度的MT(
C5-
C8)、5-MT(
C7和
C8)和5-MI(
C5和
C6)处理立枯丝核菌,菌丝中活性氧高度积累,表明一定浓度的MT、5-MT及5-MI可以通过诱导立枯丝核菌菌丝体内活性氧的大量积累而抑制立枯丝核菌的生长,打破活性氧和抗氧化系统之间的平衡。
4 结论与展望
MT、5-MT及5-MI对立枯丝核菌具有抑制作用,且在同一浓度下,5-MT及5-MI在抑制立枯丝核菌生长、处理造成立枯丝核菌氧化损伤、诱导立枯丝核菌细胞产生凋亡及死亡方面较于MT效果更好。因此,可选择5-MT和5-MI作为MT的良好功能替代物。本研究表明MT类似物的抑制作用比MT更好,成本也更为便宜,可以作为MT在农业上的替代品具有更大的利用价值,为以后的MT研究分子机制提供研究思路,为农业上防治立枯丝核菌提供了理论基础。