羊小反刍兽疫的综合防治

摘要

小反刍兽疫是由小反刍兽疫病毒引起的一种急性、烈性、接触性传染病，主要感染山羊、绵羊。病羊体温升高，精神萎靡，食欲明显减退，活动量大幅减少，口腔黏膜从轻度充血发展为糜烂，采食、咀嚼受影响。多数病羊会发生严重腹泻或下痢，粪便呈水样，且伴有腥臭味。该病病情急，传染性快，死亡率高，对养羊业造成了严重的经济损失。目前，小反刍兽疫以防控为主，治疗为辅，主要的防控措施从临床诊断、疫苗免疫和饲养管理等方面入手，切断小反刍兽疫病毒的传染途径，降低发病率。

Graphical abstract

关键词

羊 / 小反刍兽疫 / 传染性 / 养殖效益 / 防控

羊小反刍兽疫，又被称为羊瘟，主要通过气溶胶经呼吸道传播，病羊所有分泌物和排泄物均带毒且具感染性，对我国动物卫生安全构成了严重威胁，极大地增加了动物疫病跨境传播风险。世界动物卫生组织（OIE）制定了小反刍兽疫的诊断标准和推荐方法，包括病毒分离、血清学检测、分子生物学检测等。此外，我国的研究团队在探索利用基因芯片、蛋白质组学等新技术进行小反刍兽疫的诊断和监测，以实现对疫情的更精准防控^[1]。

本文通过查阅国内外文献，全面了解羊小反刍兽疫的研究现状、诊断技术和预防措施的发展动态，根据临床情况提出综合防治方案，为养羊业提供有力的技术支持，保障养羊业的健康、稳定发展。

1 病原与流行病学

1.1 病原学特性

小反刍兽疫病毒（PPRV）属副黏病毒科麻疹病毒属，该科有诸多对人畜致病的病毒。麻疹病毒属的病毒具有共同的生物学特性，PPRV与麻疹、犬瘟热病毒等在基因结构、抗原性上有相似处。PPRV粒子多形，多为球形，直径130~390 nm，对乙醚、氯仿等脂溶剂敏感，接触后病毒包膜遭破坏，失去感染性。

1.2 流行病学特点

患病羊发病期，呼吸道分泌物、粪便、尿液等排泄物含大量小反刍兽疫病毒（PPRV）。研究显示，急性期每毫升呼吸道分泌物病毒含量可达10⁵~10⁷个感染单位。这些含有高浓度病毒的排泄物一旦污染周围环境，如养殖场地、饲料、饮水等，就会成为病毒传播的源头^[2]。

隐性感染羊虽然没有明显的临床症状，但体内依然携带病毒，并且能够持续排毒，在一定条件下，如机体免疫力下降时，隐性感染羊也可能发病，成为新的传染源。健康羊接触被患病羊排泄物污染的物品，可能感染小反刍兽疫病毒。山羊、绵羊等小反刍动物对该病高度易感，各品种、年龄、性别的羊均有感染风险，其中幼龄羊及免疫力低的羊更易发病，病情也更严重^[2]。

2 临床症状与病理变化

2.1 临床症状

1）典型症状。在感染初期，羊只体温会迅速升高，一般可达40~42 ℃，这种高热状态可持续3~8 d。发热期间，羊只精神萎靡，食欲明显减退，对平时喜爱的饲料和草料表现出抗拒，活动量也大幅减少，常独自蜷缩在角落。

病情发展时，病羊口炎症状显现。口腔黏膜从轻度充血发展为糜烂，初期下牙龈周围小面积坏死，后坏死区域快速蔓延至齿垫、硬腭、颊、颊乳头及舌等部位。坏死组织脱落后，形成不规则浅糜烂斑，致使羊口腔疼痛，采食、咀嚼受影响。病羊常因疼痛而流涎增多，口腔内有大量黏液流出，且呼出的气体带有恶臭。多数病羊会发生严重腹泻或下痢，粪便呈水样，且伴有腥臭味。腹泻会导致羊只迅速脱水，体重急剧下降，身体逐渐消瘦。由于脱水和营养不良，病羊的皮肤失去弹性，眼窝凹陷，精神更加萎靡不振^[3]。

2）非典型症状。部分羊只感染羊小反刍兽疫后，可能出现非典型症状。这些症状相对较轻，容易被养殖户忽视。一些羊只仅表现出轻微发热，体温升高幅度较小，一般在40 ℃以下，且发热持续时间较短，可能仅1～2 d。同时，伴有类似感冒的症状，如轻微的流鼻涕、咳嗽等，这些症状与普通感冒极为相似，很难通过这些症状判断羊只是否感染了羊小反刍兽疫。

在口腔症状方面，非典型症状的羊只口腔病变较为温和，可能仅在口腔黏膜出现少量散在的小红点，或者轻微的充血，没有明显的糜烂和坏死。这些轻微的口腔病变不会对羊只的采食和咀嚼造成太大影响，因此不易被察觉。还有部分羊只可能仅表现出短暂的腹泻症状，腹泻程度较轻，粪便形态变化不明显，持续时间较短，可能在1~2 d内自行缓解。这种轻微的腹泻症状在羊群中较为常见，容易被误认为是饮食不当或其他普通疾病引起，从而延误病情的诊断和治疗。

2.2 病理变化

1）主要器官病变。羊小反刍兽疫致使羊只主要器官有明显病理变化，口腔病变突出。口腔黏膜充血，形成大面积糜烂与坏死区域，严重时从齿龈、硬腭蔓延至颊部、舌部等，坏死组织脱落后留下不规则浅糜烂斑，表面覆灰白或黄白色伪膜。在对病死羊进行解剖时，可清晰看到口腔黏膜的病变，糜烂斑的边缘不整齐，周围组织呈现出明显的充血和水肿状态^[4]。

胃肠道的病变也较为突出。皱胃常出现出血性糜烂斑，大小不一，呈暗红色，分布在皱胃黏膜表面。肠道可见糜烂或出血，回肠、盲肠结合处有特征性线状出血或斑马样条纹。肠道黏膜坏死、脱落，肠壁变薄，屏障功能丧失。镜下见黏膜上皮细胞坏死，固有层炎性细胞浸润，肠绒毛萎缩、断裂。肺部呈肉样变和干酪样病灶。肺组织质地变硬，颜色变为暗红色或灰白色，外观呈现出肉样的质感。脾脏通常会出现肿大现象，质地变软。在脾脏表面和实质内，可见散在的坏死灶，这些坏死灶呈灰白色或淡黄色，大小不一。脾脏的白髓和红髓结构模糊，淋巴细胞数量减少，网状细胞增生。脾脏的这些病变会影响其免疫功能，导致机体免疫力下降^[5]。

2）组织学变化。在显微镜下观察感染羊小反刍兽疫的组织，可见一系列特征性的病理变化。在口腔黏膜组织中，上皮细胞发生变性、坏死，细胞间连接破坏，导致上皮层脱落。在坏死区域，可见大量炎性细胞浸润，主要包括中性粒细胞、淋巴细胞和巨噬细胞。这些炎性细胞聚集在坏死组织周围，试图清除坏死细胞和病原体，但由于病毒的持续感染，炎症反应难以得到有效控制。胃肠道黏膜上皮坏死、脱落，固有层血管扩张、充血，红细胞渗出。黏膜下层和肌层有炎性细胞浸润，组织水肿、结构紊乱。肠道绒毛顶端上皮坏死严重，绒毛变短、变粗甚至消失，影响消化吸收。脾脏淋巴细胞减少，白髓萎缩，红髓巨噬细胞增多，坏死灶周围网状细胞增生形成肉芽组织。脾脏的这些组织学变化，严重影响了其免疫功能，使得机体对病毒的清除能力下降，进一步加重了病情。

3 诊断方法

3.1 临床诊断

1）症状判断。临床症状是初步诊断羊小反刍兽疫的重要依据，需要密切关注羊只的各种表现。在症状判断过程中，首先要注意羊只的体温变化，感染小反刍兽疫的羊只通常会出现高热症状，体温可迅速升高至40~42 ℃，持续3~8 d。

在检查羊只口腔时，要注意观察糜烂斑的形态、大小和分布范围，以及口腔黏膜的充血程度。腹泻症状同样不容忽视，病羊发生严重腹泻或下痢，粪便呈水样且带有腥臭味，这是羊小反刍兽疫的典型症状之一。腹泻会导致羊只迅速脱水、体重下降，身体状况恶化^[6]。

2）流行病学调查。流行病学调查是辅助诊断羊小反刍兽疫的重要手段，通过对发病情况、传播途径等方面进行调查，可以为诊断提供有力支持。在调查发病情况时，要详细了解羊群的发病时间、发病数量、发病率和死亡率等信息。询问养殖户羊群最初出现症状的时间，以及发病羊只的数量变化情况。计算发病率和死亡率，对于判断疫情的严重程度和传播趋势具有重要意义^[7]。

3.2 实验室诊断

1）血清学检测。琼脂凝胶免疫扩散（AGID）曾广泛用于早期PPRV临床诊断。它利用琼脂糖凝胶中可溶性抗原与抗体结合形成沉淀线来检测PPRV，如采集病死羊脾脏或淋巴结，用抗血清做琼脂免疫扩散，有沉淀线则存在PPRV，反之则无。对流免疫电泳（CIEP）也常用于早期PPRV临床诊断，相比AGID，其诊断速度和灵敏度均提升，可作为临床筛选的试验方法。

酶联免疫吸附试验（ELISA）适用于大量样本检测。李雪珍等^[6]以表达的N蛋白作包被抗原建立间接ELISA法，检测137份山羊血清，与IDvet公司商品化试剂盒对比，符合率达95.6%，可用于PPR临床诊断。

胶体金技术（GICT）以胶体金为显色媒介，通过层析实现抗原抗体特异性结合来检测。将PPRV的N蛋白分别用作金标抗原、检测线（T线）包被抗原，单克隆抗体作质控线（C线）包被抗体，制成检测PPRV的N蛋白抗体胶体金免疫层析试纸条。临床血清样品检测显示，该试纸与ELISA符合率为97.6%，特异性、重复性和敏感性良好，可快速检测PPRV抗体^[7]。

2）核酸检测。普通PCR检测（PCR）是PPRV常用检测方法，依据PPRV的N、F、M等基因构建，其中N基因编码核衣壳蛋白，参与病毒复制，是主要检测基因。

实时荧光定量PCR检测（qPCR）操作简便，能量化扩增结果。荧光染色法成本低，在实验室广泛应用。芯片式数字PCR检测（cdPCR）在单分子层面绝对定量，不依赖标准曲线，可直接从大量样品中定量核酸，提升检测精度。杨鸣发等^[8]构建标准质粒并优化条件，建立PPRV N基因cdPCR检测方法，与qPCR平行对比，结果显示该法快速、简便、特异性强、重复性好、灵敏度高，是PPRV高效检测手段。

4 预防措施

4.1 疫苗接种

目前，羊小反刍兽疫预防疫苗主要有弱毒活疫苗和灭活疫苗。弱毒活疫苗由人工致弱的小反刍兽疫病毒制成，如Nigeria75/1、Sungri/96弱毒疫苗，无副作用，可交叉保护各群毒株感染，不过热稳定性差。其免疫原性强，能刺激机体产生细胞免疫和体液免疫。细胞免疫上，弱毒病毒促使T淋巴细胞增殖分化，产生细胞毒性T淋巴细胞杀伤感染病毒的细胞。在体液免疫方面，B淋巴细胞受到刺激后会产生特异性抗体，这些抗体能够中和病毒，阻止病毒的感染和传播。弱毒活疫苗的免疫期相对较长，一般接种后可提供3~5年的有效保护。免疫副反应相对较小，大多数羊只在接种后仅有轻微的发热、精神不振等症状，一般在1～2 d内即可自行恢复。灭活疫苗的安全性较高，不存在毒力增强的风险，因为病毒已经失去了活性，不会在羊体内繁殖和引起感染。在储存和运输方面，灭活疫苗相对较为方便，一般在常温下即可保存一段时间^[9]。

4.2 饲养管理

养殖场布局需科学合理，严格划分生活区、生产区、隔离区与无害化处理区。生活区供养殖人员居住生活，应与生产区保持距离，防止疫病从生产区传入。生产区是羊只饲养的核心区域，要保证清洁卫生，定期进行消毒。隔离区用于隔离患病羊只，应设置在养殖场的下风向，与生产区之间要有严格的隔离设施，防止疫病传播。无害化处理区用于处理病死羊只和废弃物，应远离生产区和生活区，采用焚烧、深埋等方式进行无害化处理，防止疫病扩散。在布局时，要合理规划道路和排水系统，确保人员、车辆和物资的流动顺畅，同时避免交叉污染^[10]。

定期对羊舍进行全面消毒，可采用喷洒消毒剂、熏蒸等方式。在消毒剂的选择上，应选用对小反刍兽疫病毒有效的消毒剂，如过氧乙酸、碘伏、戊二醛等。在平时，每周消毒1~2次。在消毒过程中，要注意对羊舍的地面、墙壁、门窗、饲养设备等进行全面消毒，确保无死角。除了羊舍消毒，还要对养殖工具进行定期消毒。食槽、水槽等工具在每次使用后，都应进行清洗和消毒，可采用浸泡消毒或擦拭消毒的方式。养殖人员的衣物和鞋子也应定期清洗和消毒，避免将病毒带入养殖场。对养殖场的周边环境也要进行定期清理和消毒，铲除杂草，清除垃圾，减少病毒的滋生和传播场所^[11]。

5 结 语

本研究围绕羊小反刍兽疫的诊断和预防展开了深入探究，尽管在羊小反刍兽疫的诊断和预防方面取得了一定成果，但仍存在一些不足之处。在诊断技术方面，对现有诊断方法进行了优化和研究，仍需引入一些新型诊断技术，以提高诊断的准确性。

参考文献

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