鸡传染性喉气管炎临床诊断和防控措施

摘要

鸡传染性喉气管炎（ILT）是由鸡传染性喉气管炎病毒引发的急性、高度接触性呼吸道传染病，病毒可长期潜伏，易受环境应激、免疫不规范、混合感染等因素影响导致疫情反复，临床误诊率较高，严重制约养鸡业健康发展。为完善该病系统化防控技术体系，本文结合国内外研究进展与临床养殖实践，系统综述ILTV的病原学特性、环境抵抗力及流行病学规律，总结急性型与温和型病例的临床症状与典型病理特征。同时重点开展临床鉴别诊断分析，对比分析病毒分离鉴定、血清学检测及分子生物学检测三类实验室诊断技术的优缺点与适用场景。从疫苗免疫防控、生物安全管控、精细化饲养管理及突发疫情处置四个维度，构建综合防控体系，为临床ILT快速精准诊断、科学免疫及高效防控提供理论依据与技术参考，助力降低该病发病率与死亡率，减少养殖经济损失。

关键词

鸡传染性喉气管炎 / ILTV / 临床诊断 / 综合防控 / 疫苗免疫

鸡传染性喉气管炎（infectious laryngotracheitis，ILT）是由鸡传染性喉气管炎病毒（infectious laryngotracheitis virus，ILTV）引发的急性、高度接触性禽类呼吸道传染病。该病于1925年由May和Tittsler在美国北达科他州首次报道，随后在全球各养殖区域广泛传播^[1]，我国自20世纪50年代确诊本病以来，疫情迅速扩散至全国规模化及散养鸡场，给养鸡产业造成巨大的经济损失^[2]。张翼等^[3]研究表明，国内鸡群仍有高致病力的ILTV毒株流行，进一步加大了疫病防控压力。ILTV可在鸡体内形成长期潜伏感染，加之疫苗毒株毒力返强、野毒变异、多病原混合感染及基层养殖场防控体系不完善等因素，导致本病临床误诊、漏诊频发、疫情反复，现已成为养鸡生产中亟待解决的呼吸道疫病防控难题。当前国内相关研究多集中于单一诊断技术或单项防控措施，缺少集临床鉴别、实验室确诊、全流程防控于一体的系统性技术方案。为此，本文结合国内外研究成果与一线养殖实践，系统综述 ILTV 病原学特性、流行病学、临床症状与病理变化，归纳各类诊断技术的应用特点，并从疫苗免疫、生物安全、饲养管理、疫情处置四个方面构建综合防控体系，旨在为养鸡场实现ILT 早发现、早确诊、早处置提供理论参考与技术支撑。

1 病原简介

鸡传染性喉气管炎病毒（ILTV），又称鸡α疱疹病毒1型^[4]，属于疱疹病毒科α疱疹病毒亚科，为有囊膜的双链DNA病毒，病毒粒子呈球形，直径约为150~200 nm，具备典型疱疹病毒形态结构。ILTV对外界环境抵抗力偏弱，对温度、酸碱环境、脂溶剂及常规消毒剂均高度敏感。病原在55 ℃条件下作用15 min可完全灭活，37 ℃环境中存活不超过48 h，4 ℃可存活7~14 d，-20℃可保存数月至数年，-80℃超低温环境下可长期维持感染性。

该病毒耐受pH范围为5.0~9.0，环境pH低于3.0或高于11.0时可快速失活。乙醚、氯仿等脂溶剂可破坏病毒囊膜使其灭活，福尔马林、过氧乙酸、次氯酸钠、碘伏等常用消毒剂作用5~10 min，即可有效杀灭病毒。在痰液、气管分泌物、粪便等有机物保护下，病毒存活时间可延长2~3倍，在室温干燥的垫料、笼具及饮水器具表面可存活1~2周，此外，紫外线照射10~20 min即可丧失其感染能力。

2 流行病学

本病主要传染源为发病鸡、隐性感染鸡及康复带毒鸡。ILT以呼吸道飞沫传播为核心途径，病鸡咳嗽、打喷嚏排出的含毒飞沫可通过呼吸道黏膜造成健康鸡感染，同时可通过病鸡直接接触、污染器械、人员衣物等媒介实现间接传播，还可以通过种蛋垂直传播。ILTV宿主特异性较强，自然感染仅发生于鸡，各日龄、品种鸡均易感，其中120~300日龄产蛋成年鸡易感性最高，整体表现为蛋鸡高于肉鸡、地方品种鸡高于引进品种鸡。该病流行具有显著季节性，高发时段为每年的11月至次年4月冬春季节。

3 临床症状

依据感染毒株毒力强弱及鸡群免疫状态，鸡传染性喉气管炎临床主要分为急性型和温和型两类，其中急性型多由强毒株感染引发，中等毒力或弱毒株感染常表现为温和型症状。

3.1 急性型

急性型病例主要发生于成年鸡，潜伏期3~14 d，多为6~12 d。发病初期，鸡群精神萎靡、采食量降低、饮水量增多，伴随轻微咳嗽、打喷嚏等呼吸道症状。随着病情加重，病鸡精神沉郁，羽毛蓬乱、缩颈、闭眼、不愿站立、食欲废绝，同时出现明显呼吸困难、剧烈咳嗽，常咳出带血黏液或血凝块，为该病特征性临床症状。部分病鸡可见眼睑肿胀、流泪，眼结膜充血、水肿甚至出血。产蛋鸡发病后产蛋量急剧下降，严重时完全停产。急性型病程通常为3~7 d，鸡群发病率可达70%~100%，常规毒株感染死亡率可达10%~50%，高致病力毒株感染死亡率可超70%^[1]。

3.2 温和型

温和型病例多见于雏鸡、青年鸡及免疫鸡群，或受到中等毒力毒株或弱毒株感染的鸡，潜伏期10~14 d，病程1~2周，整体死亡率极低。发病鸡只表现为精神萎靡、采食下降、羽毛蓬松，间歇性出现咳嗽、打喷嚏等轻微呼吸道症状。随着病情的发展，鸡群呼吸不畅，咳嗽，双侧眼睑轻微肿胀、流泪，眼结膜充血，眼部浆液性分泌物增多。青年鸡与产蛋鸡仅出现小幅产蛋下滑，基本无软壳蛋、畸形蛋等异常情况。该型发病率可达50%~80%，但死亡率多低于5%，部分鸡群死亡率可低于1%^[4]。

4 病理变化

ILTV病鸡的病变主要集中在喉头、气管和支气管，其中喉头和气管的特征性病变是本病临床诊断的重要依据。病鸡喉头明显肿胀、充血，黏膜表面出现弥漫性出血点和出血斑，重症病例喉头黏膜坏死、脱落，表面覆盖淡黄色或灰白色纤维素性假膜。气管黏膜增厚、水肿、大面积出血，管腔内蓄积大量血性黏液、血凝块及纤维素性渗出物。坏死黏膜与渗出物交织形成的假膜堵塞气管管腔，为本病特征性病理变化。此外，病鸡多伴随眼结膜充血、水肿、出血，眼睑肿胀，眼内蓄积大量的浆液性或脓性分泌物。肺组织可见轻度充血、水肿，肝脏轻微充血肿大，脾脏质地变软。产蛋鸡还表现为卵巢充血水肿、卵泡变形破裂，输卵管黏膜充血水肿，分泌物异常增多。

5 诊断方法

结合流行病学特征、临床症状及典型病理变化可对ILT做出初步诊断，最终确诊需依托实验室检测。同时，因该病临床症状与多种鸡呼吸道疫病存在交叉，需做好鉴别诊断，避免临床误诊、漏诊。

5.1 临床鉴别诊断

ILT需与鸡传染性支气管炎（IB）、鸡新城疫（ND）、高致病性禽流感（HPAI）、鸡支原体病（MG）、鸡传染性鼻炎等疫病区分。①ILT与鸡传染性支气管炎（IB）均有呼吸道症状、产蛋下降。IB以喘鸣、喷嚏、流鼻液为突出特征，蛋鸡多见壳变白、畸形蛋、沙皮蛋，无咳血及喉头弥漫性出血病变。②ILT与鸡新城疫（ND）均有呼吸道症状、精神沉郁、产蛋骤降症状。ND发病急、死亡率高，伴随扭颈、瘫痪等神经症状，存在典型消化道出血病变。③ILT与高致病性禽流感（HPAI）均会出现急性死亡、呼吸道症状。HPAI呈急性暴发性发病，病鸡鸡冠发绀、脚鳞出血，伴随多脏器败血症损伤，而ILT无全身病变。④ILT与鸡支原体病（MG）都会表现出慢性呼吸道症状、眼肿、流泪。MG为慢性病程，以气囊炎、心包炎为典型病变，无气管出血和血痰症状，且对抗生素治疗敏感。⑤ILT与传染性鼻炎（IC）都会表现为颜面肿胀、流泪、呼吸道症状。IC主要表现为鸡群颜面浮肿、流涕，无咳血及气管出血症状，抗菌药物治疗效果显著，可与ILT精准区分。

5.2 实验室诊断

1）病毒分离鉴定。病毒分离鉴定是ILT确诊和毒株分型的经典检测方法，也是疫病诊断的可靠依据。临床采集发病鸡喉头、气管黏膜及分泌物制备待测样品，接种于9~11日龄SPF鸡胚的尿囊腔或绒毛尿囊膜，接种剂量为0.1~0.2 mL/枚，后续开展病原鉴定。该方法检测结果准确、特异性高，适用于疫情确诊、毒株分型与新毒株鉴定，但检测周期长，对样品质量和实验室操作条件要求较高，不适用于快速筛查。

2）血清学诊断。血清学检测方法包括中和试验与ELISA检测。其中，中和试验特异性强，可精准检测鸡群ILTV中和抗体，适用于鸡群抗体水平精准测定及疫苗效力评价，但该方法操作流程复杂、检测效率偏低。ELISA技术操作简便、检测快速、成本低廉且易标准化，可批量检测鸡群特异性抗体，广泛应用于流行病学调查与免疫监测。郭鹏宇等^[5]建立的ILTV gG蛋白间接竞争ELISA检测方法，灵敏度高、特异性强、重复性好，进一步优化了该病血清学检测技术。ELISA虽适合大规模抗体筛查与免疫效果评价，但无法区分鸡群抗体来源于疫苗免疫或野毒感染。

3）分子生物学诊断。分子生物学诊断常用的方法包括聚合酶链反应（PCR）、核酸探针杂交等。PCR是当前常用的分子生物学检测手段，可快速扩增ILTV特异性基因片段，检测出微量病毒核酸，具有快速、灵敏、特异的特点。核酸探针杂交技术特异性优异，可精准检测病毒基因组DNA。冯婉莹等^[6]建立的重组酶介导等温扩增荧光检测技术，检测效率高于PCR方法，适配早期筛查。整体而言，分子生物学检测方法精准、高效，但对试验设备与操作人员的专业技术有一定要求。

6 防控措施

ILTV具有潜伏感染特性，易被应激激活，导致反复流行，临床防控难度较大。生产中从疫苗免疫、生物安全、饲养管理和疫情处置四个方面构建综合防控体系，有效降低ILT的发病与流行风险。

6.1 疫苗免疫防控

科学疫苗免疫是防控ILT的核心措施，目前临床常用疫苗主要包括弱毒活疫苗、灭活疫苗及新型基因工程疫苗。弱毒疫苗具有免疫起效快、保护周期长、接种便捷、成本较低的特点。免疫后7~10 d即可产生有效抗体，保护期可达6~12个月。灭活疫苗安全性高，不存在病毒排毒与毒力返强风险，适用于雏鸡、产蛋鸡及免疫抑制鸡群，但仅诱导体液免疫，保护效果相对较弱，免疫持续期仅3~6个月，且需肌肉注射，成本较高。鸡场常规免疫为3周龄点眼首免，10~12周龄加强免疫^[7]。新型疫苗中，表达ILTV gB基因的重组鸡痘疫苗可提供良好免疫保护^[8]。

不同免疫途径的保护效果差异显著。点眼、滴鼻可精准靶向呼吸道与眼结膜黏膜，与ILTV自然感染途径一致，保护效果可靠，仅出现短暂轻微眼肿、流泪。饮水免疫操作简便、适合大群免疫，但ILTV在水环境中易失活，易造成鸡群免疫不均、抗体水平参差不齐，是临床免疫失败的主要原因。刺种免疫安全性高，无呼吸道不良反应，不与其他疫苗干扰，但仅适用于重组载体疫苗，免疫起效速度弱于传统弱毒苗。点眼免疫后2~5 d出现的轻微眼肿、流泪多为正常免疫反应，可在3~5 d自行消退。若首免日龄过早、鸡群处于亚健康或免疫抑制状态，易出现轻微呼吸道症状；疫苗毒株偏强时可能出现气管出血、死亡率升高的异常现象。

ILT免疫失败最主要的原因是免疫途径错误，例如采用饮水免疫，导致免疫覆盖率不足50%。当疫苗毒返强、流行毒变异或在田间多次传代后毒力回升时，可能出现疫苗毒与野毒重组，导致现有疫苗保护力下降。此外，疫苗保存与使用不当也是常见原因：ILTV对温度极敏感，反复冻融、阳光直射，均可导致病毒失活。

6.2 生物安全防控

生物安全体系是阻断ILTV传播、净化场区疫情的基础。鸡场需严格执行全进全出饲养制度，严禁不同日龄鸡群混养，隔离康复带毒鸡与易感鸡群，常规空舍休整不少于15 d，疫区空舍时间延长至21 d。空舍消毒严格按照清除有机物、烧碱浸泡、火焰烧灼、喷雾消毒、密闭熏蒸标准化流程开展，采用氢氧化钠、过氧乙酸、次氯酸钠等消毒剂，配合福尔马林密闭熏蒸24 h，彻底清除环境残留病毒。引种鸡群需核查免疫档案并完成病原与抗体检测，隔离饲养30 d无异常后方可混群。日常选用低刺激性消毒剂开展带鸡消毒，根据养殖阶段合理调整消毒频次，并控制消毒雾滴粒径，避免损伤鸡群呼吸道。同时严格规范人员、车辆、物资入场管理，全面切断间接传播途径。

6.3 饲养管理

精细化饲养管理可增强鸡群抗应激能力与抗病力，减少潜伏病毒活化导致的发病。养殖过程中需根据日龄合理控制饲养密度，雏鸡20~25只/m²、青年鸡10~12 只/m²、产蛋鸡4~5 只/m²，同时降低舍内粉尘含量，优化通风与环境管控，合理调节冬夏季通风模式，将氨气浓度控制在 0.017 mg/m³以下，维持18~25 ℃、相对湿度60%~70%的适宜饲养环境，减少冷热应激诱发疫情的风险。尽量减少转群、断喙、换料等应激操作，免疫前后补充维生素C与电解多维，提升鸡群抗应激水平。同时严格保障饲料与饮水质量，避免霉菌毒素诱发免疫抑制，稳定鸡群整体抗病能力。

6.4 疫情处置

发现疑似ILT病例后，需立即隔离封锁发病区域，加强全场消毒，对病死鸡及污染物料开展规范化无害化处理。疫情处置以缓解呼吸道症状、降低应激、控制继发感染为核心，通过加强通风、降低饲养密度、补充多维电解质等方式改善养殖环境，对喉头假膜堵塞的重症病鸡可谨慎剥离假膜，缓解窒息症状。发病鸡群气管黏膜受损后易继发细菌感染，是死亡增多的主要原因，可选用多西环素、泰乐菌素等敏感药物控制继发感染。临床辅以清热宣肺、利咽化痰类中药制剂对症治疗，组方为薄荷、紫苏、桔梗、桂枝、杏仁各25 g，陈皮、甘草、麻黄各30 g，黄连、贝母、百部、芝麻各40 g，水煎取汁供100只鸡1日混水饮服^[9]，连用3~5 d，可有效缓解呼吸道症状，可与抗菌药物间隔给药。岳自鹏等^[10]通过治疗试验确定板蓝根、紫草和鱼腥草组成的复方中药提取液能有效缓解病鸡的传染性喉气管炎临床症状。中西医结合疗法可显著提升该病综合治疗效果^[11]。同时对场内假定健康鸡群开展紧急点眼免疫，快速建立免疫屏障，遏制疫情扩散。

7 结 语

鸡传染性喉气管炎是危害养鸡业的重要急性呼吸道疫病，受病毒潜伏感染特性、不规范免疫、环境应激及混合感染等因素影响，临床易误诊漏诊、防控难度较大。通过优化疫苗免疫程序与接种途径、完善场区生物安全体系、强化饲养管理及构建 “隔离、消毒、控继发、中药辅助、紧急免疫”的综合处置模式，弥补了传统单一防控方式的局限性。ILT防控需以精准诊断为前提、规范免疫为核心、生物安全为保障、科学管理为基础，实施综合防控策略，实现早识别、早确诊、早处置，有效降低发病率与死亡率，保障养鸡业健康稳定发展。

参考文献

[1] 王若琪，赵宏敬.鸡传染性喉气管炎分子流行病学与检测方法研究进展[J].中国动物传染病学报，2025，33(6)：191-199.

[2] 高昕，罗园园，杨慧明，等.1株鸡传染性喉气管炎病毒的基因组特征与致病性[J].畜牧兽医学报，2022，53(4)：1298-1302.

[3] 张翼，王晨燕，杨骁，等.鸡传染性喉气管炎病毒WF03株关键抗原基因和毒力基因的遗传演化与致病性分析[J].畜牧兽医学报，2023，54(8)：3435-3444.

[4] 袁辉，刘丹，刘敏，等.鸡传染性喉气管炎病毒分离鉴定及遗传进化分析[J].动物医学进展，2025，46(3)：57-63.

[5] 郭鹏宇，赵妍，刘胜旺.鸡传染性喉气管炎病毒gG蛋白间接竞争ELISA方法的建立及初步应用[J].中国预防兽医学报，2023，45(7)：704-709.

[6] 冯婉莹，王转转，刘一宁，等.传染性喉气管炎病毒RAA检测方法的建立[J].中国兽医学报，2025，45(2)：212-218.

[7] 李秋花.鸡传染性喉气管炎的危害和防控措施[J].养殖与饲料，2022，21(9)：122-124.

[8] 许霄，李诗，他蕾，等.表达传染性喉气管炎病毒gB基因的重组鸡痘病毒的免疫效力评价[J].中国兽医科学，2022，52(6)：729-735.

[9] 周剑宏.鸡传染性喉气管炎诊断及中西药防治措施[J].养殖与饲料，2024，23(1)：97-99.

[10] 岳自鹏,赫英辉,郝淋耀,等.复方中药提取液对鸡传染性喉气管炎的治疗作用研究[J/OL].中国家禽,1-9[2026-04-09].

[11] 秦艳红，徐国富，胡水亮.鸡传染性喉气管炎的中西医结合治疗与综合防控[J].畜牧业环境，2026(2)：129-130.