胃癌是全球范围内高发的消化系统恶性肿瘤,在我国居恶性肿瘤发病率的第5位,死亡率第3位
[1-2]。目前,肿瘤TNM分期是评估胃癌患者预后的经典指标,但该指标依赖于影像学及病理学检查。外周血炎症-免疫指标因获取便捷、检测成本低,在肿瘤患者预后评估中的价值逐渐受到关注
[3]。其中,血小板与淋巴细胞比值(platelet-to-lymphocyte ratio,PLR)、中性粒细胞与淋巴细胞比值(neutrophil-to-lymphocyte ratio,NLR)可反映机体系统性炎症反应强度
[4],比值升高提示炎症激活,可能通过促进肿瘤血管生成、抑制抗肿瘤免疫,加速病情进展,与多种恶性肿瘤患者预后不良相关
[5]。T细胞免疫球蛋白黏蛋白结构域分子3(T-cell immunoglobulin and mucin domain molecule 3,Tim-3)是一种广泛表达于T细胞、树突状细胞及巨噬细胞等免疫细胞表面的分子,在免疫负向调控中发挥重要作用。研究
[6]表明,在肿瘤微环境中,Tim-3的异常高表达与肿瘤的免疫逃逸现象显著相关。本研究通过回顾性分析延安大学附属医院胃癌患者的临床资料,分析患者术后复发的独立危险因素,旨在为制订个体化治疗方案提供参考依据。
1 资料与方法
1.1 研究对象
选取2018年1月至2020年10月在延安大学附属医院经病理学检查确诊,并在本院胃肠外科手术治疗的患者。纳入标准:① 经病理学检查确诊;② 均为第一次手术,术前未接受过其他治疗;③ 临床资料完整;④ 预计生存期≥3个月;⑤ 可配合随访。排除标准:① 合并其他恶性肿瘤;② 治疗前1个月内存在急性感染、自身免疫性疾病或严重创伤;③ 合并血液系统疾病;④ 肝肾功能严重不全;⑤ 随访期间失访或因非肿瘤相关因素死亡。
1.2 指标检测与计算
收集研究对象术前的血常规结果。根据公式计算相关比值:PLR=血小板计数/淋巴细胞计数;NLR=中性粒细胞计数/淋巴细胞计数。
1.3 实验方法
免疫组化法检测胃癌组织中Tim-3蛋白表达,免疫组化评分系统对Tim-3表达水平进行评估,并进行二元化分级:综合评分(包括染色强度和阳性细胞百分比)≤3分,判定为阴性或低表达状态(标注为“-”);综合评分>3分,判定为阳性或高表达(标注为“+”)。
1.4 随访
采用门诊病历系统与电话相结合的方式进行随访,随访开始时间为患者确诊日期,随访终点为患者复发或末次随访时间(2025年10月31日)。主要结局指标为复发率,次要指标为生存率。
1.5 统计学方法
采用SPSS 26.0软件进行数据分析。计数资料以率或百分比(%)表示,计数资料采用卡方检验,卡方检验中P<0.05的变量再纳入二元Logistic回归分析,分析预后独立影响因素。采用ROC曲线计算PLR、NLR的最佳截断值,以P<0.05为差异有统计学意义。Log-rank检验比较不同指标水平患者的生存率差异。
2 结果
2.1 两组患者单因素分析
最终纳入患者201例,分析临床特征与复发率的关系。两组患者比较,治疗方式、分化程度在5年复发率方面,差异无统计学意义(P>0.05)。
复发与无复发组比较,高龄患者更易复发(65.4%)。临床分期Ⅰ-Ⅱ期与Ⅲ-Ⅳ期的患者在复发方面存在显著性差异(
P<0.05),临床分期Ⅲ-Ⅳ期胃癌患者5年复发率为62.7%,Ⅰ-Ⅱ期胃癌患者5年复发率为42.4%。Tim-3阳性与阴性表达组在胃癌复发患者中存在显著性差异(
P<0.05),Tim-3表达阳性组复发率为66.7%,Tim-3阳性表达患者较Tim-3阴性表达患者更易出现肿瘤复发。PLR高表达与低表达在胃癌复发患者中存在显著性差异(
P<0.05),PLR高表达复发率为64.9%,PLR高表达较PLR低表达患者更易出现肿瘤复发。NLR高表达与低表达在胃癌复发患者中存在显著性差异(
P<0.05),NLR高表达复发率为63.4%,NLR高表达较NLR低表达患者更易出现肿瘤复发(
表1)。
2.2 胃癌患者术后5年复发的多因素Logistic回归分析
将单因素分析中有统计学意义的影响因素全部纳入多因素logistic回归分析,采用多因素Logistic回归模型分析胃癌患者预后不良的危险因素,纳入单因素分析中具有统计学意义的变量(包括年龄、T分期和Tim-3表达状态等)进行分析。多因素分析结果显示,Tim-3阳性表达是胃癌患者预后不良的独立危险因素(
OR=3.039,95%
CI:1.021~9.043,
P<0.05),与肿瘤复发风险显著相关,这表明Tim-3可作为预测胃癌患者不良预后的重要分子标志物。PLR和NLR是预后不良的独立危险因素(
OR=1.797,95%
CI:1.168~2.765;
OR=1.801,95%
CI:1.124~2.887,
P<0.05)。此外,临床分期、N分期与胃癌患者复发没有显著相关性,见
表2。
2.3 PLR、NLR对生存结局的预测价值
通过ROC曲线及约登指数确定PLR、NLR预测5年OS的最佳截断值,PLR为139.34(AUC=0.615,95%
CI:0.537~0.693);NLR2.21(AUC=0.607,95%
CI:0.529~0.685)。据此将患者分为高PLR组(≥139.34)和低PLR组(<139.34);高NLR组(≥2.21)和低NLR组(<2.21)。K-M生存分析显示,低PLR组5年生存率显著高于高PLR组(logRankP=0.019);低NLR组5年生存率显著高于高NLR组(logRankP= 0.014),见
图1。
3 讨论
陕北是陕西胃癌高发区,胃癌的病因多样
[7],包括不良饮食习惯、吸烟、饮酒、幽门螺杆菌感染以及家族遗传史等。相同期别的肿瘤具有不同的分子特征(如HER2阳性,微卫星不稳定等),导致患者预后差异较大,需要根据患者的个体差异来制订个体化的治疗方案。胃癌患者的预后评估是临床诊疗的重点与难点,寻找便捷、可靠的预后预测标志物对优化治疗策略至关重要。
胃癌患者的预后与多种因素密切相关,年龄、T分期、PLR、NLR及Tim-3等因素都与患者预后相关。Tim-3作为一种关键的免疫调节分子,在胃癌发生发展中扮演着重要角色。目前发现Tim-3具有免疫调节功能。Tim-3通过与其配体结合,向Th1细胞传递抑制性信号,导致T细胞功能耗竭,进而形成免疫抑制性微环境。研究显示,胃癌组织中Tim-3高表达患者,复发率更高,其促肿瘤机制可能为:Tim-3直接增强肿瘤细胞的生存能力和侵袭转移潜能,并通过单核/巨噬细胞途径促进肿瘤进展,抑制抗肿瘤免疫应答,形成免疫逃逸。Tim-3高表达可能与胃癌患者不良预后相关,并可能作为独立的预后评估指标,其表达水平与疾病进展程度密切相关。进一步研究Tim-3在胃癌预后中的作用,可能为患者治疗决策提供新的契机
[8]。
外周血炎症-免疫指标PLR及NLR等因素都与患者预后相关,PLR是一种简便、经济的系统性炎症标志物,反映机体免疫-炎症-凝血状态的失衡。在胃癌中,高PLR提示肿瘤微环境中促炎环境增强;抗肿瘤免疫反应受抑;肿瘤侵袭性和转移潜能增加。因此,术前PLR可作为独立预后指标,有助于风险分层和治疗决策。本研究通过ROC曲线得出PLR及NLR的最佳截断值,并据此进行分组,进行预后分析,结果发现PLR和NLR对胃癌预后具有较好的特异性和敏感性。单因素及多因素分析表明PLR、NLR单独检测及联合检测对胃癌患者5年复发率有预测价值,其中PLR(
P<0.01)及NLR(
P<0.05)差异有显著性意义。高PLR、高NLR是患者预后不良的独立危险因素,这与既往研究
[9-10]结论基本一致。有研究
[11-14]发现,术前外周血PLR联合TNM分期及CEA构建的列线图模型经过内部验证及外部验证,发现这些指标能有效地预测胃癌患者的术后DFS。Urakawa等
[15]的研究结果显示,无论在单因素分析还是多因素分析中,NLR和PLR均升高的患者,其TRG分级均显著更差。综上所述,本研究结果提示,治疗前PLR及NLR水平较高的患者,治疗后肿瘤进展或复发风险可能更高,强调了对此类患者进行密切监测的重要性。
本研究结果显示,胃癌根治术后复发的风险是多因素的,与患者的Tim-3、PLR、NLR等密切相关,但是对于不同的治疗方式,如单纯化疗、化疗联合靶向或化疗联合免疫等不同治疗方式5年复发率没有明显差异(P>0.05),这可能与我们纳入的病例数较少有关。在后续研究中会加大样本量,进行分层研究,观察免疫、靶向等治疗手段对患者长期生存的影响。
综上所述,本研究证实了PLR、NLR及Tim-3等与胃癌患者预后的关联性,但是本研究也存在局限性,第一,本研究为单个研究单位的数据,应采用多中心研究设计,尽可能纳入不同地区的患者,从而实现更大样本量的分析并解决异质性问题;第二,关于PLR及NLR的最佳临界值,多家单位研究结果不一致,但是趋势是一致的,目前尚未能制定统一的标准;第三,关于Tim-3在胃癌患者预后预测中的作用,未来会继续研究Tim-3的调控机制及其在胃癌微环境中的具体作用,可能为改善患者预后带来新的治疗契机。总之,我们仍需扩大样本量,进行多中心、前瞻性研究,进一步开展机制研究,为胃癌患者精准化、个体化治疗提供参考依据。
延安市科技局2023年重点研发计划(2023-SFGG-086)