聚乙二醇‐聚乳酸‐羟基乙酸[(polyethylene glycol‐poly (lactic‐co‐glycolic acid),PEG‐PLGA]是一种新型的药物递送系统,由疏水链段的聚乳酸‐乙醇酸共聚物(PLGA)和亲水链段的聚乙二醇(PEG)组成。PLGA是由乳酸和羟基乙酸聚合形成的,无毒、无刺激性,具有良好的生物相容性,被广泛应用于药物递送系统的研究
[1]。PEG可以增加聚合物的亲水性,有利于提高药物递送系统的水溶性
[2-3]。
亚甲蓝光动力疗法(methylene blue mediated‐photodynamic therapy,MB‐PDT)以亚甲蓝作为光敏剂,亚甲蓝在最佳吸收波长(630~680 nm)光源照射下可通过电子或能量转移与氧气发生Ⅰ型和(或)Ⅱ型反应,其中Ⅰ型反应生成高活性自由基(O
2-、H
2O
2、OH
-)组成活性氧(reactive oxygen species,ROS)混合物,Ⅱ型反应主要生成单线态氧(singlet oxygen,
1O
2)。这些产物均可破坏多种细胞结构,导致不可逆的细胞损伤
[4]。亚甲蓝作为一种阳离子染料,是具有代表性的Ⅱ型光敏剂,易受浓度与pH影响而自发形成二聚体形式,二聚化发生时其
1O
2产率较低
[5]。
MB-PDT已被证实可在体外有效抑制红色毛癣菌,从而用于该菌感染相关甲真菌病的治疗。与口服抗真菌药物不同,MB‐PDT无肝肾毒性等不良反应,人群普遍适用。但目前临床研究中使用MB‐PDT治疗甲真菌病的效果有限且仍具有复发性
[6‐8]。这可能有以下原因:首先,甲板对光敏剂的阻碍性,病变增厚的甲板可导致亚甲蓝药物透过率下降
[9]。其次,真菌生物膜的形成可阻碍亚甲蓝的透过性,真菌生物膜是指真菌微生物群落为了自我保护,分泌细胞外基质,将自身包绕其中而形成的膜样多细胞群体。生物膜的形成使亚甲蓝的渗透受阻,真菌耐药性、致病力增强
[10-11]。此外,亚甲蓝二聚体的形成不利于
1O
2的产生
[4]。最后,真菌细胞内的NAD(P)H使亚甲蓝还原为无光动力活性的无色亚甲蓝,会影响光动力疗法的效果
[5]。
研究
[12]发现PLGA负载的亚甲蓝制剂可增强光动力抗耐甲氧西林金黄色葡萄球菌作用,可有效治疗耐甲氧西林金黄色葡萄球菌感染的伤口,与纳米颗粒对光敏剂的保护及缓释作用有关。使用PLGA负载可保护亚甲蓝并减少其二聚体化,其缓释特性可增加药物浓度,提高药物亲水性。本研究引入亲水性基团PEG,以PEG-PLGA作为亚甲蓝分子的载体,筛选出制备亚甲蓝纳米颗粒的最佳工艺,并初步评价亚甲蓝纳米颗粒体外光动力疗法的抗红色毛癣菌疗效,探讨其作用机制及今后可能应用的方向。
1 材料与方法
1.1 亚甲蓝纳米颗粒的制备与评价
1.1.1 亚甲蓝纳米颗粒的基本制备流程及工艺优化
使用超声复乳法制备纳米颗粒,以亚甲蓝注射液或亚甲蓝水溶液为内水相(w1),以一定量的PEG‐PLGA聚合物溶解于有机溶剂中制成油相(o),将w1加入o中,使用超声细胞破碎仪冰浴下超声振荡后形成初乳,再将初乳加入外水相(w2) 1%聚乙烯醇(polyvinyl alcohol,PVA)水溶液中,冰浴下超声制成预复乳,立即将预复乳加入到0.5% PVA水溶液中,温和磁力搅拌4 h后,使用高速离心机12 000 r·min-1转速下离心10 min,将获得的沉淀用去离子水洗涤3次后离心获得亚甲蓝纳米颗粒,置于4 ℃保存。
采用单因素控制变量法,筛选以下几个关键因素。①设备参数:对比高功率水平超声细胞破碎仪(总功率650 W,宁波SCIENTZ生物科技有限公司,宁波,中国)及低功率水平超声细胞破碎仪(总功率150 W,SONICS‐VC×150,Newtown,美国);探究初乳/复乳功率梯度(40%~100%)及超声间歇模式的影响;②物料配比:考察PEG‐PLGA质量(100~200 mg)、内水相体积(0.25~1 mL)及亚甲蓝浓度(5~20 mg·mL-1)的效应;③溶剂筛选:评估乙酸乙酯/丙酮/二氯甲烷作为油相的适用性,并对比纯水配置与临床注射液的内水相渗透压差异。
1.1.2 亚甲蓝纳米颗粒的质量评价
包封率测定:使用多功能酶标仪测定复乳悬液和离心后上清液的吸光度,根据吸光度与浓度的关系换算为亚甲蓝的浓度。计算公式:包封率=(初始亚甲蓝总量-游离亚甲蓝总量)/初始亚甲蓝总量×100%。物理表征:采用Zetasizer纳米电位粒度仪测定亚甲蓝纳米颗粒的粒径及聚合物分散性指数(polymer dispersity index,PDI)。其中PDI指纳米颗粒粒径分布均匀度,数值越接近0说明纳米颗粒大小越均匀,分散性越好。使用透射电子显微镜(transmission electron microscope,TEM)观察形貌特征。
1.2 光动力疗法体外抑制红色毛癣菌的作用评估
1.2.1 红色毛癣菌菌悬液的制备及光动力处理
菌悬液的制备:使用燕麦培养基将红色毛癣菌(美国菌种保藏中心,ATCC28188)置于28 ℃真菌培养箱中培养1~2周,加入5 mL PBS,用一次性巴斯德移液管轻轻抽吸菌落表面,经纱布过滤1~2次后获得孢子悬液。悬液以3 500 g的离心力离心5 min后重新悬浮,利用血球计数板将菌悬液调节至4×107~7×107 CFU·mL-1。随后接种到RPMI‐1640液体培养基中37 ℃摇床下(转速为210 r·min-1)培养2 d后得到菌丝,用PBS洗涤2次后重悬得红色毛癣菌菌丝悬液。
光动力处理实验设计:使用PBS溶液将亚甲蓝(MB)溶液和MB‐NP悬液分别稀释为4 μg·mL-1,每种药物取3份作为对照。将获取的菌悬液根据处理因素和光照/避光(±光照)进行以下6组处理:PBS±光照、MB±光照、MB‐NP±光照。在1.5 mL试管中混合250 μL菌丝悬液和等体积溶液。所得各组混合液在暗处放置10 min后进行处理。其中光照组使用峰值波长为635 nm的光子治疗仪以固定功率44 mW·cm-2照射10 min,照射时将试管置于距光源5 cm处。非光照组放置在暗处静置。
1.2.2 光动力作用效应测定
直接杀伤效应的测定:通过菌落计数测定抑制率(inhibition rate,IR)=[(B-A)/B]×100%,A为各组处理的活菌落数,B为对照组(本试验中为PBS溶液+无光照组)表面的活菌落数。吸取100 μL混合液进行10倍比稀释后接种至沙堡氏琼脂培养基,28 ℃下培养7 d,对菌落形成单位(colony-forming unit,CFU)计数并拍照。为保证计数的准确性,以每皿20~200 CFU为宜。将计数结果转换为对数10,并进行统计分析。
1O2产生能力的测定:使用9,10‐蒽二基双(亚甲)‐二丙二酸[9,10‐anthracenediyl‐bis (methylene)dimalonic acid,ABDA]作为探针。ABDA与1O2结合后共轭程度下降,表现为378 nm处吸光度的下降。将MB或MB‐NP水溶液与ABDA混合,进行前述处理后使用多功能酶标仪检测,以光照组吸光度较非光照组下降值大小衡量1O2的产生能力。
真菌细胞内ROS的检测:使用ROS试剂盒测定真菌细胞内活性氧水平,用RPMI‐1640稀释,7‐二氯双乙酸荧光素(DCFH‐DA)制成工作液,用于28 ℃培养箱内避光孵育红色毛癣菌30 min,其间每隔3~5 min进行混匀,完成后离心收集并用PBS洗涤2次后重悬,进行前述光动力处理。处理结束后使用多功能酶标仪测定,参数设置为激发光波长488 nm,发射光波长520 nm。荧光值/菌落数(AFU/CFU)使结果标准化,以处理组(MB和MB‐NP处理组)荧光强度增加值/对照组(PBS组)荧光强度增加值作为ROS强度的定量基础。
1.3 统计学分析
使用SPSS 24.0软件进行统计分析。CFU计数数据、ROS水平、1O2产量表示为均数±标准差,采用独立样本t检验进行分析。以P<0.05为差异有统计学意义。
2 结果
2.1 亚甲蓝纳米颗粒制备的最佳工艺
配置10 mg·mL-1的亚甲蓝水溶液0.5 mL作为内水相,称取150 mg的PEG‐PLGA,溶于5 mL的丙酮中制成油相,使油水比为10∶1。以1%和0.5%的PVA水溶液作为外水相。将内水相倒入油相,使用低功率超声破碎仪(总功率150 W)在冰浴下进行超声破碎,设定60%功率,总工作时间1 min(工作2 s、停止2 s),超声形成初乳。将制得的初乳倒入10 mL的1%PVA的外水相中,设定40%功率,总工作时间3 min(工作2 s、停止2 s),冰浴下超声制得预复乳。将预复乳倒入10 mL的0.5%PVA溶液,室温下用磁力搅拌器以290~310 r·min-1转速搅拌3~4 h,挥发油相制得复乳。使用高速离心机将制得溶液在4 ℃、转速12 000 r·min-1下离心10 min,弃上清,加入蒸馏水超声分散,继续离心,重复两次后弃上清,4 ℃冷藏保存备用。
2.2 亚甲蓝纳米颗粒的表征
以最优制备工艺重复试验3次,所得纳米颗粒粒径均在150~250 nm之间,粒径分布图在1~1 000 nm间只有一个峰(见
图1,取log值为1~3),PDI指数为0.14±0.04,包封率为(19.15±1.04)%,所制备的纳米颗粒大小均匀,分散性良好。透射电镜下纳米颗粒大小较为一致均匀,呈规则球形(
图2)。初乳为均匀的深蓝色乳液(
图3A),复乳为均匀一致、稳定不沉淀的乳蓝色乳液(
图3B),离心后获取纳米颗粒,烘干后为蓝色固体颗粒(
图3C)。
2.3 光动力疗法体外抑制红色毛癣菌的作用
2.3.1 光动力疗法对红色毛癣菌的抑制率
菌落计数如
图4所示,PBS光照处理组(
图4D)与PBS避光处理组(
图4A)计数结果无明显差异,MB避光处理组(
图4C)和MB‐NP避光处理组(
图4B)对真菌生长无抑制作用。菌悬液加MB光照处理组(
图4F)表现出真菌生长完全抑制作用(IR>99.99%),菌悬液加MB‐NP溶液光照处理组(
图4E)的真菌生长抑制率仅为(19.18±2.67)%。说明亚甲蓝纳米颗粒光动力抑制真菌作用弱于普通亚甲蓝(
t=7.20,
P=0.002)。
2.3.2 ROS及1O2产量结果
试验结果见
表1,在真菌细胞体系内,亚甲蓝纳米颗粒处理组ROS水平强度值为10.28±0.09,亚甲蓝组为12.24±0.30,亚甲蓝组活性氧产生水平高于亚甲蓝纳米颗粒组(
t=-6.25,
P=0.003)。这说明光照激发时亚甲蓝纳米颗粒对真菌细胞内活性氧水平没有提升作用。在无细胞体系下,亚甲蓝纳米颗粒组活性氧水平强度值为0.22±0.01,亚甲蓝组为0.23±0.01,两组无显著差异(
t=-1.43,
P=0.23)。二者在光照激发时产生的单线态氧水平没有显著差异。
3 讨论
本研究采用超声复乳法制备负载MB的PEG‐PLGA纳米颗粒,通过单因素控制变量法获得最佳参数,所制备的MB‐NP均匀稳定,具有良好的分散性。CFU结果表明,当MB光照组基本实现真菌生长完全抑制时,MB‐NP光照组的真菌生长抑制率仅为(19.18±2.67)%,说明MB‐NP相较MB没有提高反而使真菌抑制率降低。这可能由于PEG‐PLGA的引入在负载亚甲蓝、保护亚甲蓝分子免受破坏的同时,也限制了光照时亚甲蓝所产生的活性氧脱离纳米颗粒,进而减弱了对真菌细胞的杀伤作用。另外,研究中使用的MB浓度为4 μg·mL-1,该浓度下亚甲蓝二聚化程度较低,单位质量PEG‐PLGA所负载的亚甲蓝也较少,故载体对于亚甲蓝分子的抗二聚体化的作用也未能很好地体现。
本研究测定了MB‐NP及MB受光照时,在有无真菌细胞两种体系内产生ROS及1O2的能力,发现二者在数值上均表现为MB-NP低于MB。这说明MB‐NP与MB相比无明显优势,这可能是PEG‐PLGA中存在的官能团会与产生的活性氧发生相互作用,导致活性氧探针无法有效捕获MB受光照后产生的活性氧。另外,PEG‐PLGA可实现药物的缓慢释放作用,通常在控释系统中更能显示优势,由于缺乏光动力效应和光热效应,PEG‐PLGA在即时发生的光动力效应中无增效作用。在真菌细胞体系中,MB-NP光照组产生ROS的能力虽弱于MB光照组,但也说明MB-NP或许能通过真菌细胞壁和细胞膜进入细胞内。
在光动力疗法中,光敏剂进入细胞后会立即与光发生作用,但PEG‐PLGA装载系统的持续释放特性在这一过程中并未起到辅助作用。相反,纳米颗粒上聚集的亚甲蓝分子所产生的活性氧可能与PEG‐PLGA发生反应,导致活性氧无法有效释放,进而降低了光动力抗真菌的效果。基于这些考虑,我们认为有必要进一步深入研究。PEG‐PLGA因其良好的生物相容性和药物释放性能,可作为某些抗真菌药物的载体,实现药物在真菌感染组织中的持续释放。而对于亚甲蓝光动力疗法,我们可以考虑选用那些同时具备光动力效应和光热效应的载体。
本研究首次采用PEG‐PLGA作为光敏剂亚甲蓝的载体,这是一种生物相容性好、亲水性强的聚合物。本研究重点介绍了亚甲蓝纳米颗粒的制备方法和工艺。超声复乳液法可为制备高分子有机化合物纳米颗粒提供参考。实验结果证明PEG‐PLGA纳米颗粒具有良好的稳定性和药物活性保护作用,为生物纳米材料的选择提供了依据。而本研究的局限性在于药物选择过于单一。对于立竿见影的光敏剂药物,有必要选择一些电子传递中间体、具有光动力效应或光热效应的材料。制备的纳米颗粒在抗真菌药物缓释中的作用有待进一步研究。