0 引 言
汞是毒性最大的重金属之一,不能被生物降解,而且可在生物体中积累。据报道,即使微量的汞也会对人体的肾脏
[1]、肺
[2]、胃肠道
[3]和神经系统
[4~7]造成损害。汞在自然界最稳定的存在形式是二价汞离子(Hg
2+),目前Hg
2+造成的汞污染仍然是人们严重关切的问题。目前,测定Hg
2+的方法主要包括原子荧光光谱
[8]、气相色谱
[9]、电感耦合等离子体质谱
[10,11]、原子吸收光谱
[12]和冷气相汞分析
[13],或者几种方法联用
[14,15] 等。在这些分析方法中,原子荧光光谱、电感耦合等离子体质谱及冷气相汞分析需要昂贵的实验装置,气相色谱需要较复杂的前处理过程,原子吸收光谱灵敏度不高且重复性差,均不适合Hg
2+的常规分析。分子荧光光谱法是利用荧光分子与目标物作用后,荧光信号发生显著变化来对目标物进行定性或者定量分析的方法,具有灵敏度高、检出限低、响应速度快、样品消耗少、信噪比高等优点
[16],已广泛应用于有机小分子
[17~19]、有机大分子
[20]及无机离子
[21~23]等的分析与检测。
氧化石墨烯(GO)是一种亲水性物质,在水中有良好的分散性,由于其独特的物理和化学性质受到了广泛关注
[24]。GO具有大的比表面和丰富的表面官能团,可利用π-π堆积作用对单链DNA(ssDNA)产生较强的吸附。另外,GO是一种良好的荧光共振能量转移(FRET)受体,能对荧光染料的荧光产生猝灭作用,且具有较宽的荧光猝灭范围
[25],已广泛应用于医学成像和生物传感器
[26]等领域。相对于传统的有机猝灭基团而言,GO对荧光的猝灭效果更好,基于GO作猝灭剂建立的检测方法荧光背景信号及检出限均更低
[27,28]。
近年来,随着核酸技术的发展,基于核酸荧光探针在检测金属离子,特别是在有毒重金属方面得到了广泛的应用
[29~31]。据报道,Hg
2+能与胸腺嘧啶(T碱基)形成稳定的T-Hg
2+-T结构
[32],因此基于含T碱基的核酸荧光探针用于检测Hg
2+的方法引起了国内外科研工作者的关注
[33~35]。这类方法选择性高,特异性强,共存离子对检测结果干扰小,检测结果准确可靠。但目前这些方法仍存在荧光信号单一,响应不灵敏等缺点。
本文基于GO、两种不同染料标记的富含T碱基的单链DNA,结合核酸染料SYBR Green Ⅰ(SG-Ⅰ),构建了能特异性识别Hg2+的三色荧光探针,并建立了一种快速、高效、高灵敏地定量检测水体中Hg2+的方法。与已报道的方法相比,该方法主要有两个优点:一是该方法利用GO超高的荧光猝灭效率以及多色荧光同时响应,在降低荧光背景信号的同时,显著提高了输出的响应信号,提高了检测方法的灵敏度,降低方法的检出限;二是3种染料(TAMRA、Cy-5和核酸染料SG-Ⅰ)的斯托克斯(Stokes)位移相差很小,3种染料的荧光信号可以通过同步荧光扫描法一次扫描同时获得,既节约了检测时间,也可以避免散射光对检测的干扰。
1 实验部分
1.1 仪器与试剂
体系荧光光谱由RF-5301PC型荧光光谱仪(Shimadzu公司)采集,溶液pH值由PHS-3C型pH计(INESA公司)测定。
Hg(NO3)2为优级纯,其余化学试剂均为分析纯,购自国药集团化学试剂有限公司;核酸染料SG-Ⅰ购自上海瑞安生物技术有限公司;GO购自中科院成都有机化学研究所。TAMRA标记的含多个T碱基的单链DNA(PT)及Cy-5标记且与PT部分互补链(PC)均由上海生工生物技术有限公司合成,其核苷酸碱基序列如下:
PT:5´-TAMRA-(CH2)6-GTC TCG TTG GCT CCG TCG C-3´
PC:5´-Cy-5-(CH2)6-GCG TCG GTG CCT ACG TGA C-3´
自来水样取自湖北民族大学新校区工程实训中心实验室,天然矿泉水取自湖北省恩施市龙洞河,池塘水样取自湖北民族大学校园内池塘。自来水取样时,先放水5 min再进行取样,天然矿泉水和池塘水均使用聚四氟乙烯材质的简易采水器在水深20 cm处采集。采集完成后,水样带回实验室冷藏保存。
1.2 样品制备
将PT和PC用0.1 mol/L的Tris-HNO3缓冲溶液(pH 8.0,含60 mmol/L NaNO3)配制成浓度为2.0×10-7 mol/L的储备液。核酸染料SG-Ⅰ浓缩液用Tris-HNO3缓冲溶液稀释10 000倍得到SG-Ⅰ工作液,置于4 ℃条件下保存。Hg(NO3)2用HNO3酸化的蒸馏水配制成不同浓度的溶液备用。分别取PT、PC储备液各50 μL置于离心管中,加入50 μL配制好的Hg(NO3)2溶液,混合均匀,在35 ℃恒温反应12 min。向离心管中加入10 μL 0.5 mg/mL GO和50 μL SG-Ⅰ工作液,再补充缓冲溶液至总体积为500 μL,混合均匀,在室温下孵育5 min后转移至石英比色皿中进行荧光检测。所有实验中,除注明外,PT和PC浓度均为2.0×10-8 mol/L,SG-Ⅰ加入量为50 μL,Hg2+浓度为5.0×10-8 mol/L。
1.3 实际水样的处理与检测
水样中的有机物及悬浮物易与汞结合,从而干扰汞的检测。因此,在检测之前需要对水样进行消解,以破坏有机物及悬浮物,使其释放出汞,便于汞的准确检测。具体步骤为:准确吸取20 mL预处理后的水样于消解罐中,加入约10 mL无汞蒸馏水,再依次加入1.5 mL浓H2SO4、1.5 mL HNO3溶液(1+1)、2 mL KMnO₄溶液(50 g/L)、2 mL K2S2O8溶液(50 g/L)。然后将消解罐置于沸水浴加热30 min,冷却至室温。在测定前,向消解液中缓慢加入盐酸羟胺溶液,边加边振荡,直至溶液透明,然后用0.45 μm滤膜过滤。将滤液转移至50 mL容量瓶中,用1%的硝酸溶液定容,摇匀待测。
水样预处理完成后,将待测溶液按1.2方法处理,采用同步荧光分析法进行检测。为了使3种染料同时获得较好的荧光信号,检测时将同步荧光分析的波长间隔(∆λ)设置为22 nm,激发及发射狭缝宽度均设置为10 nm。
2 结果与讨论
2.1 检测原理
基于GO及染料标记的核酸三色荧光探针定量检测Hg
2+的原理见
图1。两种荧光染料TAMRA和Cy-5分别标记在含有多个T碱基错配且部分互补的ssDNA的5'端(PT及PC)。在没有Hg
2+存在时,PT及PC通过π-π堆积作用被吸附在GO表面,TAMRA、Cy-5与GO靠近,其荧光通过FRET的方式被GO猝灭,荧光信号都很弱。此时,SG-Ⅰ被吸附在GO表面或游离在溶液中,荧光信号也很弱。当体系中存在Hg
2+时,PT及PC通过T-Hg
2+-T结构特异性结合形成双链DNA,从而脱离GO的表面,TAMRA和Cy-5远离GO,其荧光信号恢复;与此同时,SG-Ⅰ与双链DNA结合,其荧光信号显著增强。
在该体系中,3种染料的Stokes位移(最大激发波长和最大发射波长之间的间隔)分别为ΔλSG-Ⅰ=23 nm,ΔλTAMRA=23 nm,ΔλCy-5=21 nm,它们的Stokes位移很接近,但最大发射波长间隔距离较大(SG-Ⅰ、Cy-5及TAMRA的最大发射波长分别为525、580、672 nm),因此采用同步荧光分析法即可同时得到3种染料互不重叠的荧光信号。根据TAMRA、Cy-5及SG-Ⅰ荧光强度增加的程度即可对Hg2+进行定量分析。
2.2 方法可行性分析
图2展示了不同浓度Hg
2+对应的同步荧光光谱。结果表明,在没有Hg
2+的情况下,3种染料所对应的荧光信号都很弱;在Hg
2+存在的情况下,3种染料所对应的荧光信号都显著增强,且随着Hg
2+浓度的增大,荧光强度也呈比例增加。上述实验结果表明,本文所设计的三色荧光探针用于检测Hg
2+的方案是可行的。
2.3 GO浓度的选择
加入GO的目的是将未反应的PT和PC的荧光猝灭,GO的浓度会影响荧光猝灭的效果。因此,考察了不同浓度的GO对PT和PC的荧光猝灭情况,结果如
图3所示。当体系中Hg
2+浓度为5.0×10
-8 mol/L,PT和PC的浓度均为2.0×10
-8 mol/L,GO浓度在0~10 μg/mL时,TAMRA和Cy-5的荧光强度均随着GO浓度的增加而逐渐降低;当GO浓度大于10 μg/mL时,TAMRA和Cy-5的荧光强度都很弱,且荧光信号趋于稳定,说明此时TAMRA和Cy-5的荧光被完全猝灭。因此,本研究中GO浓度选择为10 μg/mL。
2.4 反应时间对检测结果的影响
PT、PC与Hg
2+之间的反应需要一定的时间,反应时间过短可能会造成PT、PC与Hg
2+之间结合不充分,反应时间过长可能会使DNA双链分解,也可能造成染料的荧光量子产率降低。考察了体系的反应时间对检测结果的影响。结果(
图4)表明,3种染料的荧光强度在3~12 min范围内随着反应时间的增加而增强,当反应时间继续增加时,3种染料的荧光强度均略有下降。因此,本实验最适宜的反应时间为12 min。
2.5 反应温度对检测结果的影响
温度能够影响PT、PC与Hg
2+的反应速率及双链DNA的存在形态。考察了体系的反应温度对检测结果的影响。结果(
图5)表明,当温度低于35 ℃时,3种染料的荧光强度均随着温度的升高而升高;当温度高于35 ℃时,3种染料的荧光强度均出现快速下降。这主要是因为温度较低时,温度的升高可以加快化学反应速率,但当温度超过35 ℃时,双链DNA发生裂解,导致荧光信号显著降低。因此,本实验选择的反应温度为35 ℃。
2.6 pH值对检测结果的影响
缓冲溶液的pH值会对检测结果产生影响,主要表现在:一是对PT、PC与Hg
2+之间的反应(形成双链DNA)产生影响;二是对3种染料的荧光量子产率产生影响;三是对Hg
2+的水解产生影响(Hg(OH)
2的溶度积常数
Ksp=3.0×10
-26,本实验中Hg
2+检测的最大浓度为5.0×10
-8 mol/L,在pH>9.11时会产生沉淀)。考察了缓冲溶液的pH值对检测结果的影响。结果(
图6)表明,缓冲溶液的pH值在7.1~8.0之间时,3种染料的荧光强度均随着pH值的增大而增大;当缓冲溶液的pH>8.0时,它们的荧光强度都随着pH值的增大而逐渐减小。因此,本实验选择缓冲溶液的pH值为8.0。在此条件下,PT、PC与Hg
2+既可形成较稳定的双链DNA,又不会产生沉淀,检测效果最好。
2.7 离子强度对检测结果的影响
由于单链DNA分子本身带有负电荷,溶液中离子强度的增加可以中和DNA表面的负电荷,有利于双链的形成。通过加入NaNO
3改变体系的离子强度,结果(
图7)表明,NaNO
3的浓度在0~60 mmol/L范围内时,随着NaNO
3浓度的增加,3种染料的荧光强度都在增强;当NaNO
3浓度继续增加时,3种染料的荧光强度趋于稳定。这主要是因为,在较低离子强度下,PT和PC表面都带有一定的负电荷,它们与Hg
2+反应速度相对较慢;随着离子强度的增加,PT和PC表面的负电荷逐渐被中和,有利于双链的形成,因此它们与Hg
2+的反应速率增加;而较高的离子强度使形成的DNA双链更稳定。因此,本实验选择的NaNO
3浓度为60 mmol/L。
2.8 工作曲线及检出限
在最优实验条件下,考察了3种染料的荧光强度与Hg
2+浓度之间的关系。
图8(a)为不同Hg
2+浓度所对应的SG-Ⅰ、TAMRA与Cy-5的同步荧光光谱。结果表明,Hg
2+浓度在一定范围内,三种荧光染料的荧光强度均随着Hg
2+浓度的增加而增加。当Hg
2+的浓度在1.0×10
-9~5.0×10
-8 mol/L范围内时,3种染料SG-Ⅰ、TAMRA与Cy-5的荧光强度(
ΔFi =
Fi -
F0,
Fi 为样品的荧光强度,
F0为空白对照的荧光强度)与Hg
2+浓度(
c)之间均具有良好的线性关系,见
图8(b)(c)(d),其拟合的回归方程分别为:
ΔF1=16.43c+0.45(R2=0.995)
ΔF2=17.72c+7.74(R2=0.990)
ΔF3=19.55c+42.21(R2=0.998)
其检出限分别为3.0×10
-10、3.5×10
-10、2.7×10
-10 mol/L。另外,
图8(e)显示,3种染料荧光强度总的变化值(
ΔF)与Hg
2+浓度之间同样具有良好的线性关系,其拟合的回归方程为
ΔF=55.19
c+37.39(
R2=0.999),检出限为1.1×10
-10 mol/L。从上述结果可以看出,利用3种染料总的荧光强度对Hg
2+进行定量检测,可以显著提高检测的灵敏度、降低方法的检出限。
2.9 方法的选择性
在优化的实验条件下,考察了水体中常见的金属离子(Ca
2+、Cu
2+、Zn
2+、Mg
2+、Ni
2+、Pb
2+、Co
2+和Cd
2+)对检测方法的影响。结果(
图9)表明,在Hg
2+浓度为5.0×10
-8 mol/L时,其他干扰离子浓度为1.0×10
-5 mol/L 时,Hg
2+所对应的3种染料的荧光强度仍远大于干扰离子的荧光强度,且干扰离子对应的荧光强度趋近于空白溶液对应的荧光强度。这说明在相同实验条件下,水中常见的金属离子对Hg
2+的检测几乎没有干扰,即本方法具有良好的选择性。
2.10 实际样品检测
为了检验本方法在实际样品检测中的应用效果,对实际水样中的Hg
2+进行检测,并通过加标回收实验对方法的准确性进行评价。在自来水(T1~T4)、河水(R1~R4)和池塘水(P1~P4) 3种不同的水样中,分别添加不同浓度的Hg
2+,消解后,再利用本方法对Hg
2+的浓度进行测定,并计算加标回收率,结果如
表1所示。自来水、河水和池塘水中Hg
2+浓度分别为1.03、1.81、1.08 nmol/L,均低于国家规定的饮用水中汞含量的标准值0.001 mg/L(4.99 nmol/L)。所有样品检测结果的相对标准偏差(RSD)均在5%以内,表明该方法的重复性较好;所有样品的加标回收率都保持在96.00%~105.00%之间,说明利用该方法进行Hg
2+检测得到的数据准确度高、可靠性强,能够实现对实际水样中Hg
2+的准确检测。
3 结 语
本实验基于GO及两种荧光染料分别标记的单链DNA,结合核酸染料SG-Ⅰ,构建了一种能特异性识别Hg2+的三色荧光探针,并利用该探针建立了一种快速、高效、高灵敏定量检测水体中汞离子(Hg2+)的新方法。该方法操作简单,灵敏度高,重复性及选择性好,准确度高,能应用于实际水样中Hg2+的定量检测。
国家自然科学基金(21465010)
恩施州科技计划项目(XYJ2020000002)
恩施州科技计划项目(D20210019)
恩施州科技计划项目(D20220028)
生物资源保护与利用湖北省重点实验室开放基金项目(PT012207)
生物资源保护与利用湖北省重点实验室开放基金项目(PT012213)
湖北民族大学研究生教育创新项目(MYG2022001)