系统性红斑狼疮(systemic lupus erythematosus, SLE)是一种慢性系统性自身免疫性疾病,多种免疫细胞参与了疾病的发生,T细胞亚群失衡、调节功能障碍,B细胞被激活后记忆性B细胞生成、浆细胞分化成熟,自身抗体产生增多,沉积在各器官造成损伤。B1细胞是一类能够自发分泌免疫球蛋白(immunoglobulin, Ig)M的B细胞,它与T细胞接触刺激其向辅助T细胞(helper T cell, Th)1型、Th17型分化,产生炎性因子,导致炎症反应和组织损伤;滤泡辅助性T细胞(follicular helper T cell, Tfh)及其分泌的白细胞介素(interleukin, IL)⁃21,具有维持生发中心稳定的功能,在B细胞分化成熟过程中起到促进作用
[1-3]。
间充质干细胞(mesenchymal stem cell, MSC)是一类保留多能性并具有强大免疫调节作用的干细胞,来源广泛,并且不表达主要组织相容性复合体⁃Ⅱ类分子,免疫原性低
[4-5]。通过直接接触或旁分泌作用,MSC可调节包括B细胞、T细胞、中性粒细胞在内的多种免疫细胞
[6]。MSC强大的免疫调节能力、炎症抑制功能及低免疫原性使其成为干细胞移植治疗中的最佳候选者,目前已在诸多自身免疫疾病治疗中发挥了作用
[7-8]。《中国狼疮肾炎诊治和管理指南(2025版)》
[9]已将间充质干细胞治疗难治性狼疮性肾炎纳入推荐建议,《异体间充质干细胞治疗系统性红斑狼疮专家共识》
[10]详细阐述了MSC治疗SLE的适应证等,部分临床试验取得了一定的成果,通过静脉注射MSC,部分复发性或难治性SLE患者病情得到改善,并且MSC治疗的安全性、持续性均有所保证
[11-13]。有假说提出MSC可能通过修复组织、改善微环境、抑制炎性细胞等方式在SLE治疗中发挥作用
[7,14-15],在SLE动物模型中,发现移植的MSC可以抑制淋巴细胞的增殖分化,调节Th1/Th2免疫平衡
[12,16-17]。但对于MSC在人类SLE中发挥作用的机制研究较少,仅有部分研究发现,MSC可调控SLE患者的T细胞,修复抑炎型调节性T细胞的数量及功能,抑制Th17细胞的过度活化
[12,16]。MSC调节SLE的机制仍有待探究,如MSC是否对SLE的B1细胞或其他细胞有调节作用,MSC如何介入SLE的免疫调节以及介入时机等,而这些在儿童SLE中的情况更是知之甚少。深入了解MSC治疗SLE的作用机制,有利于补充SLE疾病治疗方式,改善难治性和复发性SLE患者的预后。
本实验利用流式细胞术检测儿童SLESLE组及健康对照组外周血中B1细胞(CD20+CD27+CD43+)、Tfh细胞(CD4+CD185+CD279+)水平,研究B1细胞、Tfh细胞在不同疾病中表达的差异性以及与SLE疾病活动度的相关性;并将外周血进行离心获取外周血单个核细胞(peripheral blood mononuclear cell, PBMC)与人脐带间充质干细胞(human umbilical cord mesenchymal stem cell, hUCMSC)或培养基(空白对照)共培养48 h,再次检测B1细胞、Tfh细胞水平,探究MSC能否通过调控B1细胞、Tfh细胞在SLE中发挥作用。
1 材料与方法
1.1 研究对象
选取2021年8月—2022年3月就诊于中南大学湘雅二医院儿童医学中心的儿童。SLE组纳入标准:根据2019年欧洲抗风湿病联盟/美国风湿病学会分类标准
[18]诊断为SLE。排除标准:(1)伴有其他自身免疫性疾病;(2)3个月内接受过大剂量激素冲击治疗;(3)伴有其他感染性疾病。在本院体检的健康儿童选为对照组,获取其外周血以及相关临床资料。本次研究通过湘雅二医院伦理委员会审批(LYEC2024⁃0257),并取得患儿监护人知情同意。
1.2 细胞处理
hUCMSC来自既往研究中扩增的3~4代hUCMSC,在无血清培养基中培养,并进行成骨诱导鉴定以及成脂诱导鉴定。从采集到的外周血中分离PBMC,SLE患儿PBMC与hUCMSC在1640完全培养基中,以37℃、5%CO
2、饱和湿度条件下共培养48 h。共培养按照hUCMSC与PBMC比例设置3个组,分别是PBMC+PBS,hUCMSC∶PBMC(1∶10),hUCMSC∶PBMC(1∶20)
[19-20]。
1.3 流式细胞术检测
收集细胞后,用以下抗人抗体标记细胞,CD4、CD20、CD27、CD43、CD185、CD279(以上抗体均来自美国Biolegend),通过流式细胞仪检测,并用FlowJo软件分析数据。按照以下标记圈出T细胞(CD4+)和Tfh细胞(CD4+CD185+CD279+),B细胞(CD20+)和B1细胞(CD20+CD27+CD43+)。
1.4 数据收集
收集目标儿童相关临床资料,包括性别、年龄、肾功能、尿常规、尿沉渣、抗核抗体、抗双链DNA抗体、血清补体C3、血清补体C4、IgG、IgM、IgE、IgA、治疗方式、系统性红斑狼疮疾病活动度评分(Systemic Lupus Erythematosus Disease Activity Index, SLEDAI)评分,以备分析。
1.5 统计学分析
应用SPSS25.0软件进行统计学分析。对符合正态分布的计量资料,数据以均数±标准差()表示,非正态分布的计量资料以中位数(四分位数间距)[M(P25,P75)]表示。不同浓度组培养结果采用方差分析及克鲁斯卡尔-沃利斯检验,疾病组、对照组的细胞亚群采用独立样本t检验进行统计分析;对细胞亚群与临床特征通过拟合曲线,进行皮尔逊或斯皮尔曼相关性分析。
2 结果
2.1 hUCMSC鉴定
倒置生物显微镜观察hUCMSC细胞贴壁生长情况,细胞呈梭形。成骨诱导25 d,茜素红染色细胞,其表面的钙化结节呈明显的红色。成脂诱导14 d,油红O染色细胞,其胞质中的脂滴呈红色(
图1)。
2.2 SLE组与对照组B1细胞、Tfh细胞分析
共纳入对照组儿童10例,SLE组患儿19例。对照组与SLE组中B1细胞占CD20
+细胞群的百分比分别是1.09%±0.22%、2.38%±0.48%,差异有统计学意义(
P<0.05);对照组与SLE组中Tfh细胞占CD4
+细胞群百分比分别是1.86%±0.30%、3.12%±0.52%,差异有统计学意义(
P<0.05)(
表1、
图2)。
2.3 SLE组中B1细胞、Tfh细胞与临床指标相关性分析
对SLE患儿外周血中B1细胞、Tfh细胞水平与临床指标进行统计学相关性分析,均未发现明显相关性(
表2)。
2.4 SLE患儿PBMC与hUCMSC培养
检测完SLE患儿外周血中B1和Tfh细胞基础值后,随机挑选6例患儿的PBMC与不同浓度的hUCMSC以及空白PBS进行共培养。hUCMSC与SLE患儿PBMC共培养48 h后,不同浓度培养组之间,B1细胞占CD20
+细胞群的百分比及Tfh细胞占CD4
+细胞群的百分比差异均无统计学意义(
P>0.05)。见
表3、
图3。
3 讨论
MSC是一类具有多分化潜力的干细胞,能够作用于免疫反应的各个环节,调节诸多免疫细胞的增殖、分化及分泌功能,是一种可行的自身免疫性疾病治疗方式
[21-22]。MSC可通过抑制炎症反应、调控免疫细胞功能或直接定向分化等方式在治疗SLE中发挥作用
[12, 23-28]。多项MSC治疗SLE的临床试验结果表明,相较于传统药物治疗组,接受了MSC治疗的难治性或复发性SLE患者各项指标有所改善,血清白蛋白、补体C3、补体C4水平升高,抗体滴度、尿蛋白水平下降,且肾炎相关临床症状缓解。在长期的随访观察中,MSC移植治疗表现出良好的安全性,疾病复发率较药物治疗组低
[13,29-31]。MSC可调控的细胞类型广泛,在SLE中是否可以调控其他细胞活性还不清楚。本研究通过hUCMSC与儿童SLE‑PBMC共培养,探究MSC对SLE中B1细胞、Tfh细胞的影响,为之后进一步的研究打下基础。
B1细胞能够自我更新,通过分泌具有多反应性的IgM抗体,在体内发挥免疫作用。在SLE小鼠中,清除B1细胞可以在一定程度上延缓疾病进展,而异常扩增的B1细胞群体,则会增加小鼠发生肾小球肾炎的风险
[32-34]。B1细胞会被SLE小鼠体内异常表达的B淋巴细胞趋化因子所吸引,迁移并聚集在肾脏等免疫器官。在此过程中,B1细胞发生类别转换,产生更多的自身免疫性抗体;同时分泌IL‑10,刺激CD4
+T细胞向Th1、Th17细胞分化,诱导炎症反应,最终导致器官免疫损伤
[35-37]。还有研究发现,B1细胞分泌抗磷脂酰丝氨酸抗体,加重狼疮性肾炎的进展
[38]。Griffin等
[39]通过功能学实验,证实人类B1细胞的表型为CD20
+CD27
+CD43
+。在脐带血CD20
+B细胞中,CD27
+CD43
+B细胞约占6.1%±1.1%,在外周血中占比约12.7%±1.6%。值得注意的是,不同研究团队报道的B1细胞比例存在显著差异:Kraljevic等
[40]在健康人群中测得的B1细胞占总B细胞的(1.2%±1.9%),Tørring等
[41]报道的数据为(1.7%±0.4%),Quách等
[42]观察到的数据为(1%±0.12%)。而本研究测得的SLE患儿外周血中B1细胞占CD20
+B细胞的2.38%±0.48%,这些检测结果的异质性可能与人种差异、年龄等因素有关。有研究指出,B1细胞数量及其分泌抗体的能力会随年龄增长而下降
[43]。
本研究结果显示,B1细胞群比例在SLE组中显著高于对照组,但其水平与SLE患儿补体水平、免疫球蛋白、抗体水平、SLEDAI评分等无显著相关性,拟合曲线显示B1细胞群与SLEDAI评分呈正相关,这些结果提示B1细胞可能参与了SLE的发生,并起到促进作用。目前有关B1细胞在SLE患儿体内水平的研究较少,仅有少数针对CD5
+B1细胞的研究发现,CD5
+B1细胞在成人SLE患者中与SLEDAI评分呈负相关
[44]。本研究与既往研究结果不同,可能与测得的B1细胞表型不同有关。B1细胞在免疫细胞中占比较少,但仍在SLE中发挥重要作用。目前研究表明,B1细胞是一群具有自我更新能力的细胞,暂未发现可调控人B1细胞增殖分化功能的细胞或因子
[35]。本研究将hUCMSC与SLE患儿PBMCs共培养48 h后,未观察到B1细胞群的明显变化,表明hUCMSC对外周血中B1细胞比例无调控作用,但是否能够影响B1细胞的关键功能(如抗体分泌功能、细胞因子分泌能力、对CD4
+T细胞的促进作用),还需要进一步探究。
Tfh细胞可以辅助B细胞活化,通过经典表面标志物CD4
+CD185
+CD279
+定义。诱导SLE模型小鼠体内Tfh细胞过度表达,形成大量生发中心,出现狼疮样表现;而阻断Tfh活化过程中的关键配体ICOS的信号,或拮抗IL‑21,均可抑制这一过程
[45-46]。在SLE患者体内,Tfh的数量变化与生发中心形成有着高度相关性,有研究发现在狼疮性肾炎患者异位生发中心,存在一类表达CD278、CD279、B细胞淋巴瘤6和IL‑21的Tfh样细胞
[47]。本次研究中,发现SLE患儿外周血中Tfh(3.12%±0.52%)明显高于对照组(1.86%±0.30%)(
P<0.05)。这提示外周血中Tfh细胞可能参与了SLE的发展,与既往研究结论相符合
[45-47]。有研究发现,SLE患者外周血中各Tfh样细胞群的比例较健康对照组增加,且与SLEDAI评分、抗体滴度水平呈正相关
[18, 48]。本研究未发现Tfh细胞与临床指标间的相关性,可能与样本人群以及样本量有关。
有学者通过向SLE模型小鼠注射骨髓来源MSC,延缓了狼疮性肾炎的发展,并发现小鼠体内Tfh细胞水平及IL‑21水平均有下降。随后使用MSC与SLE小鼠脾脏来源的初始CD4
+T细胞共培养,发现MSC抑制了CD4
+T细胞向Tfh细胞的分化以及分泌IL‑21的能力
[19-20,49]。但是尚无MSC对人体Tfh细胞调控研究。本实验中,将hUCMSC与SLE患儿PBMC共培养48 h后,Tfh细胞群无明显变化,未能观察到hUCMSC对外周血中Tfh细胞比例的调控作用。
本研究初步探究了SLE患儿体内B1、Tfh细胞水平与健康儿童的差异,以及MSC对PBMC中B1、Tfh细胞的刺激作用。本研究仍存在不足,实验获取的样本量较少,hUCMSC与PBMC共培养实验可增加刺激时间并控制样本背景实验结果的代表性有限。后续拟扩大样本量,并增加相应功能检测实验,进一步探究B1、Tfh细胞在不同SLE亚型中差异,挖掘B1、Tfh细胞在SLE中的作用机制。
本次研究在儿童SLE患者中测定了外周血中B1细胞比例,并发现SLE患儿外周血中B1细胞高于健康儿童,B1细胞比例与SLEDAI评分可能具有相关性,提示B1细胞在SLE的发生发展中起到一定作用。SLE患儿外周血中Tfh细胞高于健康儿童,表明Tfh细胞可能参与了SLE的进展。hUCMSC不能直接影响外周血中B1细胞和Tfh细胞的生存或增殖。
国家临床重点专科重大专项(Z2023032)
国家自然科学基金面上项目(82470757)
国家自然科学基金面上项目(82070758)