甲状腺乳头状癌(papillary thyroid carcinoma,PTC)是甲状腺癌中最常见的类型,近年来其发病率呈上升趋势,2022年中国癌症中心发布的报告显示,中国甲状腺癌的发病率从1990年的1.4/10万例年上升至2016年的14.65/10万例,发病率增长了10倍,其中,PTC的发病率也呈现出类似的增长趋势
[1-2]。尽管大多数PTC预后较好,但仍有少部分会发生远处转移,预后较差
[3-4]。提示PTC恶性程度存在一定的差异,其具体原因尚不清楚。
近年来,随着分子生物学技术的发展,越来越多的分子标记物被用于PTC的诊断和治疗,其中,人骨髓内皮细胞标记物1(HBME-1)、细胞周期蛋白激酶(CDK)和基质金属蛋白酶13(MMP-13)在PTC中的表达及其与临床病理参数的关系成为研究的热点。HBME-1在PTC中的表达已经得到了广泛的关注。研究
[5-7]表明,PTC和微小PTC患者HBME-1蛋白均为表达阳性,而正常甲状腺组织中HBME-1呈阴性表达,因此,HBME-1可以作为PTC的一个特异性标记物。CDK4是一种细胞周期蛋白依赖性激酶,其在细胞周期调控中起着重要作用。近年来,研究
[8-10]发现CDK4在多种癌组织中的表达明显升高,且与肿瘤的大小、淋巴结转移和临床分期等临床病理参数密切相关。这表明CDK4可能参与了PTC的发生和发展过程,可能作为评估PTC预后和制定治疗方案的重要参考指标。MMP-13是基质金属蛋白酶重要的家族成员之一,与肿瘤的细胞侵袭浸入正常组织和转移具有相关性。研究
[11-13]表明,MMP-13在癌组织中的表达明显高于正常组织,且其表达水平与淋巴结转移、临床分期等临床病理参数密切相关。这表明MMP-13可能参与了PTC的侵袭和转移过程,是评估PTC预后和制定治疗方案的重要参考指标。HBME-1在PTC的诊断过程中已被证实具有重要参考价值,但缺乏特异性,一些良性甲状腺病变,如腺瘤中也有可能有弱阳性表达
[14-16]。MMP-13和CDK4在PTC的表达情况鲜有文献报道。本研究旨在探讨HBME-1、MMP-13和CDK4在PTC中的表达情况,并分析三者之间的关联,以期为PTC的恶性生物学行为的机制研究以及PTC恶性程度的判断提供参考。
1 资料与方法
1.1 临床样本
选择在2023年1月─2024年1月于山东省烟台市烟台山医院行甲状腺癌手术切除患者的手术病理标本80例及配对癌旁组织80例(癌旁组织取材处位于PTC组织边缘至上5 cm),以及结节性甲状腺瘤患者组织80例。纳入标准:⑴ 行甲状腺癌根治手术;⑵ 病理确诊PTC,符合AJCC第7版分期标准;⑶ 完整临床检查资料;⑷ 患者必须自愿参与研究,并签署知情同意书。排除标准:⑴ 其他恶性肿瘤;⑵ 严重感染及出血;⑶ 血液系统或传染病;⑷ 病毒性肝炎;⑸ 孕妇或妊娠患者;⑹ 精神障碍或沟通困难;⑺ 严重心肝肾功能障碍。80例PTC患者中,30例男性,50例女性;平均年龄为(58.35±4.56)岁;淋巴结转移42例,无淋巴结转移38例;肿瘤直径≤4 cm患者43例,肿瘤直径>4 cm的患者37例;临床分期Ⅰ期~Ⅱ期患者45例,Ⅲ期~Ⅳ期患者35例。结节性甲状腺患者中15例男性,65例女性,平均年龄(61.05±3.15)岁。本研究经医院伦理委员会批准豁免知情同意。
1.2 主要试剂
二甲苯购自国药集团(货号:10023418);二氨基联苯胺(DAB)显色试剂盒购自碧云天(货号:P0207);β-actin鼠单克隆抗体购自碧中杉金桥(货号:TA-09);HBME-1鼠单克隆抗体购自Abcam(货号:ab75037);CDK4兔单克隆抗购自Abcam(货号:ab193968);MMP-13兔单克隆抗体购自Abcam(货号:ab315267);通用性SPA试剂盒(小鼠/兔通用性二抗)购自中杉金桥(货号:SAP-9233);RIPA裂解液购自Abcam(货号:ab28806);封闭液、抗体稀释溶液套装购自碧云天(货号:P0025)。HBME-1、CDK4和MMP-13引物上海生物工程(上海)股份有限公司。
1.3 实验方法
1.3.1 qRT-PCR
提取PTC组织、其配对的癌旁组织和结节性甲状腺瘤组织的总RNA,将RNA转录为cDNA,反应体系为2×SYBR qRCR Master Mix 10 μL、GAPDH或所需的正向引物及反向引物各0.4 μL、ddH2O 7.2 μL。配制完成后对qRT-PCR反应循环进行预变性:设定温度为95 ℃,设定反应时间120 s;变性、退火:步骤1,设定温度为95 ℃,设定反应时间10 s;步骤2从设定温度为95 ℃,降至60 ℃,维持30 s;熔解曲线采集程序进行分析,确定引物的特异性。反应完成后,收集获得的数据结果进行分析、绘图。内参基因为GAPDH,2-ΔΔCt方法来计算RNA表达的相对水平。
1.3.2 Western blot
提取PTC组织、癌旁组织和结节性甲状腺瘤组织的总蛋白,进行电泳分离蛋白,将分离后的蛋白转移到膜上,再利用特异性抗体检测目标蛋白,加入一抗HBME-1(1∶1 000)、CDK4(1∶1 000)和MMP-13(1∶1 000)孵育,洗脱、二抗结合,洗脱、显色剂色,蛋白条带灰度值分析。
1.3.3 免疫组织化学染色
⑴ 切片处理与固定:将PTC组织及与其配对的癌旁组织,结节性甲状腺瘤组织放入10%的福尔马林固定液中进行固定,保持特定的形态和结构,之后放入石蜡中进行包埋处理,处理完毕后,用切片机切成薄片(厚度约为4 μm),进行烘干脱蜡至水化。⑵ 抗原修复:热修复法对组织内部的抗原进行修复。⑶ 内源性酶的阻断:载玻片上的组织加入3%的双氧水溶液对组织内源性酶进行阻断。⑷ 血清封闭:将山羊血清孵育在玻片上的组织约10 min,进行封闭组织上非特异性位点结合。⑸ 一抗孵育:在组织中分别加入抗体HBME-1(1∶1 000)、CDK4(1∶1 000)和MMP-13(1∶1 000)孵育组织,并于4 ℃冰箱孵育过夜。⑹ 二抗孵育:滴加稀释后辣根过氧化酶标记的山羊抗兔和山羊抗小鼠,孵育20 min。⑺ 显色剂显色:滴加适量的DAB辣根过氧化酶显色试剂盒中的显色液进行显色,染色约3 min甩掉显色液,苏木素对组织细胞核进行染色,自来水冲洗。⑻ 封闭:显色剂处理完毕后,放入梯度酒精中进行脱水处理,脱水处理完毕后,放入干燥箱中进行干燥后,滴加中性树脂,将封闭后的组织样本封在载玻片上。结果读取和判定
[17]:显微镜对每个切片上组织进行拍照,选择每个切片至少5个100倍的视野进行统计阳性细胞总数,计算阳性细胞总数占视野中总细胞数的比例(单个视野中阳性细胞比例=该视野中阳性细胞数/该视野中总细胞数×100%),以5个视野的阳性细胞比比例的平均值作为阳性表达率的数值(阳性表达率=5个视野阳性细胞比例/5)。
1.4 统计学处理
采用SPSS 22.0和GraphPad Prism 8.0软件进行数据分析。符合正态分布的计量资料采用均数±标准差()表示,比较采用单因素方差分析;计数资料采用例数(百分比)[n(%)]表示,比较χ2检验;三种蛋白的表达的关联性采用Spearman相关性分析。P<0.05为差异有统计学意义。
2 结 果
2.1 qRT-PCR与Western blot结果
qRT-PCR结果显示,PTC组织的HBME-1、CDK4及MMP-13的mRNA表达水平明显高于癌旁组织和甲状腺瘤组织(均
P<0.05),但三者在癌旁组织与甲状腺瘤组织间的差异均无统计学意义(均
P>0.05)(
图1A);Western blot结果显示,PTC组织的HBME-1、CDK4及MMP-13的蛋白表达水平明显高于癌旁组织和甲状腺瘤组织(均
P<0.05),但三者在癌旁组织与甲状腺瘤组织间的差异均无统计学意义(均
P>0.05)(
图1B)。
2.2 免疫组化结果
免疫组化结果显示,HBME-1、CDK4和MMP-13在PTC组织中阳性表达率分别为87.50%、75.00%和91.25%,均明显高于癌旁组织和甲状腺瘤组织(均
P<0.05)(
图2)(
表1)。
2.3 HBME-1、CDK4和MMP-13阳性表达率与患者临床病理因素关系
统计80例PTC患者组织中HBME-1、CDK4及MMP-13的阳性表达率与患者临床病理因素的关系,结果显示,HBME-1、CDK4和MMP-13表达阳性率与年龄、性别临床病理参数无明显关系(均
P>0.05),与是否淋巴转移、肿瘤直径和肿瘤病理分期明显有关(均
P<0.05)(
表2)。
2.4 HBME-1、CDK4和MMP-13在PTC组织中表达的相关性
Spearman等级相关分析结果显示,PTC组织中HBME-1与CDK4的阳性表达率(r=0.861,P<0.001)、HBME-1与MMP-13的阳性表达率(r=0.813,P<0.001)及CDK4与MMP-13的阳性表达率(r=0.735,P<0.001)均呈明显正相关。
3 讨 论
PTC是甲状腺癌中最常见的一种类型,通常表现为甲状腺内的乳头状结构,在光学显微镜下,PTC的组织结构呈现外形结构、细胞核特征、细胞形态等异型性
[18-20]。研究
[21-22]发现,HBME-1在PTC组织中呈现高表达,而在未分化癌和良性病变中则表现为阴性或部分表达。另一项研究
[23]比较了PTC组织与癌旁组织、复发与未复发患者的HBME-1表达水平,并分析了其与患者病理特征的关系;结果显示,癌组织中HBME-1的蛋白与mRNA表达水平均高于癌旁组织,并且与患者的肿瘤直径、颈部淋巴结转移、临床分期有相关性。这一发现使得HBME-1与PTC恶性生物学行为密切相关。关于CDK4与PTC之间的相关性,已有一些文献进行了报道和研究。研究
[24-26]探讨了CDK4基因多态性与PTC风险之间的关系,通过对CDK4基因上的2个单核苷酸多态性(SNP)位点进行分析,发现其中1个位点与PTC的风险增加有关。这一发现为揭示PTC的发病机制提供了新的线索。此外,还有研究关注了CDK4抑制剂在PTC治疗中的潜在应用。通过体外实验,发现某些CDK4抑制剂能够抑制PTC细胞的增殖和侵袭能力,并诱导细胞凋亡
[27-28]。这表明CDK4抑制剂可能成为治疗PTC的新药物候选。MMP-13主要参与细胞外基质的降解和重塑,在多种癌症中,包括甲状腺癌在内,MMP家族成员的表达常常发生异常,与肿瘤的发生、发展、侵袭和转移等过程密切相关
[29]。因此,可以推测MMP-13可能在PTC中也发挥着类似的作用。一些研究表明,MMP-13与甲状腺癌的某些生物学特征有关。有研究
[30]发现MMP-13在甲状腺癌组织中的表达水平高于正常甲状腺组织,并且与肿瘤的侵袭性和淋巴结转移等特征呈正相关。这提示MMP-13可能参与了甲状腺癌的侵袭和转移过程。
本研究结果发现HBME-1、CDK4、MMP-13在PTC组织中表达显著高于癌旁组织和结节性甲状腺瘤组织,并且与肿瘤大小、临床分期呈正相关,与文献
[31-32]报道相一致。此外,本研究分析了三者之间两两相关性,研究显示两两之间具有正相关性。提示HBME-1、CDK4和MMP-13之间的相互作用可能在PTC的恶性进展中起了重要作用。
综上所述,HBME-1、CDK4和MMP-13在PTC组织中高表达,与淋巴结转移,肿瘤大小和分期密切相关,该结果对PTC的恶性生物学行为差异的机制研究提供了依据,并为PTC恶性程度的判断提供了参考。研究不足之处在于仅在组织病理学进行探讨研究,未能在细胞水平及实验动物上进一步进行研究,有待于展开体外细胞水平进行研究。