胃癌是我国乃至全球最常见的恶性肿瘤之一,但大部分患者对现有治疗手段(如化疗、放疗、靶向治疗、免疫治疗)不敏感,复发转移率高、预后差,导致病死率居高不下
[1-3]。胃癌的防治迫切需要寻找新的靶点,研发新的药物。近年来,铁死亡(ferroptosis)作为一种新型细胞死亡方式,因其在肿瘤治疗中的潜力而受到国内外广泛关注
[4-7]。末端核苷酸转移酶5B(terminal nucleotidyltransferase 5B,TENT5B),又称为序列相似家族46成员B(FAM46B),是一种重要的poly(A)聚合酶
[8-9],在多种肿瘤中被发现表达下调,且与肿瘤的发生发展密切相关
[10-13]。然而,TENT5B在胃癌中的作用及其对铁死亡的影响尚不清楚。本研究旨在探究TENT5B对胃癌细胞增殖、迁移和铁死亡的影响及其作用机制,以期为胃癌的精准治疗提供新策略和新方法。
1 材料与方法
1.1 组织标本
收集2024年6月—2024年12月在中南大学湘雅三医院胃肠外科接受手术治疗的25例胃癌患者的癌组织和癌旁正常组织(距癌灶边缘10 cm以上的正常胃黏膜组织)标本,利用液氮速冻后冻存于-80 ℃冰箱。所有患者术前均未接受过化疗、靶向治疗、免疫治疗和放疗等抗肿瘤治疗。本研究通过了中南大学湘雅三医院伦理委员会审批(批号:24308)。
1.2 细胞系和细胞培养
人正常胃上皮细胞株(GES-1)和胃癌细胞株(AGS和HGC27)均购自美国典型菌种保藏中心(ATCC),并在含10%胎牛血清(美国Sigma-Aldrich公司)、100 IU/mL青霉素和100 mg/mL链霉素的RPMI 1640培养基(美国Gibco公司)中培养。上述细胞均置于37 ℃、含5% CO2的细胞培养箱中培养,定期换液和传代。所有细胞均经过短串联重复序列(STR)鉴定,且没有支原体污染。
1.3 方法
1.3.1 慢病毒转染
TENT5B的过表达慢病毒和阴性对照慢病毒均由上海吉凯基因公司构建。慢病毒细胞转染和药物筛选过程参照吉凯公司提供的操作步骤进行,简述如下:选取处于对数生长期的细胞接种于6孔板中,根据细胞种类配制病毒感染液,加入各孔;病毒感染细胞12~24 h后,予以换液;细胞培养48~72 h 后,予以嘌呤霉素(浓度为5~10 µg/mL)进行药物筛选,存活的细胞即为稳定转染细胞株;细胞通过qRT-PCR和Western blot检测验证过表达效率后,用于细胞功能实验和分子机制研究。
1.3.2 qRT-PCR检测
使用RNAfast200总RNA极速抽提试剂盒(上海飞捷生物技术有限公司)提取组织和细胞中的总RNA,再利用NanoDrop™ OneC超微量分光光度计(美国Thermo Scientific公司)测定RNA样品的浓度和纯度。按照Evo M-MLV反转录预混型试剂盒(含去除gDNA试剂)Ver.2(湖南艾科瑞生物公司)的操作步骤将RNA去除gDNA并逆转录为cDNA后,再按照SYBR Green Pro Taq HS预混型qPCR试剂盒(湖南艾科瑞生物公司)的操作步骤进行qRT-PCR扩增。以GAPDH为内参,采用2-ΔΔCt法计算倍数变化值(FC)。引物序列为:TENT5B正向:CCT GCC TAC TAG ACT TCC TGC,反向:CTT GCC GCT CTT GTT GGA CA;GAPDH正向:AGC CAC ATC GCT CAG ACA C,反向:GCC CAA TAC GAC CAA ATC C。
1.3.3 细胞增殖检测(CCK-8)
将不同处理的胃癌细胞分别接种至96孔板(1 000~3 000个/孔)中培养,每组设置5个复孔。分别于培养0、24、48和72 h,向每孔加入100 μL浓度为10%的CCK-8检测试剂(武汉亚科因生物技术有限公司),于37 ℃培养箱中孵育1 h后,使用多功能酶标仪(美国Bio-Tek Instruments公司)检测450 nm波长处的光密度(OD)值。
1.3.4 平板克隆形成实验
将不同处理的胃癌细胞分别接种至6孔板(200~500个/孔)中培养,每组设置3个复孔。培养7~10 d后弃去培养基,用PBS清洗2遍,然后用4%多聚甲醛固定30 min,再用0.25%结晶紫染色15 min,清洗干净后室温下自然干燥。拍照并计数各孔中的细胞克隆球数目。
1.3.5 划痕愈合实验
将不同处理的胃癌细胞接种至6孔板(5~8×105个/孔)中,培养过夜。待其融合密度达到90%~100%时,用移液器枪头在细胞表面划痕,保证每条划痕粗细均匀一致。用PBS清洗3次,去除脱落的细胞,加入不含血清的培养基继续培养。分别于0 h和24 h进行拍照,观察划痕愈合的情况。细胞迁移率(也称为伤口愈合率),通过以下公式计算:细胞迁移率(%)=[(0 h细胞间距-24 h细胞间距)/ 0 h细胞间距]×100%。
1.3.6 Transwell迁移实验
将不同处理的胃癌细胞接种至Transwell小室上室(3~5×105个/孔),培养基体积为200 μL,不含血清;下室加入600 μL含有20%胎牛血清的培养基。37 ℃孵育24 h后取出小室,先用4%多聚甲醛固定30 min,再用0.25%结晶紫染色15 min,最后用棉签轻轻拭去小室内表面细胞。在倒置显微镜(日本Olymbus公司)下观察并计算5个随机视野中的迁移细胞数。
1.3.7 细胞活力检测
采用CellTiter-Glo® Luminescent Cell Viability Assay试剂盒(美国Promega公司),通过对三磷酸腺苷进行定量来检测细胞活力。将不同处理的胃癌细胞分别接种至96孔板(1~2×104个/孔)中培养,每组设置3个复孔。细胞经处理后,向每孔加入100 μL Cell Viability检测试剂;室温避光孵育10 min后,使用多功能酶标仪(美国Bio-Tek Instruments公司)检测生物发光信号强度。细胞活力的计算公式为:细胞活力(%)=(细胞处理组-空白背景组)/(细胞对照组-空白背景组)×100%。
1.3.8 脂质活性氧化物(ROS)和丙二醛(MDA)检测
参照文献
[14],采用BODIPY 581/591 C11探针(美国Thermo Scientific公司)检测胃癌细胞中的脂质ROS水平;采用酶联免疫吸附测定(ELISA)试剂盒(上海碧云天生物技术有限公司)检测胃癌细胞中的MDA(脂质过氧化的终产物)浓度。
1.3.9 mRNA稳定性检测
将不同处理的胃癌细胞接种至6孔板(3~5×105个/孔)中,培养过夜。待其融合密度达到70%左右时,用5 μg/mL的放线菌素D(美国Sigma-Aldrich公司)处理细胞以抑制RNA的生成。在指定的时间点(0、1、2、4、8 h)分别提取细胞总RNA,采用qRT-PCR检测PRKAA2 mRNA的相对剩余量(%),并计算其半衰期。
1.3.10 Western blot实验
使用全蛋白提取试剂盒(江苏凯基KeyGEN生物技术股份有限公司)从组织或细胞中提取全蛋白。将等量的蛋白通过10%的SDS-PAGE分离,然后转移到PVDF膜上(美国Millipore公司)。用8%脱脂牛奶室温下封闭PVDF膜1 h后,先用特异性一抗在4 ℃孵育过夜,然后用相应的二抗在室温孵育1 h。最后,使用ChemiDoc Touch化学发光成像仪(美国Bio-Rad公司)进行膜显影,并使用Image Lab软件进行图片编辑。本研究使用的抗体均购自武汉三鹰(Proteintech)生物技术有限公司:抗TENT5B抗体(货号:23149-1-AP;1∶1 000稀释)、抗PRKAA2抗体(货号:18167-1-AP;1∶1 000稀释)和抗GAPDH抗体(货号:60004-1-Ig;1∶6 000稀释)。
1.3.11 动物实验
6只雌性NOD-SCID小鼠(5~6周龄、体质量18~20 g)购自湖南斯莱克景达实验动物有限公司,并饲养于中南大学实验动物学部。小鼠置于独立通气笼盒内,SPF级环境,自由摄食高压灭菌饲料和饮水。小鼠适应性喂养1周后,随机分成两组(对照组和过表达组),每组3只。对照组于每只小鼠腋部皮下注射5×106个对照胃癌细胞(重悬于100 μL PBS中),而过表达组注射等量过表达TENT5B的胃癌细胞。每周观察并记录小鼠饮食活动状态、体质量和肿瘤大小,肿瘤体积按公式0.5×长×宽2计算。所有动物实验方案均获中南大学实验动物部伦理委员会批准(批号:XMSB-2024-0220),并遵守国家卫生研究院制定的《实验动物福利和使用指南》。
1.4 统计学处理
使用GraphPad Prism 10.0软件进行数据分析和绘图。本研究中的所有实验(除外动物实验)均进行了至少3次生物学重复,并展示了其中1次代表性实验数据。计量资料采用均数±标准差()表示;癌组织与癌旁组织中TENT5B表达水平的比较采用配对样本t检验,非配对设计两组间均数比较则采用独立样本t检验;多组间比较采用单因素方差分析,若组间差异有统计学意义,则采用Dunnett's检验进行多重比较;重复测量数据采用重复测量方差分析。以双侧P<0.05为差异有统计学意义。
2 结 果
2.1 TENT5B在胃癌中的表达
TCGA胃癌数据集和GEO胃癌数据集(GSE66229)差异表达基因分析发现,TENT5B在胃癌中的表达明显下调(
图1A-B)。通过qRT-PCR和Western blot检测进一步发现,与癌旁正常组织相比,TENT5B在胃癌组织中的mRNA表达水平和蛋白表达水平均显著降低(
图1C-D)。qRT-PCR和Western blot结果还显示:TENT5B在2株胃癌细胞系中的mRNA表达水平和蛋白表达水平均低于正常胃上皮细胞系(
图1E-F)。这些结果提示:TENT5B在胃癌中异常低表达。
2.2 过表达TENT5B对胃癌细胞的增殖和迁移的影响
qRT-PCR和Western blot检测结果显示:转染TENT5B过表达慢病毒组(过表达组)AGS细胞的TENT5B mRNA和蛋白表达水平均显著高于空载对照组(对照组)(
图2A-B),提示在AGS细胞中过表达TENT5B成功。CCK-8实验和平板克隆形成实验显示:与对照组细胞相比,过表达组AGS细胞的增殖能力明显减弱(
图2C-E)。划痕愈合实验和Transwell迁移实验还显示:过表达TENT5B后,AGS细胞的迁移能力明显减弱(
图2F-I)。这些结果提示:过表达TENT5B可抑制胃癌细胞的增殖和迁移。
2.3 过表达TENT5B对胃癌细胞铁死亡的影响
细胞活力检测结果显示:过表达TENT5B可明显增加铁死亡诱导剂Erastin诱导的AGS细胞死亡,而且该效应可被铁死亡抑制剂(ferrostatin-1,Fer-1)阻断(
图3A)。脂质ROS检测结果显示:过表达TENT5B可升高AGS细胞内的脂质ROS水平,并显著增加Erastin诱导的脂质ROS,而且该效应可被Fer-1阻断(
图3B)。MDA检测结果也显示:过表达TENT5B可升高AGS细胞内的MDA水平,并显著增加Erastin诱导的MDA产生,而且该效应可被Fer-1阻断(
图3C)。这些结果提示:过表达TENT5B可促进胃癌细胞的铁死亡。
2.4 过表达TENT5B对PRKAA2 mRNA稳定性及PRKAA2表达的影响
将TCGA胃癌数据集中与TENT5B表达呈明显正相关(
R>0.4,
P<0.05)的基因与铁死亡数据库(FerrDb V2)中促进铁死亡的基因取交集后,得到6个重叠基因(
图4A)。其中,PRKAA2与TENT5B的表达相关性较高(
R=0.46,
P<2.2e-16)(
图4B),而且PRKAA2在胃癌中的表达也明显下调(
图4C)。qRT-PCR和Western blot检测结果显示,在AGS细胞中过表达TENT5B后,PRKAA2的mRNA和蛋白表达水平均明显上调(
图4D-E)。通过mRNA稳定性检测进一步发现,过表达TENT5B后PRKAA2 mRNA的稳定性增加,半衰期明显延长(
图4F)。这些结果提示:过表达TENT5B可能通过增加PRKAA2 mRNA稳定性促进PRKAA2的翻译表达。
2.5 功能挽救实验结果
qRT-PCR和Western blot检测结果显示:在过表达TENT5B的AGS细胞中转染si-PRKAA2,可以逆转TENT5B过表达引起的PRKAA2表达上调(
图5A-B)。CCK-8实验和Transwell实验显示,敲减PRKAA2可以逆转TENT5B过表达对AGS细胞增殖和迁移的抑制作用(
图5C-E)。细胞活力检测和MDA检测结果显示,敲减PRKAA2可以逆转TENT5B过表达对AGS细胞铁死亡的促进作用(
图5F-G)。这些结果提示:TENT5B可能通过上调PRKAA2表达,促进胃癌细胞铁死亡,并抑制胃癌进展。
2.6 过表达TENT5B胃癌细胞体内生长的影响
小鼠皮下成瘤实验显示:与对照组比较,过表达组细胞成瘤速率明显减慢、成瘤重量明显减轻(
图6A-C);而且,过表达组瘤组织中TENT5B和PRKAA2的mRNA表达水平均明显高于对照组(
图6D)。上述结果提示:过表达TENT5B可能通过上调PRKAA2表达在体内抑制胃癌的生长。
3 讨 论
3.1 TENT5B可能是调控胃癌发生发展的抑癌基因
近年来有多项研究报道,非典型poly(A)聚合酶TENT5B在前列腺癌
[10-11]、非小细胞肺癌
[12]、乳腺癌
[13] 等多种实体瘤中呈低表达,并与肿瘤发生发展和治疗抵抗密切相关
[15]。然而,TENT5B在胃癌中的表达特征和生物学功能研究尚属空白。本研究首次发现TENT5B在胃癌组织和胃癌细胞中均显著下调;而且,过表达TENT5B可显著抑制胃癌细胞的增殖和迁移,提示TENT5B可能是抑制胃癌发生发展的重要因子。这一发现与Liang等
[10-11]在前列腺癌和Sang等
[12]在非小细胞肺癌中的研究报道互为印证。其中,Liang等
[10]发现过表达TENT5B可促进β-catenin蛋白的泛素化降解,进而阻碍前列腺癌细胞增殖和细胞周期进程。他们还发现,TENT5B通过阻断MYC-LDHA轴促进前列腺癌细胞凋亡,并抑制糖酵解
[11]。此外,Sang等
[12]的研究显示:过表达TENT5B可通过阻断β-catenin/MMP7信号轴,抑制非小细胞肺癌的增殖、迁移和侵袭。本研究的发现结合这些研究结果提示,TENT5B的抑癌作用可能具有跨瘤种共性。
3.2 TENT5B-PRKAA2轴可能是调控胃癌细胞铁死亡的关键通路
近年来,铁死亡在胃癌发生发展中的作用受到越来越多的关注。一些调控胃癌铁死亡的关键因子(如ACTL6A
[16]、SOX13
[17]、HTR2B
[18])也已被鉴定,有望成为胃癌治疗的新兴靶点。但目前报道的铁死亡调控基因绝大多数是抑制铁死亡的,而对于铁死亡促进基因的作用和机制仍知之甚少。本研究发现过表达TENT5B可促进胃癌细胞的铁死亡,并且显著增加胃癌细胞对铁死亡诱导剂(Erastin)的敏感度,提示TENT5B可能是促进胃癌细胞铁死亡的关键基因。更重要的是,本研究发现TENT5B可能通过延长PRKAA2 mRNA的poly(A)尾,增加其稳定性,进而增加PRKAA2的翻译表达;而且,敲减PRKAA2可以完全逆转TENT5B过表达的抑癌作用,提示PRKAA2是介导TENT5B功能发挥的关键因子。
PRKAA2(又称为AMPKα2)作为AMPK合酶的核心组分,在调节细胞能量代谢中起关键作用
[19]。PRKAA2(AMPK)的表达下调或活性降低与多种肿瘤的发生、生长、转移、耐药和免疫密切相关
[20-23]。最新研究
[24-27]显示,PRKAA2(AMPK)还参与肿瘤细胞铁死亡的调控;而且,PRKAA2通过磷酸化不同的底物,在不同的肿瘤细胞中或不同的应激条件下发挥不同的生物学效应。例如,Song等
[24]发现PRKAA2介导的BECN1磷酸化可通过直接结合SLC7A11,抑制胱氨酸/谷氨酸反向转运蛋白系统(简称system Xc
-)的活性,促进肿瘤细胞铁死亡。相反,Lee等
[26]发现能量应激介导的PRKAA2激活可通过促进乙酰辅酶A羧化酶(ACC)磷酸化,阻断多聚不饱和脂肪酸(PUFA)的生物合成,抑制肿瘤细胞铁死亡。
目前,PRKAA2(AMPK)已被证实参与了胰腺癌
[27]、结直肠癌
[28-29]、卵巢癌
[30]、肺癌
[31-32]、肝癌
[33]、乳腺癌
[34]等肿瘤的铁死亡调控,但未见PRKAA2调控胃癌铁死亡的报道,而本研究填补了这一空白。与Song等
[24]发现的“AMPK-BECN1-SLC7A11”通路相呼应,笔者推测TENT5B可能通过稳定PRKAA2 mRNA,持续激活AMPK-BECN1轴,进而抑制system Xc⁻活性,加速脂质过氧化,构成胃癌铁死亡的新调控范式。不同于Lee等
[26]报道的能量应激条件下PRKAA2(AMPK)抑制铁死亡,本研究在胃癌中观察到PRKAA2促进铁死亡。机制差异可能源于:(1) 胃癌细胞高基线ROS负荷;(2) AMPK下游底物选择(BECN1或ACC)受微环境调控。此外,本研究首次将TENT5B介导的mRNA稳定性调控(多聚腺苷酸化)引入铁死亡领域,为理解AMPK表达的转录后调控提供了新视角。
3.3 TENT5B可作为胃癌mRNA治疗的潜在分子
本研究还通过动物实验初步验证了TENT5B的体内抑癌作用,有望为胃癌的铁死亡靶向治疗提供潜在分子。随着mRNA技术的飞速发展,mRNA疫苗和mRNA药物已成为抗肿瘤药物研发的新策略
[35-38]。相比传统的药物研发策略(如小分子化合物、单克隆抗体),mRNA药物具有靶标范围广、免疫原性低、生产快速、存储方便、价格低廉等优势,故已成为全球最具创新和潜力的疾病防治模式之一
[39-40]。因此,通过mRNA技术(包括基于脂质纳米颗粒的体内递送系统)制备TENT5B mRNA药物,并将其导入体内发挥抗癌作用,有望成为胃癌mRNA治疗的新方法。
综上所述,本研究首次揭示了TENT5B促进胃癌细胞铁死亡和抑制胃癌进展的生物学功能,初步阐明了TENT5B通过增强PRKAA2 mRNA稳定性上调PRKAA2表达的分子机制,为胃癌的精准防治提供了新策略和新方法。但本研究仍存在以下缺陷或不足:(1) TENT5B在胃癌中下调的分子机制尚不清楚;(2) TENT5B如何选择性识别并延长PRKAA2 mRNA poly(A)尾的直接证据不足。在后续研究中将对上述问题进行深入探讨,以进一步丰富TENT5B调控胃癌的分子生物学理论。未来,筛选在肿瘤中特异性低表达的抑癌基因,阐明其促进肿瘤细胞铁死亡的分子机制,并联合mRNA技术,研制高效低毒的抗肿瘤mRNA药物,将成为肿瘤基础研究和临床转化研究的新思路、新方向
[41]。基于mRNA技术和铁死亡靶向的mRNA疗法,也将开启肿瘤预防和治疗的新时代。
国家自然科学基金资助项目(82303255)
国家自然科学基金资助项目(82400213)