0 引 言
作为一类新兴的零维碳纳米材料,荧光碳点(carbon dots,CDs)具有尺寸小、化学稳定性高、水溶性好、毒性低的特点,且易于功能化,被广泛用于活细胞成像、生物标记等生物医学领域
[1,2]。电化学发光(electrochemiluminescence, ECL)结合了电化学和化学发光的优点,具有较高的灵敏度、选择性和重现性。其中,联吡啶钌(Ru(bpy)
32+)/三丙胺(tripropylamine, TPrA)共反应体系具有良好的稳定性,已经被广泛地研究
[3,4]。然而,TPrA具有毒性且易挥发,在浓度较高时才能获得稳定的ECL信号,因此需要研发高效、低毒的共反应试剂,以满足Ru(bpy)
32+为发光体的ECL体系在生物分析领域中的应用
[5,6]。Long等
[7]首次报道了CDs作Ru(bpy)
32+阳极ECL体系的共反应剂,发现CDs中的苄基单元为活性位点。CDs能够成为Ru(bpy)
32+ ECL体系的良好共反应剂,归因于CDs良好的溶解性、稳定性和快速的电子转移能力、适合的氧化还原势等特点
[8]。Qi等
[9]发现,与CDs具有类似结构和性能的石墨烯量子点(graphene quantum dots, GQDs)也可以用作Ru(bpy)
32+的共反应剂。他们通过NaBH
4将GQDs上的羰基还原为羟基,得到还原性GQDs(R-GQDs),在用作Ru(bpy)
32+共反应剂时表现出更高的活性,羟基是GQDs作共反应试剂的活性官能团,并以此设计了一种氯代苯酚的ECL猝灭传感器。为进一步提高Ru(bpy)
32+/CDs体系的ECL信号强度,Carrara等
[10]通过将含丰富氨基的CDs与Ru(bpy)
32+通过酰胺键键合,缩短了共反应剂CDs与发光体Ru(bpy)
32+之间的距离,从而形成自增强ECL体系,以达到提高Ru(bpy)
32+/CDs的ECL信号强度的目的。Liu等
[11]基于三(4,4-二羧基联吡啶)氯化钌(Ru(dcbpy)
32+)与CDs之间的氢键作用,也得到了自增强的ECL体系。为进一步促进Ru(bpy)
32+/CDs ECL体系在生物和环境检测方面的应用,提高其发光强度和发光效率,仍需大量的基础研究工作。
多巴胺(dopamine,DA)是生物体内重要的神经传递物质,是中枢神经系统中重要的儿茶酚胺类物质
[12],人体内DA含量失常会引发神经肌肉失调、阿尔茨海默病、精神分裂症等疾病
[13,14],建立简单、快速的DA分析方法对于疾病的预防、诊断及治疗具有重要意义。本文采用电氧化法与化学氧化法制备了羟基含量较低的CDs与羟基含量较高的CDs@H
2O
2,研究CDs表面的羟基含量对CDs作Ru(bpy)
32+共反应剂活性的影响。并在此基础上,构建了一种关于DA的ECL猝灭传感器。
1 实验部分
1.1 主要试剂与仪器
试剂:铅笔芯(2B)购自中国第一铅笔有限公司;联吡啶钌(Ru(bpy)32+)购自苏州纳凯科技有限公司;TPrA购自上海九鼎化学科技有限公司;DA、H2O2(30%)等试剂均购自上海阿拉丁生化科技股份有限公司;实验用水均为超纯水。
仪器:TU-1901型双光束紫外-可见光光度计(UV-Vis,北京普析通用仪器有限责任公司);Avatar 360 型 Fourier 变换红外光谱仪(FT-IR,Thermo Nicolet公司);RF-6000型荧光分光光度计(Shimadzu公司);Escalab 250Xi型X射线光电子能谱(XPS,赛默飞世尔科技公司);MPI-E Ⅱ型全光谱电化学发光检测仪(西安瑞迈分析仪器有限公司)等仪器设备。
1.2 CDs与CDs@H2O2的制备
以2B铅笔芯为工作电极,铂丝电极为对电极,50 mL 0.2 mol/L pH 7.2的磷酸盐缓冲溶液(PBS)为电解液,采用两电极体系制备CDs,施加电势为6 V,电氧化6 h后,收集反应液。以1 000 r/min转速离心30 min,将所得上清液置于透析袋(分子截留量1 000)中透析5 d,浓缩至5 mL,得到棕黄色液体,产率为3.3%,记为CDs。
取上述CDs 2 mL与0.2 mL 30% H2O2于10 mL圆底烧瓶中,在水浴锅中50 ℃搅拌反应30 min,所得溶液在透析袋(分子截留量1 000)中透析3 d,浓缩至2 mL后得到淡黄色溶液,产率为3.1%,记为CDs@H2O2。
1.3 电化学检测
循环伏安(CV)扫描及ECL实验均在电化学发光检测仪上进行,采用粒径为0.3 mm和0.05 mm的Al2O3粉末依次对玻碳电极(GCE,直径3.0 mm)进行抛光,再用超纯水和乙醇交替超声清洗,N2吹干。将电极倒置,以GCE为工作电极、饱和甘汞电极为参比电极,铂丝为对电极构成三电极体系,在扫描速率为50 mV/s、电势扫描范围为+0.2~+1.5 V、光电倍增管高压为900 V,以0.2 mol/L pH 7.2 PBS(分别含有Ru(bpy)32+、Ru(bpy)32+/CDs或Ru(bpy)32+/CDs@H2O2)为电解液,记录电化学信号与电化学发光信号。
2 结果与讨论
2.1 材料表征
2.1.1 TEM分析
利用透射电子显微镜(TEM)测试CDs与CDs@H
2O
2的粒径,其结果如
图1所示。由
图1可知,制备得到的CDs与CDs@H
2O
2都具有较好的分散性,粒径较均一。统计结果表明,CDs与CDs@H
2O
2的平均粒径分别为2.4±0.2 nm与2.5±0.5 nm,表明文中所制备的两种碳质纳米颗粒的粒径接近,CDs被H
2O
2氧化后,粒径变化不大。
2.1.2 FT-IR分析
对CDs与CDs@H
2O
2的结构进行表征,结果如
图2所示。由
图2可知,与CDs相比较,CDs@H
2O
2位于3 440 cm
-1处羟基(—OH)伸缩振动峰更明显,1 610、1 060 cm
-1处吸收峰分别归属为CDs与CDs@H
2O
2表面羰基(C=O)伸缩振动及醚键(C—O—C)伸缩振动,CDs@H
2O
2在1 720 cm
-1与1 160 cm
-1 处具有更加明显的有羧基(C=O)伸缩振动与(C—O)伸缩振动。由此可知,与CDs相比,CDs@H
2O
2表面具有更加丰富的含氧官能团,这归因于在CDs@H
2O
2的制备过程中采用H
2O
2作为氧化剂
[15]。
2.1.3 XPS分析
对CDs与CDs@H
2O
2的组成和结构进行分析,其结果如
图3所示。由
图3(a)可知,CDs与CDs@H
2O
2均主要由C和O两种元素组成,其中位于284.2 eV和534.5 eV的特征峰分别归属为C 1s与O 1s。通过对C 1s和O 1s的峰面积进行积分,采用相对灵敏度因子法得到各目标元素的百分含量
[16],计算得出CDs与CDs@H
2O
2的O/C原子比分别为0.31与0.71。CDs与CDs@H
2O
2的高分辨率C 1s峰可以分解成3个峰(
图3(b)(c)),分别对应于sp
2 碳(C=C)和sp
3碳(C—C)(284.8 eV)、醇碳(C—O)(286.2 eV)及羰基碳(C=O)(288.0 eV)。对CDs与CDs@H
2O
2不同含氧官能团的相对含量进行统计,结果见
表1。与CDs相比较,CDs@H
2O
2中C—O含量增加了7.28%,C=O含量接近。由此可以得出,与CDs相比较,CDs@H
2O
2表面具有更丰富的含氧官能团,其中C—O的含量明显增加。
2.1.4 荧光分析
在300~420 nm范围内,以20 nm幅度改变激发波长,分别测试CDs与CDs@H
2O
2的水溶液在350~700 nm范围内的荧光变化。如
图4所示,CDs与CDs@H
2O
2的荧光发射波长均随激发波长的改变而改变,荧光强度表现出激发光依赖性。CDs与CDs@H
2O
2最佳发射波长均位于452 nm。当激发波长为420 nm时,CDs的发射波长为524 nm,CDs@H
2O
2的发射波长为505 nm。由此可知,与CDs相比较,CDs@H
2O
2在长波长区域发射波长降低。这是由于随着CDs@H
2O
2表面羟基增加,荧光发射波长发生了蓝移
[17,18]。
2.2 电化学分析
图5为Ru(bpy)
32+、Ru(bpy)
32+/CDs及Ru(bpy)
32+/CDs@H
2O
2体系的电化学行为。由
图5(a)可知,在相同实验条件下,GCE在含2.0 μmol/L Ru(bpy)
32+的0.2 mol/L PBS(pH 7.2)中,于1.08 V处出现可逆的氧化还原峰;加入30 ng/mL CDs后,Ru(bpy)
32+/CDs在1.08 V处的还原峰减弱,氧化峰电流增加,说明CDs在Ru(bpy)
32+的电化学氧化还原过程中起到了催化作用
[7];在2.0 μmol/L Ru(bpy)
32+中加入30 ng/mL CDs@H
2O
2后,Ru(bpy)
32+的还原峰几乎消失,氧化峰电流值进一步增加,展现出更好的催化活性。
进一步考察了Ru(bpy)
32+、Ru(bpy)
32+/CDs与Ru(bpy)
32+/CDs@H
2O
2体系的ECL信号。由
图5(b)可知,Ru(bpy)
32+在1.08 V处开始产生ECL信号,在1.18 V处达到最大值,产生的ECL信号较弱;加入CDs后,Ru(bpy)
32+/CDs体系在1.05 V处开始出现ECL信号,在1.18 V处达到最大值,ECL信号强度最大值为71;加入CDs@H
2O
2后,Ru(bpy)
32+/CDs@H
2O
2体系在1.00 V处开始出现ECL信号,在1.18 V处达到最大值,最大值为582,是Ru(bpy)
32+/CDs体系的8.2倍。这说明,CDs作Ru(bpy)
32+共反应剂时,CDs表面的羟基官能团为活性官能团
[19]。
为比较CDs@H
2O
2与TPrA对Ru(bpy)
32+的ECL增强效果,向含2.0 μmol/L Ru(bpy)
32+的PBS溶液中各加入30 ng/mL(约0.03 μmol/L)CDs @H
2O
2与2.0 μmol/L TPrA,分别测试Ru(bpy)
32+/CDs@H
2O
2与Ru(bpy)
32+/TPrA的ECL信号。由
图5(c)可知,在具有相同ECL信号强度时,TPrA浓度是CDs@H
2O
2浓度的66.7倍。
为考察Ru(bpy)
32+/CDs@H
2O
2体系的稳定性,在电势0.2~1.5 V范围内,GCE在含2.0 μmol/L Ru(bpy)
32+与30 ng/mL CDs@H
2O
2的PBS中连续扫描20圈,Ru(bpy)
32+/CDs@H
2O
2体系ECL信号的相对标准偏差(RSD)为1.66%,见
图5(d)。
此外,还考察了Ru(bpy)32+/CDs@H2O2体系长期储存的稳定性,在储存7 d后,ECL信号强度仍保持为初始值的97.4%,这表明所制备的Ru(bpy)32+/CDs@H2O2体系具有良好的稳定性。将3批次的CDs@H2O分别用于Ru(bpy)32+/CDs@H2O2 ECL体系的构建,在相同条件下,ECL信号值的相对标准偏差(RSD)为2.2%。上述结果表明,Ru(bpy)32+/CDs@H2O2体系具有良好的稳定性与重现性,这为其在分析检测中的应用奠定了良好的基础。
2.3 工作曲线
考察了DA对Ru(bpy)
32+/CDs@H
2O
2体系ECL信号的猝灭作用,向含2.0 μmol/L Ru(bpy)
32+与30 ng/mL CDs@H
2O
2的0.2 mol/L pH 7.2的PBS溶液中,加入不同浓度(1.0、1.6、3.8、4.8、7.0、17.0、56.0 μmol/L)的DA,结果如
图6所示。由
图6(a)可知,随着DA浓度的增加,体系Ru(bpy)
32+/CDs@H
2O
2的ECL信号强度逐渐降低,DA对Ru(bpy)
32+/CDs@H
2O
2的ECL信号猝灭程度逐渐增大。根据
图6(b),该猝灭过程符合Stern-Volmer方程
[20],在1.6~56.0 μmol/L范围内,DA浓度与Ru(bpy)
32+/CDs@H
2O
2 ECL的猝灭程度呈良好线性关系,猝灭常数
KSV=2.2×10
5 (mol/L)
-1,线性回归方程为
I0/
I = 0.22
c + 0.01(
I0为体系起始ECL信号强度,
I为加入一定浓度猝灭剂后体系的ECL信号强度,
c(mol/L)为DA浓度),线性相关系数
R=0.998,检出限为0.23 μmol/L(
S/N=3)。与其他CDs用于检测DA的方法相比较(
表2),本文中采用CDs@H
2O
2作Ru(bpy)
32+共反应剂,对DA的检出限与文献[
21]相当,优于文献[
22~
25]的检出限。
2.4 实际样品分析
将Ru(bpy)
32+/CDs@H
2O
2体系用于人血清样品中DA含量的检测,以检验ECL猝灭传感器的实用性。将人血清样品分散于0.2 mol/L pH 7.2的PBS中,采用加样回收法测定样品中多巴胺的浓度,检测结果如
表3所示。Ru(bpy)
32+/CDs@H
2O
2体系的ECL猝灭传感器用于实际样品中DA检测的回收率为98.6%~103.4%,RSD均小于5%。检测结果令人满意,表明此传感器可以用于实际样品中DA含量的检测。
3 结 语
本文以铅笔芯为原料制备CDs与CDs@H2O2,研究了羟基含量对CDs作Ru(bpy)32+共反应剂活性的影响。实验结果表明,与CDs相比较,羟基含量高的CDs@H2O2作Ru(bpy)32+共反应试剂对ECL信号具有更好的增敏作用。基于DA对该体系ECL信号的猝灭作用,构建了关于DA的ECL猝灭传感器,检测方法的线性范围为1.6~56.0 μmol/L,检出限为0.23 μmol/L(S/N=3)。将Ru(bpy)32+/CDs@H2O2体系用于人血清中DA的检测,回收率为98.6%~103.4%。
本文为提高CDs作Ru(bpy)32+共反应剂的活性提供了一种思路,可望促进Ru(bpy)32+/CDs在生物和环境分析领域的应用。
国家自然科学基金(22264014)
湖北省教育厅科学技术研究项目(B2021157)
生物资源保护与利用湖北省重点实验室开放基金(PT012106)
湖北民族大学高水平科研成果校内培育项目(PY22006)
湖北民族大学博士启动基金(MY2015B019)