猪繁殖与呼吸综合征的流行特征、诊断与防治

摘要

猪繁殖与呼吸综合征（porcine reproductive and respiratory syndrome, PRRS）是一种严重影响养猪业的传染病。本文详细阐述了PRRS的病毒传播途径、易感动物、流行规律等流行特征，介绍其临床症状、病理变化以及实验室诊断方法，并从生物安全措施、疫苗接种和综合防控措施等方面探讨了有效的防治策略，以期为该病的防控提供科学依据，降低其对养猪业的危害。

关键词

猪繁殖与呼吸综合征 / 流行特征 / 传播途径 / 疫苗接种

猪繁殖与呼吸综合征自20世纪80年代末首次被发现以来，已在全球范围内广泛传播，给养猪业造成了巨大的经济损失。自1995年PRRS在中国暴发以来，关于长三角区域猪群PRRS的整体流行率为35.8%，其中安徽省流行率最高（51.5%），其次为江苏省（45.0%）和上海市（41.2%），浙江省的流行率最低（31.0%），而样本类型、饲养模式和健康状况等均是影响PRRS流行率的因素(P<0.05)^[1]。

该病主要引起母猪繁殖障碍和仔猪、育肥猪的呼吸道疾病，病原体为猪繁殖与呼吸综合征病毒（PRRSV）。研究表明，广东省在2023－2024年期间PRRSV呈现持续流行态势，其中谱系1占比居于首位，谱系5呈上升趋势，以NADC30-Like为优势毒株，VR2332-Like毒株检出率上升且区域分布差异显著，流行范围广泛、毒株变异频繁^[2]。猪繁殖与呼吸综合征病毒具有高度的变异性，这使得防控工作面临诸多挑战。因此，全面把握猪繁殖与呼吸综合征的流行规律、精准实施诊断策略以及科学建立防控体系，是确保养猪业可持续健康发展的重要保障。本文通过深入探讨该病的区域性传播规律及关键影响因素，同时整合临床症状鉴别诊断、分子生物学检测技术及新型疫苗研发应用进展，旨在为建立精准化、动态化的PRRS区域防控体系提供科学依据，助力养猪业提升生物安全水平，有效降低疫病造成的经济损失，推动生猪养殖产业高质量可持续发展。

1 流行特征

1.1 病毒特性与传播途径

1）病毒特性。猪繁殖与呼吸综合征病毒是单股正链RNA病毒，具有囊膜结构，属于动脉炎病毒科。基于遗传背景及抗原属性的异同，该病毒可划分为欧洲型（或称基因Ⅰ型）和美洲型（基因Ⅱ型）。该病毒在环境中相对稳定，可在感染猪体内长期存活，尤其是在低温环境下存活时间更长。

2）传播途径。主要包括：

①垂直传播。感染PRRSV的母猪可通过胎盘将病毒传给胎儿，导致流产、死胎、弱仔等繁殖障碍现象。研究表明，在妊娠后期感染的母猪，其胎儿感染率较高，可达70%~100%。这种垂直传播方式使得病毒能够在代际间延续，增加了净化的难度。

②水平传播。主要通过直接接触传播，健康猪与感染猪密切接触后易被感染。此外，也可通过间接接触传播，如污染的饲料、饮水、用具、设备以及运输工具等。空气传播在一定条件下也可能发生，尤其是在相对封闭且通风不良的猪舍环境中，含有病毒的飞沫或气溶胶可传播较远距离，使周围猪群感染。

1.2 易感动物

各年龄段的猪均可感染PRRSV，但怀孕母猪和仔猪的症状通常较为严重。后备母猪感染后可能出现发情紊乱、配种困难等问题，而成年公猪感染后一般症状较轻，但精液质量可能下降，影响受精率。

1.3 流行规律

1）季节性。虽然PRRS全年均可发生，但在冬季和春季气温较低时发病率相对较高，这可能是由于寒冷季节猪舍通风换气减少，空气质量变差，猪只抵抗力下降，同时有利于病毒在环境中存活和传播。然而，在一些高温高湿的地区，夏季也可能因蚊虫滋生、热应激等因素加重疫情。

2）周期性。PRRS常呈地方性流行，每隔一段时间可能会出现1次较大的暴发，这与病毒在猪群中的持续循环、免疫保护力的衰减以及新生猪只的引入等因素有关。当猪群免疫力下降到一定程度，一旦有新的强毒株入侵或环境条件适宜，就容易引发大规模疫情。

3）混合感染普遍。目前中国PRRSV流行以谱系1的NADC30-like和 NADC34-like为主，多种毒株共存，从2025年上半年的检测情况来看，我国猪群PRRSV的感染仍较为严重，其中病原检测结果显示，总样本阳性检出率为 41.6%，而场阳性率高达79.4%，且保育猪群最严重，总体符合猪场临床发病情况^[3]。

2 诊 断

2.1 临床症状观察

1）母猪。主要表现为发热（体温可达40~41 ℃）、精神沉郁、食欲减退或废绝等症状。部分母猪出现咳嗽、呼吸困难等呼吸道症状。妊娠后期感染的母猪可发生流产、早产，产死胎、弱仔数量增多。此外，产后母猪可能出现无乳或少乳现象，导致仔猪饿死或发育不良。

2）仔猪。新生仔猪表现为消瘦、虚弱、皮肤苍白、被毛粗乱，呼吸明显困难，常呈腹式呼吸，有的可见眼结膜炎、眼睑水肿。

3）育肥猪。症状相对较轻，主要为轻度发热、咳嗽、流鼻涕等呼吸道症状，采食量下降，生长速度减慢。病程较长时可能出现继发感染，导致病情加重。

2.2 病理变化检查

1）肺部病变。肺组织呈现弥漫性间质性肺炎，质地坚实，颜色灰白或淡红色；切面湿润，有泡沫状液体流出；显微镜下可见肺泡壁增厚，肺泡腔内有浆液性渗出物、纤维素和巨噬细胞浸润；有时还能观察到肺小叶间质水肿、出血等变化。

2）淋巴结肿大。全身淋巴结特别是肺门淋巴结、下颌淋巴结等明显肿大，质地柔软，切面多汁外翻，组织学上表现为淋巴滤泡增生、淋巴细胞减少和坏死。

3）肾脏和其他器官。少数病例可见肾脏表面有针尖大小的出血点，皮质和髓质界限不清，肾盂肾炎也是常见的并发症之一。而心肌可能有非化脓性心肌炎的表现，肝脏淤血、肿大，脾脏边缘梗死等情况偶尔可见。

2.3 实验室诊断

1）血清学检测。主要包括：

①酶联免疫吸附试验。酶联免疫吸附试验（ELISA）是目前应用最广泛的血清学检测方法之一，可以检测猪血清中的特异性抗体，用于监测猪群的感染状态和疫苗免疫效果评估。袁翠霞等^[4]采用ELISA方法检测贵阳市某种猪场猪繁殖与呼吸综合征（PRRSV）免疫抗体和感染抗体，结果显示：2022－2024 年，该种猪场PRRSV感染抗体和病毒核酸检测结果均为阴性。

②免疫荧光抗体试验。免疫荧光抗体试验（IFA）将标记有荧光素的抗 PRRSV抗体与待检血清中的相应抗原结合，在荧光显微镜下观察是否有特异性荧光反应。韩煜尔等^[5]将PRRSV阳性的病料过滤处理后接种在Marc-145细胞进行病原分离鉴定，对已传至第5代并且出现细胞病变效应的细胞样品进行间接免疫荧光鉴定（IFA），结果发现利用抗PRRSV N蛋白的单克隆抗体进行检测时，阳性细胞周围呈现绿色荧光。

③胶体金免疫层析技术。胶体金免疫层析试纸条（GICA）是通过将PRRSV特异性抗体固定于膜上，观察待测样本中的病毒抗原与胶体金标记抗体结合后是否产生显色。该方法成本低，适合基层兽医站或养殖场现场筛查。胡冉冉^[6]以重组蛋白dM作为金标抗原和检测线包被的抗原，质控线包被鼠抗PRRSV dM多抗，成功建立PRRSV抗体免疫层析检测方法，特异性好、灵敏度高且稳定性强。

2）分子生物学检测。主要包括：

①聚合酶链反应。聚合酶链反应（PCR）能够特异性地扩增PRRSV基因组中的特定片段，通过对扩增产物的电泳分析来判断样本中是否含有病毒核酸。

实时荧光定量PCR技术不仅可以定性还可以定量检测病毒载量，有助于了解病情的发展程度和预后判断。罗发强等^[7]采用RT-巢式PCR技术扩增临床样本的PRRSV Nsp2基因片段，对PCR产物测序后构建系统发育树，结果表明该病毒聚类于PRRSV-2分支的NADC30样毒株谱系，该猪场主要受NADC30样毒株流行压力影响。

②基因测序。基因测序能够对分离到的PRRSV毒株进行全基因组或关键基因片段的测序分析，可以深入了解病毒的遗传变异情况，追踪流行毒株的来源和进化关系，为制定针对性的防控策略提供依据。

苏潼键等^[8]使用PRRSV-1 GZ0308 株全基因组PCR引物对样品毒株的目的基因进行扩增后插入克隆载体，挑取阳性菌落用于测序，随后将测序获得序列进行拼接得到病毒基因全长，结果显示：该病毒株基因组全长14 970 bp，与PRRSV-1毒株LV相似性为86.99%，与 PRRSV-2 VR2332相似性为66.49%。

③基因编辑。CRISPR是一种基因编辑技术，通过靶向识别特定核酸序列实现病原体的高灵敏检测，目前主要应用于PRRSV核酸检测中，通过设计多组gRNA，可同时检测多种病原体（如PRRSV与其他猪病病毒）。

该方法可检测低至单拷贝的病毒核酸，区分PRRSV的基因型。王金玉^[9]利用全基因组基因敲除的猪源gRNA文库及高通量基因筛选技术筛选并在细胞水平上鉴定IL20RB、ATP6V0A1和STX10均可显著抑制PRRSV感染。

3 防 治

3.1 生物安全措施

1）严格的隔离制度。引进种猪时要进行严格的检疫和隔离观察，一般隔离期为30 d左右。在此期间定期采集血液样本进行PRRSV抗体检测和核酸检测，确认阴性后才可转入生产区。此外，场内发现病猪应立即隔离到专门的病猪舍进行治疗和管理，防止交叉感染。张杏艳等^[10]采用小单元隔离栏舍研究其对猪场PRRSV和PCV2免疫及免疫退出的防控效果，结果表明免疫退出养殖效果显著，可有效阻断PRRSV的感染，明显提升猪肺脏健康度。

2）加强环境卫生管理。维持猪舍环境的清洁与干燥是保障生猪健康养殖的关键环节。在日常管理中，需建立定时清理机制，每日及时清除粪便及尿液等代谢废物，同时应每周开展至少1次全面且深度的环境整治工作。而在消毒环节，可选用过氧乙酸、氢氧化钠溶液等高效消毒剂，对猪舍地面、墙体、顶棚以及饲养器具等区域进行均匀喷洒消毒，以有效杀灭病原微生物，降低疾病传播风险^[11]。

3.2 疫苗接种

目前已有多种商用疫苗可用于对抗PRRSV，它们基于不同的毒株制成，旨在激发机体产生保护性免疫反应。李红欢等^[12]通过体外同源重组构建猪繁殖与呼吸综合征病毒 (PRRSV) NADC30-like GP3重组腺病毒载体疫苗，能够产生较强的体液免疫，增强机体细胞免疫应答水平，具有良好的免疫原性，为PRRSV新型疫苗的研发提供了参考。陶春豪等^[13]成功构建了1种基于Ⅰ型内含子PIE策略的circRNA制备体系，环化率可达74%，并基于该体系制备了2种PRRSV GP5蛋白circRNA疫苗并验证其能在体外高效表达。此外，选择合适的疫苗需考虑当地流行的病毒类型、农场的具体条件以及预期的使用目的等因素，定期更新疫苗种类并遵循正确的接种程序对于维持良好的防护水平非常重要。

3.3 治疗方法

虽然抗生素不能直接杀死PRRSV，但可以帮助缓解由细菌继发感染引起的并发症状。因此，合理选用广谱抗菌药物并根据药敏试验结果调整用药方案有助于提高疗效同时减少耐药性的产生机会。

此外，研究表明大黄素可以显著抑制PRRSV-1在MARC-145细胞的内化、复制及病毒颗粒释放等生命周期阶段，对PRRSV-1具有良好的体外抗病毒活性，有望成为防控猪繁殖与呼吸综合征的潜在候选药物^[14]。

4 结 语

猪繁殖与呼吸综合征是一种对全球养猪业产生重大影响的病毒性疾病。PRRSV的诊断技术，如实时荧光定量RT-PCR因其高灵敏度和特异性而被越来越广泛地采纳，基因测序的应用也为理解病毒的遗传多样性提供了有力工具。同时，疫苗接种结合严格的生物安全措施被认为是最有效的预防手段。

未来的研究应继续开发更精准快速的现场检测技术，以便及时识别和管理疫情，优化现有疫苗配方，探索新型递送系统以提高免疫效果，逐步降低PRRS给养猪业带来的负面影响，推动养殖业向可持续健康的方向发展。

参考文献

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