甜瓜(
Cucumis melo L.)是葫芦科(Cucurbitaceae)黄瓜属(
Cucumis)一年蔓生草本水果
[1],不仅口感清甜多汁,还含有多种对人体有益的营养成分。我国是甜瓜生产大国,根据FAO数据库(
http://www.fao.org/faostat)统计,2023年世界甜瓜种植面积为109.2万hm
2,产量为2 954.1万t;我国甜瓜种植面积为39.2万hm
2,产量为1 445.5万t,分别占世界甜瓜种植面积和产量的35.9%和48.9%,均居世界首位。‘灯笼红’甜瓜是内蒙古自治区巴彦淖尔市五原县的地标品种,由于成熟时瓜像一盏灯笼而得名,入选全国名特优新农产品名录,获得国家农产品地理标志认证
[2]。
小西葫芦黄花叶病毒(zucchini yellow mosaic virus,ZYMV)是马铃薯Y病毒科(Potyviridae)马铃薯Y病毒属(
Potyvirus)成员
[3],其侵染的植物会产生花叶、黄化、叶片皱缩、果肉变硬并裂开等症状,发展到后期叶片边缘变为锯齿状,种子变形且发芽率下降,直至凋萎死亡
[4]。近几年‘灯笼红’甜瓜因感染ZYMV造成产量降低和品质下降的问题越发突出。目前ZYMV防治主要以化学药剂为主,但化学防治造成的大量农药残留、环境污染等问题越来越严重,并对食品安全造成了极大的隐患
[5]。近年来,研究发现多种芽孢杆菌具有防治马铃薯Y病毒属病毒的潜力,叶面喷施蕈状芽孢杆菌(
Bacillusmycoides)可将西瓜花叶病毒(watermelon mosaic virus,WMV)的病情严重度降低87%,同时株高和茎干质量均显著提升
[6]。然而,关于生防菌防治ZYMV的研究报道甚少。基于此,本研究针对‘灯笼红’甜瓜ZYMV的防治开展了生防菌筛选研究,综合评价6种生防菌对ZYMV的防治效果,旨在为甜瓜ZYMV的生物防治和生防菌制剂开发奠定基础。
1 材料与方法
1.1 试验材料
1.1.1 供试植物
‘灯笼红’甜瓜种子,由内蒙古鑫禾昌农业科技有限公司提供。
1.1.2 毒
源 ZYMV侵染性克隆(ZYMV42-25)和空载体pCB301,均由内蒙古农业大学园艺与植物保护学院果树保护实验室保存。
1.1.3 生防菌
供试6种生防菌分别为耐盐芽孢杆菌(
Bacillus halotolerans)XYK2-4(保存号:CGM-CC NO.28732)、萎缩芽孢杆菌(
Bacillus atrophaeus)DM3-18
[7]、解淀粉芽孢杆菌(
Bacillus amyloliquefaciens)L1(保存号:CGMCC NO. 14373)、贝莱斯芽孢杆菌(
Bacillus velezensis)DM5-29
[7]及解淀粉芽孢杆菌(
Bacillus amyloliquefaciens) XZ3-6(保存号:CGMCC NO.25051)和LZ1-4(保存号:CGMCC NO.25340),依次简称为XYK2-4、DM3-18、L1、DM5-29、XZ3-6、LZ1-4,其中XYK2-4、L1、XZ3-6和LZ1-4均保存在中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心,DM3-18和DM5-29均由内蒙古农业大学园艺与植物保护学院果树保护实验室保存。
1.2 试验方法
1.2.1 育
苗 ‘灯笼红’甜瓜种子在28 ℃恒温箱内催芽,出苗后播种于直径为6.5 cm的育苗钵,基质为经过消毒灭菌的商品基质,出苗后放置在人工气候室,于三叶一心期移栽至内蒙古农业大学温室中继续培养。甜瓜生长条件为日温28 °C/夜温18 °C,相对湿度65%,光照16 h/黑暗8 h。
1.2.2 农杆菌(GV3101)菌液活化与扩繁
将150 mL YEB液体培养基、90 μL卡那霉素(50 μg/mL)、90 μL利福平(50 μg/mL)和300 μL MgSO4混匀。取50 μL侵染性cDNA克隆菌液加入1 mL含抗生素的YEB液体培养基中并混匀,28 ℃、180 r/min活化16~24 h。以体积比1∶30的比例混匀活化菌液与含抗生素的YEB液体培养基,28 ℃、180 r/min扩繁16~24 h。
1.2.3 ZYMV注射接种
用MES接种缓冲液重悬空载体pCB301和ZYMV42-25侵染性克隆,调整其OD600为0.800。在甜瓜第1片真叶长出前,用去掉针头的1 mL注射器针管将0.5 mL菌液注射到2片子叶中。注射接种后暗处理8 h,移至相对湿度60%、光照16 h/黑暗8 h的人工气候室中继续培养。
1.2.4 生防菌液活化
在超净工作台中迅速取一小块菌体放入NA培养基中,用涂布器将菌体均匀涂开,放入28 ℃恒温培养箱中培养1~2 d,挑取单菌落于5 mL LB液体培养基中,28 ℃、120 r/min振荡培养48 h,调整菌液OD600为1.200。
1.2.5 引物选择
ZYMV检测引物、ZYMV-CP相对载量和
LOX1相对表达量的定量引物均由生工生物工程(上海)股份有限公司合成,引物信息详见
表1。
1.2.6 叶片总RNA提取、cDNA合成及ZYMV检测
使用M5 HiPer Plant RNeasy Complex Mini KIT试剂盒(北京聚合美生物科技有限公司)提取甜瓜叶片总RNA。以提取的总RNA为模板反转录合成cDNA,以cDNA为模板PCR扩增ZYMVCP基因。PCR扩增体系为:2×M5 Hiper超光速mix(北京聚合美生物科技有限公司)10.0 µL,上游引物ZYMV-F和下游引物ZYMV-R各1.0 µL,cDNA 1.0 µL,添加ddH2O至20.0 µL。PCR扩增程序:94 ℃预变性1 min;94 ℃变性20 s,62 ℃退火20 s,72 ℃延伸45 s,35个循环;72 ℃终延伸5 min;12 ℃恒温保存2 min。PCR扩增结束后用1%琼脂糖凝胶进行电泳检测。
1.3 6种生防菌对ZYMV的预防和治疗效果
1.3.1 6种生防菌对ZYMV的预防效果
在甜瓜播种第8天分别喷施LB液体培养基(对照,CK)和6种生防菌10 mL/株,在喷施后24,48和72 h分别接种ZYMV42-25,6次生物学重复。统计发病率和相对防效。
1.3.2 6种生防菌对ZYMV的治疗效果
在甜瓜播种第8天接种ZYMV42-25,分别在接种后24,48和72 h喷施LB液体培养基(对照,CK)和6种生防菌10 mL/株,6次生物学重复。统计发病率和相对防效。
1.3.3 ZYMV发病情况调查及防治效果分析
当对照甜瓜的发病率达到100%时,调查6种生防菌处理后甜瓜叶片的发病情况,统计发病率并计算病情指数及相对防效。参照古勤生
[11]的方法,将发病等级分为0~4级:0级,无症状;1级,只表现褪绿斑或明脉;2级,轻度花叶,无蕨叶;3级,严重花叶,无蕨叶;4级,严重花叶和蕨叶,叶片畸形。
发病率=(发病株数/调查总株数)×100%;
病情指数=∑(发病叶片数×病毒等级值)/(调查单株总叶片数×最高病毒等级值)×100;
相对防效=(对照病情指数-处理病情指数)/对照病情指数×100%。
基于前期甜瓜ZYMV的发病率和生防菌的防治效果,从6种生防菌中筛选出3种防治效果较优的生防菌L1、LZ1-4和DM3-18,后续分析喷施这3种生防菌对甜瓜生长、ZYMV相对载量以及LOX1相对表达量的影响,筛选对甜瓜ZYMV防治效果最佳的生防菌。
1.4 3种生防菌对甜瓜生长的影响
在接种ZYMV前后24 h分别配施生防菌L1、LZ1-4和DM3-18,并在接种ZYMV42-25后20,30,40,50和60 d测量甜瓜的株高和茎粗,其中株高用卷尺测量(子叶节至主茎生长点的长度),茎粗用游标卡尺测量。试验以接种ZYMV前后24 h喷施LB液体培养基的处理为对照(CK)。
1.5 3种生防菌对甜瓜叶片中ZYMV相对载量和LOX1相对表达量的影响
以接种ZYMV42-25阳性的甜瓜叶片cDNA为模板,以
β-
Actin为内参基因,进行实时荧光定量PCR,获得各时间点的
Ct值。计算接种ZYMV后20,30,40,50和60 d时,3种生防菌L1、LZ1-4和DM3-18处理下,甜瓜叶片中
CP的相对表达量(病毒相对载量)及
LOX1的相对表达量,利用2
-ΔΔCt 法
[12]对不同处理甜瓜叶片中ZYMV相对载量和
LOX1相对表达量进行定量分析。对照设置同1.4节。
1.6 数据处理与分析
用Microsoft excel 2010、Graphpad prism和SPSS 22进行数据统计分析,用单因素ANOVA检测和TurkeyHSD’s多重比较分析处理间差异显著性。
2 结果与分析
2.1 ZYMV侵染检测
RT-PCR结果(
图1)显示,接种ZYMV42-25的甜瓜均在463 bp处检测到
CP基因特异性条带,而接种空载体(pCB301)的甜瓜未检测到特异性条带。试验结果表明,ZYMV已经侵染成功。
2.2 6种生防菌对ZYMV的预防效果
由
表2可知,与CK相比,接种前24 h喷施不同生防菌均可显著抑制甜瓜ZYMV的发病率和病情指数,相对防效从高到低依次为LZ1-4(88.9%)>DM3-18(85.2%)>L1(81.5%)>XYK2-4(77.7%)>DM5-29(76.0%)>XZ3-6(52.8%)。喷施时间提前至接种ZYMV前48和72 h,各生防菌的相对防效总体降低,但LZ1-4仍保持较高且相对稳定的相对防效(≥81.5%);DM3-18的相对防治效果为81.5%,变幅较小;L1处理的相对防效则降至61.2%~66.7%;XYK2-4、DM5-29和XZ3-6的相对防效降幅大且不稳定。综上可知,生防菌LZ1-4、DM3-18和L1在发病率、相对防效以及稳定性等方面效果较好,其中LZ1-4对ZYMV的预防效果最优;且在接种ZYMV前24 h喷施生防菌对ZYMV的预防效果显著优于接种ZYMV前48和72 h。因此,建议将接种前24 h喷施生防菌作为甜瓜ZYMV绿色预防的核心方案。
2.3 6种生防菌对ZYMV的治疗效果
表3显示,接种ZYMV后24 h喷施生防菌均可显著抑制甜瓜ZYMV的发病率和病情指数,相对防治效果从高到低依次为DM3-18(90.8%)>LZ1-4(81.5%)>L1(77.7%)>XZ3-6(74.1%)>DM5-29 (72.3%)>XYK2-4(53.7%)。喷施时间延后至接种ZYMV后48和72 h,6种生防菌对ZYMV的治疗效果逐渐递减,但DM3-18和L1仍保持较高且相对稳定的治疗效果,相对防效分别为77.7%~85.2%和76.0%~81.5%;LZ1-4的治疗效果则降低至50%~76.0%;XYK2-4、DM5-29和XZ3-6治疗效果降幅大且不稳定。综上可知,DM3-18、LZ1-4和L1在发病率、相对防效以及稳定性等方面效果较好,其中DM3-18对ZYMV的治疗效果最好,且在接种ZYMV后24 h喷施生防菌对ZYMV的治疗效果明显优于接种ZYMV后48和72 h喷施。因此,建议将接种后24 h喷施生防菌作为甜瓜ZYMV绿色治疗的核心方案。
2.4 3种生防菌对甜瓜生长的影响
2.4.1 接种ZYMV前24 h喷施生防菌对甜瓜生长的影响
由
图2可知,接种ZYMV后60 d,DM3-18和LZ1-4处理甜瓜的株高均为58 cm,较CK(34 cm)提高70.6%;L1处理甜瓜的株高为55.5 cm,较CK提高63.4%。CK、L1、DM3-18和LZ1-4处理甜瓜的株高变异系数分别为47.5%,44.6%,45.3%和45.1%。上述结果表明,生防菌LZ1-4和DM3-18在促进甜瓜株高生长方面表现更优。由
图2可知,接种ZYMV后60 d,LZ1-4处理甜瓜的茎粗为4.55 mm,较CK(3.94 mm)增加15.5%,增幅最大;接种ZYMV后20~60 d,LZ1-4处理甜瓜茎粗累计增加了1.12 mm;CK、L1、DM3-18和LZ1-4处理甜瓜茎粗的变异系数分别为17.1%,19.4%,17.8%和18.2%,表明各生防菌处理对甜瓜茎粗生长的促进效果相当。综合增量与稳定性,LZ1-4和DM3-18处理对甜瓜茎粗的促进效果较优。
2.4.2 接种ZYMV后24 h喷施生防菌对甜瓜生长的影响
图3表明,接种ZYMV后60 d,DM3-18处理甜瓜的株高为57.17 cm,较CK(36.33 cm)提高57.5%。接种ZYMV后20~60 d,各生防菌处理甜瓜的株高累计增量从高到低依次为DM3-18(49.58 cm)>LZ1-4(47.75 cm)>L1(39.67 cm)>CK(31.92 cm),CK、L1、LZ1-4和DM3-18处理甜瓜株高的变异系数分别为21.4%,20.8%,19.9%和18.7%。综合增量与稳定性,DM3-18对甜瓜株高的促进效果最佳。由
图3可知,接种ZYMV后60 d,DM3-18处理甜瓜的茎粗为4.45 mm,较CK(3.98 mm)增加11.8%。接种后20~60 d,各处理甜瓜茎粗累计增量从高到低依次为DM3-18(0.70 mm)>LZ1-4(0.62 mm)>L1(0.54 mm)>CK(0.23 mm);CK、L1、LZ1-4和DM3-18处理甜瓜茎粗的变异系数分别为14.2%,9.1%,10.4%和9.3%。上述结果表明,DM3-18对甜瓜茎生长的促进效果最佳。
2.5 3种生防菌对甜瓜叶片不同时期病毒相对载量的影响
2.5.1 接种ZYMV前24 h喷施生防菌对甜瓜叶片不同时期病毒相对载量的影响
图4结果表明,以CK叶片的ZYMV相对载量为基准(1.0),在接种后20,30,40,50和60 d时,L1处理叶片ZYMV相对载量分别为CK的30.8%,38.2%,62.6%,85.4%和76.3%; LZ1-4处理叶片ZYMV相对载量分别为CK的22.1%,29.5%,43.3%,54.1%和46.2%;喷施DM3-18处理叶片ZYMV相对载量分别为CK的24.2%,30.6%,46.5%,64.3%和55.7%。L1、LZ1-4和DM3-18处理在接种后20 d时对ZYMV的抑制率最高,分别为69.2%,77.9%和75.9%,至60 d时,分别降至23.6%,53.9%和44.3%。综上可知,喷施LZ1-4的叶片在各时间点ZYMV相对载量均最低,接种后20~50 d,ZYMV相对载量均显著低于CK,表明其对ZYMV的抑制效果最佳。
2.5.2 接种ZYMV后24 h喷施生防菌对甜瓜叶片不同时期病毒相对载量的影响
图5表明,以CK处理叶片ZYMV相对载量为基准(1.0),在接种20,30,40,50和60 d时,L1处理叶片ZYMV相对载量分别为CK的30.9%,35.4%,51.2%,85.3%和71.9%; LZ1-4处理叶片ZYMV相对载量分别为CK的24.1%,31.7%,41.2%,68.9%和42.9%; DM3-18处理叶片ZYMV相对载量分别为CK的22.0%,29.7%,34.9%,59.4%和59.1%。L1、LZ1-4和DM3-18处理在接种后20 d时对ZYMV的抑制率最高,分别为68.8%,75.8%和77.9%;至60 d时,抑制率分别降至14.6%,31.9%和40.9%。综上可知,DM3-18处理的甜瓜叶片在接种后各时间点ZYMV相对载量均较低,表明DM3-18对ZYMV的抑制效果最佳。
2.6 3种生防菌对甜瓜叶片不同时期LOX1相对表达量的影响
2.6.1 接种ZYMV前24 h喷施生防菌对甜瓜叶片不同时期LOX1相对表达量的影响
接种ZYMV前24 h喷施生防菌对
LOX1相对表达量的影响如
图6所示。
由
图6可知,以CK处理叶片
LOX1相对表达量为基准(1.0),在接种后20,30,40,50和60 d时,L1处理叶片
LOX1相对表达量分别为CK的48.5,40.5,35.5,24.5和14.5倍;LZ1-4处理叶片
LOX1相对表达量分别为CK的61.4,51.3,40.2,30.7和31.7倍;DM3-18处理叶片
LOX1相对表达量分别为CK的54.8,45.8,45.7,36.1和26.6倍。LZ1-4处理在接种20 d时甜瓜叶片中
LOX1相对表达量达到峰值(为CK的61.4倍),明显高于DM3-18和L1;接种后60 d时,LZ1-4处理甜瓜叶片中
LOX1相对表达量仍最高,为CK的31.7倍,而DM3-18和L1处理分别降至CK的26.6和14.5倍。上述结果表明,LZ1-4处理甜瓜叶片
LOX1的相对表达量在各时间点均较高,且显著高于CK,说明LZ1-4在持续诱导
LOX1表达方面表现更优。
2.6.2 接种ZYMV后24 h喷施生防菌对甜瓜叶片不同时期LOX1相对表达量的影响
图7表明,以CK处理叶片
LOX1相对表达量为基准(1.0),在接种后20,30,40,50和60 d时,L1处理叶片
LOX1相对表达量分别为CK的38.1,47.2,36.5,30.8和14.5倍;LZ1-4处理叶片
LOX1相对表达量分别为CK的44.9,53.3,41.2,36.1和26.5倍;DM3-18处理叶片
LOX1相对表达量分别为CK的51.3,61.3,49.2,24.5和31.7倍。DM3-18处理在接种后30 d时
LOX1相对表达量达到峰值(为CK的61.3倍),明显高于LZ1-4和L1处理;接种后60 d时,DM3-18处理
LOX1的相对表达量仍维持较高水平。结果表明,DM3-18在持续诱导
LOX1表达方面表现更优。
3 讨论与结论
作为植物病害的重要组成部分,植物病毒病对农业可持续发展造成严重威胁,导致果实品质下降和经济效益降低,也称为“植物癌症”
[13]。病毒病绿色生物防控技术是未来发展的主要方向,其中生防菌防治病毒病可能会成为新趋势。生防菌防治植物病害的作用机制比较复杂,直接作用机制有拮抗、竞争和减毒,间接作用机制有促生和诱抗
[14]。有些生防菌会通过诱导植物产生抗性从而减轻病毒对植株的伤害,例如防御、胁迫等抗性基因的表达和防御反应相关酶活性的变化等
[15]。本研究通过在接种ZYMV前后24,48和72 h喷施生防菌,确定接种ZYMV前后24 h喷施生防菌的预防和治疗效果最佳。过早(接种ZYMV前72 h)喷施,菌株活性或诱导的抗性可能已经衰减
[16];过晚(接种ZYMV后72 h)喷施,病毒可能已经建立系统性感染,难以控制。本研究结果表明,生防菌LZ1-4对甜瓜ZYMV的预防效果最佳,相对防效为88.9%。Ghanem等
[17]将3种链霉菌(
Streptomyces spp.
S. sampsonii,
S.rochei和
S.griseus)混合进行种子预处理,并在接种前48 h于第一片真叶喷施,可以有效预防ZYMV,相对防效为74.8%,同时可以有效降低ZYMV的相对载量,这与本研究结果一致。生防菌DM3-18对甜瓜ZYMV的治疗效果最佳,相对防效为90.8%。Abdelkhalek等
[18]分别在接种黄瓜花叶病毒(cucumber mosaic virus
,CMV)前后24 h喷施贝莱斯芽孢杆菌(
Bacillus velezensis)PEA1,对CMV的抑制率分别为55.88%和72.88%,同时显著提高
PAL、
CHS、
HQT、
PR-
1和
POD基因的转录水平。这可能是贝莱斯芽孢杆菌直接攻击或钝化已入侵的病毒粒子(如分泌病毒外壳蛋白抑制剂或RNA酶),或在病毒已造成胁迫的情况下,更强力地调动植物的二次免疫反应,抑制了病毒的复制和移动
[19]。
植物激素如茉莉酸(JA)、水杨酸(SA)和乙烯(ETH)等在植物抗病毒防御中起关键作用
[20],这些激素可激活植物信号通路,诱导植物抗性,从而用于防治植物病毒病
[21]。JA是植物应对病害的核心激素信号,脂氧合酶(
LOX)基因是JA合成途径的关键基因,在植物对病原体感染的防御反应和脂质过氧化过程中起着关键作用。植物被细菌、真菌和病毒等侵染后,其组织细胞中的LOX活性和相应基因的表达会发生变化
[22-23]。薄皮甜瓜在接种枯萎病菌后,叶片和根中LOX活性和部分
CmLOXs均上调表达,说明其参与了病害防御反应
[24]。因此,测定
LOX1的相对表达量可以从信号通路以及分子水平等方面评价抗性。Xuan等
[25]研究表明,贝莱斯芽孢杆菌HN-2通过高效定殖辣椒根系,激活JA介导的诱导系统抗性通路,上调防御酶活性和
PAL、NPR1
、PR等基因表达,缓解辣椒斑驳病毒(pepper mottle virus,PVMV)侵害,显著抑制病毒复制与扩散。Lee等
[26]研究表明,喷施解淀粉芽孢杆菌(
Bacillus amyloliquefaciens)5B6能显著降低接种病毒后叶片中CMV外壳蛋白(CP)基因的RNA积累量,叶片中多个防御标记基因
CaPR4、
CaPR5、
CaPR10显著上调,表明5B6诱导了一个涉及JA、SA、ETH多条信号通路的广谱系统抗性。刘欣
[27]对LZ1-4进行稳定性测试,发现其可在pH≥11的环境下正常生长,耐盐碱性较好,同时发现DM3-18对苹果金红和黄太平枝条上腐烂病菌的治疗效果在77%以上
[7]。本研究发现,LZ1-4用于预防ZYMV时,在接种后20 d时
LOX1的相对表达量达到最大;DM3-18用于治疗ZYMV时,在接种后30 d时
LOX1的相对表达量达到最大。然而Amin等
[28]研究表明,分别在接种马铃薯Y病毒(potato virus Y
,PVY)前后48 h喷施枯草芽孢杆菌(
Bacillus subtilis)EMCCN 1211,在接种后10 d防御病毒相关基因
PR-
1表达上调,PVY积累水平分别降低43.7%和48.54%,病毒抑制率分别为41.26%和66.57%,与本研究结果有一定差异。
本研究通过综合分析6种生防菌对甜瓜ZYMV的预防和治疗效果,成功筛选出2种预防和治疗效果较佳的生防菌,分别为LZ1-4和DM3-18。在接种ZYMV前24 h喷施LZ1-4预防效果最佳,相对防效为88.9%;在接种ZYMV后24 h喷施DM3-18治疗效果最佳,相对防效为90.8%。同时确定了在接种ZYMV前后24 h分别是预防和治疗的最佳时间。这不仅为甜瓜ZYMV的绿色防控提供了高效的生防菌剂,也为进一步探索生防菌在ZYMV防治中的应用奠定了基础。
内蒙古自治区直属高校基本科研业务费项目(BR230128)
内蒙古自治区高等学校青年科技英才项目(NJYT23079)
内蒙古自治区科技计划项目(2026YFDZ0091)
内蒙古自治区自然科学基金项目(2022QN03018)
内蒙古自治区自然科学基金项目(2023LHMS03020)