脑心肌炎病毒(encephalomyocarditis virus,EMCV)是无囊膜的单股正链RNA病毒,属于小核糖核酸病毒科,心病毒属
[1]。EMCV是一种人畜共患病原体,感染后可引起心肌炎、脑炎、生殖障碍和糖尿病等疾病。EMCV基因组长度约为7.8 kb,编码4种结构蛋白(VP1、VP2、VP3和VP4)和8种非结构蛋白(2A、2B、2C、2D、3A、3B、3C和3D),其中衣壳蛋白VP1抗原性最强,与病毒粒子表面的拓扑结构、抗原性、受体吸附及脱壳有关,且与病毒基因组的复制有密切关系
[2]。
三基序蛋白家族(tripartite motif,TRIM)属于E3泛素连接酶家族成员之一,在多细胞真核生物中均有表达,TRIM基因总数与生物进化程度相关,生物进化程度越高,TRIM家族蛋白成员越多。目前,人类表达近80个TRIM家族蛋白成员,小鼠表达64种TRIM家族蛋白
[3]。TRIM家族蛋白N端包括3个保守结构域(RING结构域、1~2个B-box结构域和Coiled-coil(CC)结构域),以及从N端到C端的高度可变的羧基末端结构域,因此TRIM家族蛋白又被称为RBCC蛋白。TRIM21参与信号转导及细胞增殖、分化和凋亡等多种生物学过程,同时还参与蛋白的翻译后修饰和自噬过程,调控宿主的免疫信号通路以及抗病毒免疫应答
[4]。有研究发现,TRIM-21通过多种机制抑制甲型流感病毒
[5]、猪流行性腹泻病毒
[6]、乙型肝炎病毒
[7]和猪繁殖与呼吸综合征病毒
[8]复制。WANG等
[9]研究表明,TRIM家族蛋白在传染性法氏囊病毒吸附、侵入、基因组复制以及病毒释放等阶段发挥作用。目前,TRIM21在EMCV感染免疫细胞过程中的潜在影响尚不明确。本试验探究了TRIM21在EMCV感染小鼠RAW264.7巨噬细胞中的作用和机制,以期为抗EMCV药物靶点的开发提供理论依据。
1 材料与方法
1.1 材 料
1.1.1 细胞、毒株和质粒
EMCV(GenBank登录号:X74312),由西北民族大学生物工程与技术国家民委重点实验室提供。小鼠RAW264.7巨噬细胞、BHK-21细胞、空载体质粒pcDNA3.1、pcDNA3.1-TRIM21等,均由西北民族大学甘肃省动物细胞技术创新中心提供。大肠杆菌感受态细胞Trans 5α,购于北京全式金生物技术股份有限公司。
1.1.2 主要试剂
DMEM高糖培养基、胰蛋白酶,购自兰州百灵生物技术有限公司;胎牛血清、新生牛血清,均购自兰州民海生物工程有限公司;Opti-MEM、LipofectamineTM 2000、BCA蛋白浓度测定试剂盒,购自赛默飞世尔科技公司;无酶无菌水,购自北京索莱宝科技有限公司;Evo M-MLV反转录预混型试剂盒、Evo M-MLV RT-PCR试剂盒,购自湖南艾科瑞生物工程有限公司;TransStart® Top Green qPCR SuperMix,购自北京全式金生物技术有限公司;CCK-8试剂盒,购自上海碧云天生物技术股份有限公司;ECL特超敏发光检测试剂盒,购自深圳市尚唯生物科技有限公司;TRIM21兔单克隆抗体、GAPDH小鼠抗单克隆抗体,购自Abcam公司;JAK1兔抗单克隆抗体、STAT1兔抗单克隆抗体、IRF9兔抗单克隆抗体,购自CST公司;辣根过氧化物酶HRP标记亲和纯化山羊抗小鼠IgG(H+L)、HRP标记亲和纯化山羊抗兔IgG(H+L),购自Jackson Immunoresearch公司;RNAiso plus Total RNA提取试剂、TaKaRa Ex Taq® PCR酶,购自宝日医生物技术(北京)有限公司;Endo-free小提质粒提取试剂盒,购自Omega公司;Mouse IFN-γ ELISA试剂盒,购自酶联生物科技有限公司。
1.2 方 法
1.2.1 小鼠RAW264.7巨噬细胞对EMCV的易感性
用感染复数(multiplicity of infection,MOI)为0.1的EMCV感染RAW264.7巨噬细胞,以未感染细胞为对照组(0 h),分别在病毒感染后3,6,9和12 h收集细胞上清液样本,设置3组重复。采用TCID50法测定细胞上清液的病毒滴度,以BHK-21细胞为阳性对照,绘制RAW264.7巨噬细胞的生长动力学曲线。用MOI为0.1的EMCV感染RAW264.7巨噬细胞,以未感染细胞为对照组(0 h),分别在病毒感染后1,3,6和9 h收集细胞样本,设置3组重复。利用RNAiso plus Total RNA提取试剂提取细胞总RNA,使用Evo M-MLV反转录预混型试剂盒进行反转录。以β-actin为内参基因,采用实时荧光定量PCR(RT-qPCR)法检测EMCV VP1基因mRNA表达水平;利用NP40细胞裂解液提取细胞总蛋白,以甘油醛-3-磷酸脱氢酶(glyceraldehyde-3-phosphatedehydrogenase,GAPDH)为内参蛋白,采用Western Blot法检测EMCV VP1蛋白表达水平。RT-qPCR试验所用引物如下,VP1 Forward序列:5′-TCGGCACCGGGTTCTTTG-CT-3′,VP1 Reverse序列:5′-AATCTTGTCAA-CGGAAGT-GG-3′;β-actin Forward序列:5′-TGGCACCCAG-CACAATGAA-3′,β-actin Reverse序列:5′-CT-AAGTCATAGTCCGCCTAGAAG-CA-3′。
1.2.2 EMCV感染对TRIM21表达的影响
用0.1 MOI EMCV感染RAW264.7巨噬细胞,以未感染细胞为对照组,分别在病毒感染后3,6和9 h收集细胞样本,设置3组重复。以β-actin为内参基因,采用RT-qPCR法检测TRIM21和EMCV VP1基因mRNA表达水平;以GAPDH为内参蛋白,采用Western Blot法检测TRIM21和EMCV VP1蛋白表达水平。RT-qPCR试验所用引物及其序列为:TRIM21 Forward序列:5′-CCTCAGACCACCC-TCCACA-3′;TRIM21 Reverse序列:5′-CAGCCTCATAGTCCACAAAGAT-3′。
1.2.3 TRIM21过表达对EMCV复制增殖的影响
采用脂质体介导法将pcDNA3.1空载体质粒(对照)和TRIM21过表达质粒pcDNA3.1-TRIM21瞬时转染至RAW264.7巨噬细胞,设置3组重复。以β-actin为内参基因,采用RT-qPCR检测TRIM21基因mRNA表达水平;以GAPDH为内参蛋白,采用Western Blot法检测TRIM21蛋白表达水平。以未转染细胞为对照组(CK),采用CCK-8试剂盒检测外源质粒对细胞活力(OD490)的影响。
设置RAW264.7巨噬细胞未接毒对照组(CK)和EMCV接毒组,EMCV接毒组细胞先转染1.0 μg的pcDNA3.1空载体质粒(EV)和不同剂量(0.5和1.0 μg)的pcDNA3.1-TRIM21重组质粒,分别记为pcDNA3.1-TRIM21(0.5 μg)和pcDNA3.1-TRIM21(1.0 μg),然后感染0.1 MOI EMCV。在病毒感染后9 h收集细胞和细胞上清液样本,设置3组重复。以β-actin为内参基因,采用RT-qPCR法检测EMCV VP1和TRIM21基因mRNA表达水平;以GAPDH为内参蛋白,采用Western Blot法检测EMCV VP1和TRIM21蛋白表达水平;采用TCID50法测定各组细胞上清液的病毒滴度。
1.2.4 TRIM21敲低对EMCV增殖的影响
采用脂质体介导法将阴性对照siRNA-NC以及3对siRNA-TRIM21(siRNA1-TRIM21、siRNA2-TRIM21和siRNA3-TRIM21)瞬时转染至RAW264.7巨噬细胞,设置3组重复。以β-actin为内参基因,采用RT-qPCR法检测TRIM21基因mRNA表达水平;以GAPDH为内参蛋白,采用Western Blot法检测TRIM21蛋白表达水平;以未转染细胞为对照组(CK),采用CCK-8试剂盒检测外源质粒对细胞活力(OD490)的影响。
设置未接毒对照组(CK)和EMCV接毒组,接毒组转染siRNA-NC和siRNA3-TRIM21,设置3组重复。在病毒感染后9 h收集细胞和细胞上清液样本,设置3组重复。以β-actin为内参基因,采用RT-qPCR法检测EMCV VP1和TRIM21基因mRNA表达水平;以GAPDH为内参蛋白,采用Western Blot法检测EMCV VP1和TRIM21蛋白表达水平;采用TCID50法测定各组细胞上清液的病毒滴度。siRNA-TRIM21由广州锐博生物科技有限公司设计并合成,siRNA1-TRIM21序列:5′-GGAGCCT-ATGAGTATCGAA-3′;siRNA2-TRIM21序列:5′-CCTGGACACGTTAGATATT-3′;siRNA3-TRIM21序列:5′-GCTCCCTCATTTACACCT-T-3′。
1.2.5 TRIM21对EMCV吸附、侵入和释放的影响
在RAW264.7巨噬细胞中瞬时过表达和敲低表达TRIM21,在病毒吸附试验中,接种3 MOI EMCV并在4 ℃条件下孵育1 h;在病毒侵入试验中,接种2 MOI EMCV并在37 ℃条件下孵育1 h;在病毒释放试验中,接种0.1 MOI EMCV并在37 °C条件下孵育9 h,分别收集细胞和细胞上清液样本。以β-actin为内参基因,采用RT-qPCR法检测EMCV VP1基因mRNA表达水平;采用TCID50法测定细胞内和细胞上清液的病毒滴度。
1.2.6 TRIM21过表达对IFN-γ的影响
在RAW264.7巨噬细胞中瞬时过表达TRIM21并感染0.1 MOI EMCV,在病毒感染后9 h收集细胞和细胞上清液样本,设置3组重复。使用ELISA试剂盒检测IFN-γ蛋白表达水平;以GAPDH为内参基因,采用半定量PCR法检测TRIM21、EMCV VP1和IFN-γ基因mRNA表达水平。半定量PCR所用引物及其序列为:IFN-γ Forward序列:5′-TGGCTGT-TTCTGGCTGTTACTGC-3′,IFN-γ Reverse序列:5′-AATGACGCTTATGTTGTTGCTGATGG-3′;GAPDH Forward序列:5′-GGTGAAGGTCGGTGTGAACG-3′,GAPDH Reverse序列:5′-CT-CGCTCCTGGAAGATGGTG-3′。
1.2.7 TRIM21对IFN-γ介导的JAK1-STAT1信号通路的影响
在RAW264.7巨噬细胞中瞬时过表达和敲低表达TRIM21并感染0.1 MOI EMCV,设置未接毒对照组(CK),分别在病毒感染0,6和9 h收集细胞样本,设置3组重复。以GAPDH为内参基因,采用半定量PCR法检测TRIM21、EMCV VP1、IFN-γ、STAT1和IRF9基因mRNA表达水平;以GAPDH为内参蛋白,采用Western Blot法检测TRIM21、EMCV VP1、JAK1、STAT1和IRF9蛋白表达水平。半定量PCR所用引物及其序列为:STAT1 Forward序列:5′-ATCCGCTTCCATG-ACCTCC-TCTC-3′,STAT1 Reverse序列:5′-A-CCATTGGCTTCACCTTCTCTGTTC-3′;IRF9 Forward序列:5′-ATCGTGGAGCAGGTGGAG-AGTG-3′,IRF9 Reverse序列:5′-GCACAGCGT-AGGCGAGTCTTC-3′。
1.3 数据统计分析
采用GraphPad Prism 8.0软件进行统计学分析并绘图,具体包括学生t检验(Student’s t-test)、单因素方差分析(One-Way ANOVA)和双因素方差分析(Two-Way ANOVA)。数据采用“平均值±标准差”表示,以P<0.05为差异有统计学意义。
2 结果与分析
2.1 小鼠RAW264.7巨噬细胞对EMCV的易感性
图1显示,小鼠RAW264.7巨噬细胞的生长趋势与BHK-21细胞相似,在感染早期(0~3 h),两种细胞的病毒滴度均较低;随着感染时间的延长(3~9 h),病毒滴度迅速上升;到了感染后期(9~12 h),病毒滴度趋于稳定(
图1-A)。
基因表达水平检测结果显示,
VP1基因mRNA表达水平极显著高于对照组,病毒感染9 h时的
VP1基因mRNA表达水平显著低于6 h试验组(
图1-B)。Western Blot结果进一步验证了这一现象,病毒感染9 h时的VP1蛋白表达水平极显著低于6 h试验组(
图1-C,D)。上述结果表明,EMCV可感染RAW264.7巨噬细胞,且可在其中有效复制并释放子代病毒。
2.2 EMCV感染对TRIM21表达的影响
图2表明,EMCV感染RAW264.7巨噬细胞3 h时,TRIM21蛋白表达水平极显著低于对照组,未检测到VP1蛋白;在感染6 h时,TRIM21和VP1蛋白表达水平均极显著高于对照组,并达到峰值;而在感染9 h时,TRIM21和VP1蛋白表达水平仍极显著高于对照组(
图2-A,B,C)。基因表达水平检测结果显示,EMCV感染后6和9 h,
TRIM21和
VP1基因mRNA表达水平较对照组均显著或极显著提高(
图2-D,E)。上述结果表明,EMCV感染RAW264.7巨噬细胞后,促进了内源性TRIM21的表达。
2.3 TRIM21过表达对EMCV复制增殖的影响
由
图3可知,转染pcDNA3.1-TRIM21重组质粒的RAW264.7巨噬细胞中,TRIM21蛋白及其基因mRNA表达水平均极显著高于pcDNA3.1空载体质粒对照组(
图3-A,B,C);转染pcDNA3.1和pcDNA3.1-TRIM21质粒的细胞活力与CK组相比无统计学差异(
图3-D)。试验结果表明,TRIM21在小鼠RAW264.7巨噬细胞中成功过表达,且转染的外源质粒对细胞活力无显著影响。
图4显示,转染0.5和1.0 μg的pcDNA3.1-TRIM21重组质粒后,
TRIM21基因mRNA表达水平均显著或极显著提高,
VP1基因mRNA表达水平均极显著低于CK组(
图4-A,B);转染1.0 μg的pcDNA3.1-TRIM21重组质粒能够更有效地抑制细胞上清液的病毒滴度(
图4-C);Western Blot结果显示,转染0.5和1.0 μg的pcDNA3.1-TRIM21重组质粒后,TRIM21和VP1蛋白表达水平与CK组相比均极显著升高(
P<0.01);转染1.0 μg的pcDNA3.1-TRIM21重组质粒后,TRIM21蛋白表达水平与CK组相比极显著升高,VP1蛋白表达水平极显著降低(
图4-D,E,F)。综合RT-qPCR和Western Blot结果,高剂量的pcDNA3.1-TRIM21重组质粒对EMCV增殖的抑制作用更为明显。
2.4 TRIM21敲低对EMCV复制增殖的影响
由
图5可知,转染siRNA1-TRIM21、siRNA2-TRIM21和siRNA3-TRIM21的RAW264.7巨噬细胞中,
TRIM21基因mRNA表达水平均显著低于阴性对照siRNA-NC(
图5-A);Western Blot结果显示,TRIM21蛋白表达水平均极显著低于阴性对照siRNA-NC组,其中siRNA3-TRIM21的敲低效果最为明显(
图5-B,C)。转染siRNA3-TRIM21的细胞活力与对照组相比无统计学差异(
图5-D)。试验结果表明,TRIM21敲低成功,且转染的外源质粒对细胞活力无显著影响。
图6结果显示,转染siRNA3-TRIM21的RAW264.7巨噬细胞中,TRIM21蛋白与VP1蛋白的表达水平均极显著高于CK组(
图6-A,B,C);
TRIM21基因mRNA表达水平极显著低于CK组,
VP1基因mRNA表达水平极显著高于CK组(
图6-D,E);细胞上清液的病毒滴度极显著高于CK组(
图6-F)。该结果表明,TRIM21敲低显著上调了EMCV VP1的表达水平,促进了EMCV的复制增殖。
2.5 TRIM21对EMCV吸附、侵入和释放的影响
图7显示,TRIM21过表达EMCV吸附阶段
VP1基因mRNA表达水平有所升高,但无统计学差异(
图7-A);细胞表面吸附的病毒滴度与对照组相比无统计学差异(
图7-B)。TRIM21敲低表达EMCV吸附阶段
VP1基因mRNA的表达水平与对照组相比有所升高,但无统计学差异(
图7-C);细胞表面吸附的病毒滴度与对照组相比有所降低,但无统计学差异(
图7-D)。TRIM21过表达EMCV侵入阶段
VP1基因mRNA表达水平与对照组相比有所升高,但无统计学差异(
图7-E);侵入细胞内的病毒滴度与对照组相比有所下降,但无统计学差异(
图7-F)。TRIM21敲低表达EMCV侵入阶段
VP1基因mRNA的表达水平与对照组相比无统计学差异(
图7-G);侵入细胞内的病毒滴度与对照组相比有所升高,但无统计学差异(
图7-H)。TRIM21过表达EMCV释放阶段RAW264.7巨噬细胞释放到上清液中的病毒滴度极显著低于对照组(
图7-I),细胞内的病毒滴度极显著高于对照组(
图7-J)。TRIM21敲低表达试验中,细胞释放到上清液中的病毒滴度显著高于对照组(
图7-K),细胞内的病毒滴度极显著低于对照组(
图7-L)。上述结果表明,TRIM21过表达显著抑制了病毒粒子的释放,TRIM21敲低表达显著促进了EMCV病毒粒子的释放,但无论TRIM21过表达或敲低表达对EMCV的吸附和侵入均未表现出显著的调控作用。
2.6 TRIM21过表达对IFN-γ的影响
TRIM21过表达对IFN-γ的影响结果如
图8所示。
图8显示,TRIM21过表达极显著抑制了
VP1基因mRNA表达水平,同时极显著上调了
IFN-
γ基因mRNA表达水平(
图8-A,B);ELISA结果显示,TRIM21过表达极显著提高了IFN-γ蛋白表达水平(
图8-C)。上述结果表明,TRIM21过表达显著促进了IFN-γ的表达。
2.7 TRIM21对JAK1-STAT1信号通路的影响
TRIM21表达改变对JAK1-STAT1信号通路分子mRNA水平的影响如
图9所示。
图9-A结果表明,在TRIM21过表达试验组,EMCV感染6 h时,EMCV
VP1、
IFN-
γ和转录因子
STAT1基因mRNA表达水平均极显著上调(
P<0.01),转录因子
IRF9基因mRNA表达水平极显著下调(
P<0.01);EMCV感染9 h时,
VP1基因mRNA表达水平极显著下调(
P<0.01),
IFN-
γ、
STAT1和
IRF9基因mRNA表达水平极显著上调(
P<0.01)。
图9-B结果显示,在TRIM21敲低试验中,EMCV感染6 h时,EMCV
VP1、
IFN-
γ和
STAT1基因mRNA表达水平极显著下调(
P<0.01),
IRF9基因mRNA表达水平极显著上调(
P<0.01);EMCV感染9 h时,EMCV
VP1基因mRNA表达水平极显著上调(
P<0.01),
IFN-
γ、
STAT1和
IRF9基因mRNA表达水平极显著下调(
P<0.01)。
TRIM21表达改变对JAK1-STAT1信号通路分子蛋白水平的影响结果见
图10。
图10-A显示,在TRIM21过表达试验组,EMCV感染6 h时,EMCV VP1、JAK1和STAT1蛋白表达水平极显著上调(
P<0.01),IRF9蛋白表达水平极显著下调(
P<0.01);EMCV感染9 h时,VP1蛋白表达水平极显著下调(
P<0.01),JAK1、STAT1和IRF9蛋白表达水平极显著上调(
P<0.01)。
图10-B结果显示,在TRIM21敲低试验中,EMCV感染6 h时,EMCV VP1、JAK1和STAT1蛋白表达水平极显著下调(
P<0.01),IRF9蛋白表达水平极显著上调(
P<0.01);EMCV感染9 h时,VP1蛋白表达水平极显著上调(
P<0.01),JAK1、STAT1和IRF9蛋白表达水平极显著下调(
P<0.01)。上述结果表明,EMCV感染6 h时,TRIM21过表达对EMCV复制具有促进作用,TRIM21敲低表达对EMCV复制有抑制作用;随感染时间增长至9 h,TRIM21过表达对EMCV复制有抑制作用,TRIM21敲低表达对EMCV复制有促进作用。
3 讨 论
大量研究表明,TRIM蛋白在病毒感染中具有双重作用,如在乙型肝炎病毒感染中,TRIM21可抑制病毒的复制
[10];而在盖塔病毒感染中,TRIM21可促进病毒复制
[11]。TRIM蛋白通过直接识别病毒组分或调节固有免疫反应,抑制病毒复制并增强宿主防御能力
[12]。然而,某些病毒能够劫持TRIM蛋白,利用其E3泛素连接酶活性修饰病毒蛋白或宿主因子,从而促进病毒复制或逃避免疫监视
[13]。本研究结果发现,TRIM21蛋白可抑制EMCV粒子的释放,并通过IFN-γ介导的JAK1-STAT1信号通路负调控EMCV的感染,这为EMCV防治提供了新的策略和思路。
TRIM家族蛋白在炎症、病毒感染和癌症等不同类型疾病中发挥重要作用
[14-15]。为了探究TRIM21是否影响EMCV的增殖,对EMCV感染的RAW264.7巨噬细胞进行测定,发现EMCV感染后细胞内源性TRIM21显著上调,说明TRIM21参与了EMCV的增殖过程。VP1作为EMCV的主要结构蛋白,TRIM21过表达可下调
VP1基因mRNA和蛋白表达水平,VP1表达水平的变化可能与病毒自身的复制调控机制相关。在HBV感染中,TRIM21对DNA聚合酶(DNA Pol)蛋白水平具有剂量依赖性的负向调控作用,TRIM21表达量增加可显著降低DNA Pol蛋白水平,进而抑制HBV复制
[10]。在本研究中,TRIM21过表达程度越大,EMCV增殖受到的抑制作用越强。
有研究表明,TRIM家族蛋白在病毒的生命周期中发挥不同作用
[16]。TRIM11和TRIM31可抑制人类免疫缺陷病毒(human immunodeficiency virus,HIV)的侵入,TRIM25、TRIM31和TRIM62基因的沉默可抑制HIV的释放
[17]。WEI等
[8]研究证实,TRIM21通过RING结构域的E3泛素连接酶抑制PRRSV的复制,但不影响病毒的吸附和侵入。为进一步探究TRIM21对EMCV复制增殖的影响,分别测定EMCV吸附、侵入以及释放阶段
VP1基因mRNA表达水平以及病毒滴度的变化,发现TRIM21过表达显著抑制了EMCV病毒粒子的释放。这一发现提示,TRIM21作为细胞内的一种重要免疫因子,其主要功能可能集中在细胞质和细胞核内,对进入细胞的病毒进行识别和调控,而不是直接参与细胞表面的病毒吸附和侵入。
TRIM家族蛋白因参与细胞固有免疫应答而被广泛研究。TRIM7通过调控IFN-β启动子活性并与MAVS相互作用,激活RIG-I/MDA5/MAVS介导的IFN-β信号通路
[18]。本课题组前期研究发现,TRIM13可抑制由MDA5、MAVS和TBK1介导的IFN-β的表达
[19],TRIM21过表达能够显著促进HEK293细胞中IFN-β和IL-6的表达,激活IFN-Ⅰ信号通路和炎症信号通路,增强宿主细胞的抗病毒能力
[20]。本研究发现,EMCV感染RAW264.7小鼠巨噬细胞后IFN-γ表达水平上调。病毒感染诱导IFN-γ的产生是机体抗病毒反应激活的标志,IFN-γ通过多种机制参与抗病毒防御,包括直接抑制病毒复制、激活和调节免疫细胞、增强抗原递呈能力等
[21]。IFN-γ与其细胞表面受体结合后,激活JAK1-STAT1信号通路,调控下游抗病毒基因的转录,诱导抗病毒蛋白的表达
[22]。有研究表明,ZIKV的NS4B蛋白通过抑制STAT1磷酸化来逃避宿主免疫
[23];PEDV感染可显著降低JAK1、STAT1、IRF9和磷酸化STAT1的表达,并抑制了STAT1的核转位,促进病毒复制
[24]。本研究发现,TRIM21过表达显著增强了RAW264.7巨噬细胞中IL-6和IFN-γ的表达水平,在感染6 h,TRIM21过表达通过抑制IRF9的表达动态调控JAK1-STAT1信号通路。但TRIM21与JAK1-STAT1信号通路中具体分子的相互作用还有待进一步研究。未来的研究需要深入探索TRIM21与JAK1、STAT1、IRF9等分子之间的直接或间接作用,以及这些相互作用如何影响宿主细胞的抗病毒免疫应答。
4 结 论
TRIM21过表达能够显著抑制EMCV病毒粒子的释放过程,并促进RAW264.7巨噬细胞分泌IFN-γ,通过调控JAK1-STAT1信号通路,有效抑制EMCV的复制增殖。这一机制的阐明,为深入理解TRIM21在抗病毒免疫中的作用机制奠定了基础,也为后续相关研究提供了重要的参考。
甘肃省自然科学基金项目(23JRRA720)