水稻是我国最重要的主粮之一,年总产量超过2亿t,占粮食总产量的40%以上
[1]。随着社会经济发展与稻米消费升级,广东丝苗米以其粒型细长(长宽比≥3.5)、外观晶莹、口感弹爽等特点,越来越受到市场的偏爱
[2-3]。已有研究表明,水稻籽粒的长宽比与垩白度、垩白粒率、蛋白质等品质性状均存在负相关关系,因此,选育长粒型水稻品种可在降低稻米垩白度和直链淀粉含量的同时,显著提升稻米透明度和食味品质
[4],目前生产上推广的是‘象牙香占’‘玉针香’‘巴斯马蒂’‘茉莉香’等优质品种,均属于典型细长粒型品种,然而此类品种大多存在抗倒伏能力偏弱的问题
[5]。培育兼具细长粒型、高产稳产与强抗倒性的水稻品种,已然成为水稻育种领域的研究热点
[3]。因此,阐明细长粒型水稻抗倒伏性状的生理和分子调控机制,对于培育兼具细长粒型、高产稳产和抗倒伏性强的水稻新品种具有重要的意义。
已有研究表明,基部节间较短、茎粗较大、茎壁较厚、植株矮化均有利于提高水稻的抗倒伏能力
[6]。在水稻幼穗花序发育的前期,幼穗(长度0.05~0.90 cm)基部倒一、倒二节间开始伸长,并伴随着茎尖分生组织分化
[7-8],表明水稻幼穗(籽粒)与基部节间性状之间存在时空同步发育。已知调控水稻粒型的主要基因有
GS2、GL7/
GW7、GW8等
[9-10]。
GS2通过编码转录因子OsGRF4,并由miR396调控,正向调控水稻的粒宽和粒重
[11]。
GL7/
GW7通过编码TONNEAU1 Recruiting Motif (TRM)蛋白正调控水稻粒长
[12]。
GW8通过编码
OsSPL16正调控水稻粒宽,而
OsSPL16/GW8可直接与
GW7启动子结合并抑制其表达
[13]。部分粒型基因可通过影响细胞壁组分或激素信号转导途径削弱茎秆的强度。例如
OsRA2基因可负调控长宽比和茎粗
[14]。可见,
OsRA2在调控粒型性状形成过程中也影响节间发育。目前关于水稻籽粒长宽比与节间抗倒伏性的关联,以及共发育分子调控通路的研究尚未见报道。本研究以典型细长粒和非细长粒籼稻为试验材料,通过测定单茎抗推力、倒伏指数等性状,分析不同粒型水稻的抗倒相关性状特征及其相互关系,并在幼穗与基部节间共发育期,对幼穗和基部节间进行转录组测序,旨在明确水稻籽粒长宽比与节间抗倒伏性的关联及二者协同发育的分子调控通路,以期为细长粒与抗倒伏性状协同改良提供参考。
1 材料与方法
1.1 试验材料
2024年7月24日—11月9日,试验分别在广东省农业科学院白云试验基地(23°397' N,113°437' E,海拔49 m)和广东省农业科学院水稻研究所试验基地(23°163' N,113°378' E,海拔28 m)开展,供试水稻材料分为2组,其中白云试验基地选用22个籽粒长宽比和抗倒伏性状存在较大差异的水稻材料(
表1),广东省农业科学院水稻研究所试验基地选用8个广泛变异的水稻材料(
表2)。
1.2 试验设计
2个基地的试验均采用随机区组试验设计,设3次重复,均采用大田湿润育秧,双本移栽,株行距为20 cm×20 cm;其中白云试验基地播种和插秧日期分别为7月14日和8月2日,每小区面积21.6 m²,水稻研究所试验基地播种和插秧日期分别为7月24日和8月8日,每小区面积20 m²。2个基地均采用统一大田管理,施氮(N)量为180 kg/hm²,按照基肥∶分蘖肥∶穗肥∶粒肥=5∶2∶2∶1的质量比施用;磷肥(P₂O₅)和钾肥(K₂O)用量分别为45和120 kg/hm²,均作基肥一次性施入,其他田间管理措施均参照常规大田生产标准执行。
1.3 测定指标
1.3.1 单株抗推力和单茎抗推力
单株抗推力(Anti-thrust of whole plant,AWP)和单茎抗推力(Anti-thrust of single stem,ASS)的测量参考Li等
[15]的方法,在水稻植株离地面20 cm处,用浙江托普仪器有限公司的YYD-1型茎秆强度测量仪测定水稻单株抗推力,并统计单株分蘖数,最大推压阻力除以单株分蘖数为单茎抗推力。
1.3.2 籽粒粒型
水稻成熟期每小区收获8株,进行人工脱粒,将所有饱满实粒混匀后使用万深稻米品质分析仪(SC-E大米外观品质检测仪)测定粒长和粒宽。
节间判定标准:为便于描述水稻倒伏性状,本试验将水稻地上部距离地面最近的伸长节间定义为基部第一节间,其余节间也依照此方法依次向上进行定义
[16]。
1.3.3 抗倒伏指标测量方法
倒伏指数测量方法参照李国辉等
[6]的方法,在水稻抽穗后20 d,每小区取5穴,每穴取代表性单茎3条,测定抗倒伏指标。
剪断茎秆节点处,将茎秆分成若干节间。基部第1伸长节间称为第1节间,用I1表示;依次向上,分别为第2节间(I2)和第3节间(I3)。测量茎秆各节间长度,称量每个节间鲜重(带鞘)。使用浙江托普云农科技股份有限公司YYD-1茎秆强度测量仪测定节间抗折力。固定基部节间两支点并水平放置,在节间中点施力,能使其折断力的大小即为该节间抗折力。
倒伏指数(Lodging index,LI)=弯曲力矩/抗折力×100,弯曲力矩=节间基部至穗顶长度×该节间基部至穗顶鲜重。
1.3.4 全转录组测序及取样
水稻拔节至幼穗分化二期,每周调查各品种的具体发育时期,取1株材料拨开茎鞘观察幼穗状态,于幼穗分化二期取幼穗及基部第二节间,每个材料取3次生物学重复。将‘象牙香占’(XYXZ)、‘玉针香’(YZX)、‘黄广华占2号’(HGHZ)、‘珍汕97B’(ZS97B)4个材料的幼穗及基部节间置于液氮中冷冻保存,并送至上海派森诺生物科技股份有限公司进行全转录组测序。
1.4 RNA提取及cDNA文库构建数据分析
总RNA提取、cDNA文库构建及高通量测序均委托上海派森诺生物科技股份有限公司完成。取≥1 g 总RNA,经Oligo (dT)磁珠富集mRNA并打断,合成cDNA后经纯化、末端修复、加“A”及测序接头连接,筛选400~500 bp片段,并PCR纯化获得文库;采用安捷伦科技(中国)有限公司(Agilent Technologies, Inc.)Agilent 2100 Bioanalyzer和Pico green分别检测文库质量与浓度,多样品文库均一化混合后,在因美纳(中国)科学器材有限公司(Illumina, Inc.)Illumina NovaSeq 6000平台进行PE150测序。
1.5 数据质量控制
样品经过上机测序,得到图像文件,生成FASTQ的原始数据,即下机数据。对下机数据进行过滤。数据过滤的标准主要包括:1)采用fastp(0.22.0)去除3’端带接头的序列;2)去除平均质量分数低于Q20的Reads。后续所有分析均是基于Clean data进行的高质量分析。
1.6 差异表达基因筛选及聚类分析
使用DESeq(v1.38.3)软件进行2个比较组合之间的差异表达分析。采用DESeq对基因表达进行差异分析,筛选差异表达基因条件为:表达差异倍数|log2 FoldChange|>1.0,显著性P<0.05。
1.7 实时定量PCR(qPCR)反应
通过qPCR对6个具有不同表达谱的基因进行RNA-Seq结果验证。使用总RNA样品进行试验,并使用北京全式金生物技术有限公司Transgene EasyScript一步法去除gDNA及第一链cDNA合成。使用罗氏诊断产品(上海)有限公司Roche light cycler 480II荧光定量PCR仪和SYBR Premix Ex Taq RT-PCR试剂(宝生物工程(大连)有限公司)进行,并使用LightCycler480软件进行分析。以水稻泛素结合酶基因(LOC_Os02g42314)作为qPCR的内参基因。
1.8 数据处理及分析
采用STATISTIX 9.0(StatSoft Inc. Statistica. Tulsa OK. 2009)软件进行数据分析,选取单因子方差分析(One-way ANOVA,LSD)模型进行差异显著性检验,利用SigmaPlot 12.5、Adobe Photoshop 2021和Adobeillustrator 2026软件作图。
根据T/GDSMM 002—2019《广东丝苗米品种标准》
[17],按籽粒长宽比将‘象牙香占’、‘玉针香’划分为细长粒型水稻,将‘黄广华占2号’、‘珍汕97B’划分为非细长粒型水稻。
将转录组分成4组进行分析。
组A:4份不同粒型水稻品种基部节间与幼穗中差异表达基因的交集集合;
组B:将细长粒型和非细长粒型水稻品种幼穗的差异表达基因的交集集合;
组C:将细长粒型和非细长粒型水稻品种基部节间的差异表达基因的交集集合;
组D:组B和组C中的相同基因。
2 结果与分析
2.1 不同粒型籼稻农艺性状分析
2.1.1 籽粒长宽比与单株抗推力、单茎抗推力的相关分析
水稻籽粒长宽比最大和最小的水稻品种分别为‘南晶香占’和‘珍汕97B’,二者长宽比相差2.2。单株、单茎抗推力最大的水稻品种均为‘甬优1540’,最小的均为‘美香占2号’,2个指标分别相差5.47和0.74 N(
表1)。籽粒长宽比分别与单株抗推力、单茎抗推力分别呈极显著、显著正相关(
图1),表明粒型越细长越容易发生倒伏。而单株及单茎抗推力由于样本量较少,无显著相关(
图2)。
2.1.2 籽粒长宽比与倒二节间倒伏指数的相关分析
单株和单茎抗推力最大的品种均为‘黄广华占2号’,最小的品种为‘象牙香占’。‘黄广华占2号’单株和单茎抗推力分别是‘象牙香占’的1.6和2.8倍以上。此外,倒二节间倒伏指数最大和最小的水稻品种分别是‘象牙香占’和‘黄广华占2号’(
表2)。‘象牙香占’籽粒的长宽比较‘黄广华占2号’高36.92%。倒二节间倒伏指数与籽粒长宽比呈显著正相关(
图3)。水稻重心高度与水稻籽粒长宽比呈显著正相关(
R2=0.52;
P<0.05,数据未显示),表明籽粒越细长的水稻植株倒伏风险越高。
2.2 不同粒型籼稻幼穗及基部节间转录组测序分析
2.2.1 测序数据质量
‘象牙香占’‘玉针香’‘珍汕97B’‘黄广华占2号’4个不同粒型水稻品种的幼穗分化二期幼穗及基部节间的转录组测序分析表明,Q30碱基比例均在93.97%以上。序列比对至水稻参考基因组显示,多重比对率为2.06%~12.89%,唯一比对率为87.11%~97.55%,平均值分别为4.29%和95.71%。不同品种器官组内样本的皮尔逊相关系数(Pearson correlation coefficient,PCC)范围在0.96~1.00,可进行差异基因表达分析。
2.2.2 RT-PCR验证
由
图4可知,
GL7、
GS2、
OsGIF1、
OsWRKY53、
GL10、
GL6这6个调控水稻粒型的关键基因均可在幼穗、基部节间检测到表达信号。表明这些参与粒型调控的基因可能同时参与幼穗和基部节间的形态建成。qRT-PCR与RNA-seq结果对比显示,6个基因在不同材料、不同组织中的上调/下调变化趋势完全一致。整体变化模式高度吻合,表明转录组测序数据可靠。
2.2.3 差异表达基因
由
图5和
图6可知,4份水稻材料中,基部节间与幼穗2个组织共有的差异表达基因(组A)共1 466个,以基部节间为对照,幼穗器官中上调基因904个,下调基因562个。细长粒型与非细长粒型水稻的幼穗的差异表达基因(组B)DEGs共有503个。细长粒型与非细长粒型水稻的基部节间的差异表达基因(组C)DEGs共有333个。在同一品种的不同器官组合的DEGs中,基部节间中检测到的DEGs总数均高于幼穗组织,基部节间的品种间表达分化程度更为突出。且各品种的4个转录组均呈现一致趋势,说明不同粒型水稻在基部节间的转录组差异更大,品种间的表达分化程度在基部节间中差异更大。
在组B、组C差异表达基因(DEGs)中共鉴定出177个共有基因;其中
OsSMC6、OsLESV、OsXTR1、LAI、LOC_Os02g20330、LOC_Os08g42210这6个基因参于节间和幼穗形态建成。与非细长粒型水稻相比,除
LAI外其余基因均在细长粒型水稻幼穗和节间中上调(
表3)。
2.2.4 主要粒型基因的表达特征
GLW7、GS7、GL10、GL6、OsRGB1、DEP1、GW5、GS5、GW2、OsMAPK6等调控粒型的基因在幼穗和基部节间中均有表达(
图7)。
GL10在基部节间中的表达量较高,
GL6在幼穗中表达量较低。
GL7、
OsRGB1、
GLW7 3个调控粒型的基因在基部节间表达较高。表明在幼穗分化二期,调控水稻粒型的关键基因同时参与基部节间的生长发育调控。
2.2.5 差异基因GO和KEGG富集分析
由
图8可知,细长粒型与非细长粒型水稻的幼穗DEGs的差异表达基因显著富集(
P<0.05)。139个GO条目中,生物过程共富集到64个GO条目,细胞组分共富集到19个GO term,分子功能56个GO条目。蛋白质磷酸化(GO:0006468)、Smc5-Smc6复合物(GO:0030915)、碳水化合物衍生物结合(GO:0097367)分别是生物过程、细胞组分、分子功能中富集最高的GO条目。
对组C的GO富集分析发现,差异表达基因显著富集(
P<0.05)在177个GO条目,其中生物过程共富集到117个GO条目,细胞组分共富集到12个GO条目,分子功能48个GO条目。细胞骨架依赖性细胞内转运(GO:0030705)、肌球蛋白复合物(GO:0016459)、微丝运动活动(GO:0000146)分别是生物过程、细胞组分、分子功能中富集最高的GO条目(
图8(b))。
对组B和组C中的相同基因(组D)GO富集分析发现,差异表达基因显著富集(
P<0.05)在116个GO条目,其中生物过程共富集到63个GO条目,细胞组分共富集到16个GO条目,分子功能37个GO条目。核糖体小亚基从细胞核中输出(GO:0000055)、染色体中心(GO:0010369)、核输出信号受体活性(GO:0005049)分别是生物过程、细胞组分、分子功能中富集最高的GO条目(
图8(c))。
由
图9可知,对组A中上调的KEGG通路分析发现,差异基因显著富集(
P<0.05)在代谢途径(Ko04915)、光合作用-天线蛋白(Ko00196)、淀粉和蔗糖代谢(Ko00500)、次生代谢物的生物合成(Ko01110)及植物激素信号转导(Ko04075)。
对组A中下调的KEGG通路分析发现,差异基因显著富集(
P<0.05)在脂肪酸伸长率(Ko04915)、角质、亚蜡和蜡的生物合成(Ko00073)、脂肪酸代谢(Ko01212)、次生代谢物的生物合成(Ko01100)及植物激素信号转导(Ko00196)(
图9(b))。在组A中,无论是上调和下调的KEGG富集通路,植物次生代谢物的生物合成途径与植物激素信号转导途径均呈现显著富集,表明这两类通路可能共同参与调控水稻籽粒与基部节间的形态建成过程。
由
图10可知,对组B的KEGG通路分析发现,差异基因显著富集(
P<0.05)在RNA聚合酶(3个基因;
LOC_Os08g32990、
LOC_Os04g32350、LOC_Os08g07480)、光合作用(3个基因;
LOC_Os06g01210、LOC_Os12g23200、
LOC_Os08g10020)、甘氨酸、丝氨酸和苏氨酸代谢(3个基因;
LOC_Os08g32870、LOC_Os07g38440、
LOC_Os07g40660)、氮代谢(2个基因;
LOC_Os01g45290与
LOC_Os02g33030)。
对组C的KEGG通路差异基因显著富集(
P<0.05)在囊泡运输中的SNARE相互作用(2个基因;
LOC_Os02g20330与
LOC_Os08g42210)、糖酵解/糖异生(3个基因;
LOC_Os07g42924、LOC_Os03g15050、LOC_Os02g36600)(
图10(b))。
对组B和组C中共同基因进行KEGG通路分析,发现差异基因显著富集(
P<0.05)在囊泡运输中的SNARE相互作用(2个基因;
LOC_Os02g20330与
LOC_Os08g42210),甘氨酸、丝氨酸和苏氨酸代谢(2个基因;
LOC_Os08g32870、
LOC_Os07g40660)、乙醛酸盐和二羧酸盐代谢(2个基因;
LOC_Os08g09860、
LOC_Os07g40660)(
图10(c))。
3 讨 论
3.1 水稻粒型与基部节间抗倒伏性状密切相关
倒伏是制约水稻高产稳产的重要因素之一
[16]。已有研究发现,倒伏率与食味综合评价呈显著正相关,表明食味品质越好的品种越容易倒伏
[18]。广东丝苗米作为优质籼稻的典型代表,核心特征为长宽比高且食味品质优良,但在高产栽培条件下普遍易发生倒伏,成为限制其产量提升的关键瓶颈
[3]。本研究发现,水稻籽粒长宽比与单株抗推力呈极显著负相关,与单茎抗推力呈显著负相关(
图2),长宽比与倒二节间倒伏指数呈显著正相关(
图3),且长宽比与水稻重心高度呈显著正相关,从表型上验证了细长粒型优质稻抗倒伏能力偏弱的特性。从器官关键发育特征分析,幼穗与基部节间均由顶端分生组织分化而来,且2个器官在发育进程上存在重叠期
[8]。已有研究发现,
GS3、
GS5、
GW5、
GS7是广东丝苗米的粒型关键调控基因,且在多个丝苗米品种中广泛分布
[10]。本研究发现,这4个主效基因在幼穗和节间中均有表达,进一步表明调控这2个器官形态建成的基因网络可能共享关键组分或存在协同调控关系。
3.2 调控粒型和节间形态建成的关键通路
幼穗分化过程中,腋生分生组织及基部节间的形态建成受到多种植物激素的协同调控
[19]。对4份不同粒型水稻品种基部节间与幼穗差异表达基因的交集基因(组A)进行KEGG富集分析发现,生长素(IAA)响应通路是核心富集通路之一,共鉴定出包括
OsARF19等11个与生长素响应相关基因,其中10个基因在组A中表达上调,1个基因表达下调,表明生长素信号是串联幼穗发育与节间建成的核心调控信号(
图9)。同时发现
OsGASD、
MHZ6、OsSAPK10、OsPIL14、
OsGRF6、OsTB1等与赤霉素、乙烯、脱落酸、独角金内酯相关的基因在组A中差异表达(
图9)。已有研究表明,生长素可能通过直接诱导其他生长调控因子参与水稻幼穗的发育过程
[20];而赤霉素与乙烯既是粒型调控网络的重要组分,也是调控水稻节间伸长与结构建成的关键激素,表明籽粒形态与茎秆性状受到多激素信号通路的协同调控
[21]。
在组A中,参与次生代谢生物合成途径的基因主要有咖啡酸3-O-甲基转移酶基因
OsCOMT、肉桂醇脱氢酶
OsCAD8B、4-香豆酸:辅酶A连接酶
Os4CL3,均为基部节间发挥木质素合成调控功能的基因
[22]。这类基因的差异表达直接决定茎秆细胞壁木质素积累水平,进而影响基部节间的机械强度和抗倒伏能力
[23]。在幼穗中,油菜素内酯合成关键酶基因
d11、半矮秆基因
SD38等在组A中均显著下调(
图9)。
d11编码一个参与油菜素内酯合成的关键酶,正向调控水稻的粒长、粒宽以及节间伸长
[24];而
SD38则通过激活乙烯生物合成途径正向调控株高
[25],表明参与节间形态建成的基因在幼穗发育中同样具有表达活性,并与植物激素信号密切相关,这些基因可能通过同一激素调控网络参与籽粒和基部节间的形态建成。
综上,在4份水稻材料共有的节间/幼穗DEGs中,植物激素信号与次生代谢物生物合成通路是协同调控粒型和节间形态建成的核心通路。其中
OsGASD、OsTB1、MHZ6、OsARF19等DEGs均为多激素信号调控网络的关键节点(
图9);OsCOMT、
OsCAD8B、
Os4CL3、
d11、
SD38等DEGs分别通过调控次生细胞壁建成和细胞伸长(
图1和
图3),达到对籽粒形态和茎秆抗倒性状的协同调控。
3.3 细长粒型水稻易倒伏的转录组调控机理
在细长粒型与非细长粒型水稻的幼穗DEGs的GO富集结果中,差异表达基因富集在SUMO连接酶复合物(GO:0106068)、Smc5-Smc6复合物(GO:0030915)、蛋白质磷酸化(GO:0006468)等GO条目中(
图8)。其中,已有研究证实
OsMMS21是SMC5/6复合体,具有SUMO E3连接酶亚基活性,可调控水稻生长素信号传导和细胞周期进程,对维持芽、根干细胞生态位的稳定至关重要;
OsSMC6编码该复合体的核心骨架亚基,是复合体组装及OsMMS21发挥功能所必需的,二者生物学功能高度耦合
[26]。
OsSMC6可能通过相似调控机制,同时参与水稻幼穗粒型建成和基部节间发育。
在基部节间比较组(组C)中,差异表达基因富集在肌球蛋白复合物(GO:0016459)、微丝运动活动(GO:0000146)、纤维素合成酶活性(GO:0016759)等与细胞骨架和细胞壁建成相关GO条目中。肌球蛋白对植物细胞尖端的生长和水稻花粉管的伸长至关重要
[27-28],同时肌球蛋白可通过生长素转运蛋白PINFORMED(PIN)协同参与根的发育
[29]。已有研究发现,水稻中微丝与微管相互作用影响细胞增殖调控籽粒大小和粒型
[30]。KEGG富集分析表明
LOC_Os02g20330和
LOC_Os08g42210共同参与编码Qb-SNARE家族中的USE1蛋白,SNARE蛋白参与生长素转运蛋白(PIN)在根中的传导和根细胞分裂,二者共同调控拟南芥主根的发育
[31-32],该类基因在水稻中的功能尚未见报道,其可能通过相似的生长素转运调控机制参与水稻节间伸长和幼穗发育过程。本研究发现,调控生长素极性运输基因
LA1在细长粒型水稻基部节间显著下调(表4),水稻重心高度与籽粒长宽比呈显著正相关(
R2=0.52,
P<0.05),
LA1可通过负调控生长素极性运输维持分蘖直立生长,其表达下调会导致分蘖角度增大,重心高度升高
[33],该转录组特征与株型表型高度吻合,
LA1低表达可能是造成细长粒型水稻倒伏风险升高的原因。
细长粒型与非细长粒型“幼穗-节间”联合比较组(组D)富集结果显示,差异基因主要富集在细胞生长发育(GO:0048588)、Smc5-Smc6复合物(GO:0030915)、SUMO连接酶复合物(GO:0106068)等GO条目中;同时KEGG富集通路分析发现在组D中富集的囊泡转运中的SNARE相互作用(Ko04130)和甘氨酸、丝氨酸、苏氨酸代谢(Ko00260)通路也分别在组B和组C中富集。表明Smc5-Smc6复合物介导的细胞周期调控、SNARE介导的囊泡转运与生长素运输、氨基酸代谢等通路,是粒型与基部节间抗倒性状发育的共享调控通路。对组D的DEGs进一步分析发现
OsLESV、
OsXTR1也在不同粒型水稻中特异表达(表4),且与细胞生长、株型形态建成相关,是调控优质籼稻“长宽比高、易倒伏”的关键候选基因。
OsLESV可与颗粒结合型淀粉合成酶Ⅰ(Granule-bound starch synthase Ⅰ, GBSS Ⅰ)、颗粒结合型淀粉合成酶Ⅱ(Granule-bound starch synthase Ⅱ, GBSS Ⅱ)和丙酮酸磷酸双激酶B(Pyruvate orthophosphate dikinase B, PPDKB)3种淀粉生物合成酶相互作用,正向调控株高、粒长、粒宽,负向调控籽粒垩白率、直链淀粉含量等性状,同步影响籽粒品质和株型
[34]。
OsXTR1通过编码木葡萄糖内转糖基化酶,可正向调控节间细胞伸长
[35],进而影响植株高度和重心位置。
与非细长粒型水稻相比,
OsSMC6、
OsLESV、
OsXTR1、
LOC_Os02g20330和
LOC_Os08g42210在细长粒型水稻的幼穗及基部节间中均为显著上调表达,与优质稻籽粒长宽比高和垩白率低的表型密切相关
[13];而
LA1基因在细长粒型水稻节间中的表达显著下调,可能是优质稻易倒伏的重要原因。以上基因在幼穗和基部节间的特异性表达,可能通过生长素信号通路介导的细胞周期调控、细胞骨架重塑、细胞壁建成等过程共同调控水稻粒型、食味品质与抗倒性,是优质籼稻 “细长粒、易倒伏” 性状协同形成的重要分子基础。
4 结 论
广东丝苗米的籽粒长宽比与抗倒伏性状呈极显著负相关,籽粒长宽比越高,倒伏风险越高。幼穗与基部节间组织中的差异表达基因显著富集于植物激素调控及次生代谢合成通路,协同调控茎秆和幼穗的形态建成。不同粒型水稻差异基因主要富集于囊泡转运SNARE互作通路,以及甘氨酸、丝氨酸、苏氨酸代谢通路。OsSMC6、OsLESV、OsXTR1、LA1、LOC_Os02g20330和LOC_Os08g42210等基因的差异表达是优质籼稻长宽比高、抗倒能力偏弱的重要原因。
广州市科技计划项目“珠江科技新星”专题(201806010094)
引进优质高产丝苗水稻新品种及配套技术示范推广(2025D015)