1986年,美国科学家David Baltimore和Ranjan Sen领导的团队在研究中发现核因子κB(nuclear factor kappa-B,NF-κB)转录因子。最初,NF-κB被认为是B细胞中一种特异性的核转录因子,能够识别编码免疫球蛋白-κ轻链基因中的增强子。在哺乳动物中,NF-κB既可以正向调节也可以负向调节基因转录,是5个相关蛋白质p65(由
Rela编码),RelB(
Relb),c-Rel(
c-Rel),p105(
Nfkb1)和p100(
Nfkb2)结合形成的二聚体家族。作为一种具有多效性的转录因子,NF-κB控制数百个生物学上重要基因的表达,积极参与许多生物学过程,包括细胞增殖、分化、胚胎发育、先天免疫细胞募集、炎症和肿瘤的转化和进展
[1]。NF-κB通路在免疫应答、炎症反应等过程中发挥重要作用,并且参与调节趋化因子、炎症性细胞因子和基质金属蛋白酶的表达。
研究表明,子宫组织驻留NK(tissue-resident NK,trNK)细胞可能通过协调滋养层细胞向母体深部动脉的侵袭和重塑,在胎盘的正确形成中发挥关键作用
[2]。子宫trNK通过分泌促血管生成因子促进子宫螺旋动脉重塑,确保胎盘和胎儿的生长发育
[3]。动物模型研究中发现,妊娠大鼠子宫trNK细胞的缺失会导致滋养细胞异常增殖分化和迁移,影响子宫螺旋动脉重塑,最终导致异常的胎盘发生。因此,妊娠后子宫trNK细胞的正常募集和分化对胎盘和胎儿的生长发育至关重要。
在蜕膜化和胚胎植入阶段,子宫内膜组织会发生NF-κB通路介导的炎症反应
[4-7]。这种炎症反应,对子宫内膜基质细胞(endometrial stromal cells,ESCs)蜕膜化和胚胎植入的调控十分重要。激活蜕膜基质细胞(decidual stromal cells,DSCs)的NF-κB通路,可显著增加趋化因子CXCL10和CXCL11的表达,且能显著提高外周血NK细胞的迁移能力。子宫内膜或绒毛外滋养细胞(extravillous cytotrophoblasts,EVTs)产生的趋化因子可诱导外周血NK细胞趋化反应,促进蜕膜内皮细胞和基质细胞表达CCL2、CXCL8、CXCL10、CX3CL1和CXCL12。并且研究发现CXCL10、CXCL12和CX3CL1诱导外周血NK细胞在原代培养的蜕膜内皮细胞和基质细胞之间迁移。妊娠基底蜕膜中存在大量具有外周血传统NK细胞(conventional NK,cNK)表型的子宫trNK细胞,这些细胞很可能是在蜕膜免疫微环境的调控下从外周迁移到妊娠子宫中的。虽然目前还不清楚各种趋化因子是如何以及何时参与NK细胞在子宫中募集的,但已有研究表明子宫trNK细胞和外周血cNK细胞之间具有不同的趋化因子受体谱,妊娠期从外周血募集的白细胞表型特征可能受到蜕膜微环境的影响而发生改变
[8]。
在蜕膜化和胚胎植入阶段,NF-κB激活后是否可以调控子宫trNK细胞的募集和分化,目前尚无报道。本研究通过小鼠体内注射NF-κB抑制剂以抑制NF-κB活性,对子宫trNK细胞的募集和分化进行分析比较,以明确抑制NF-κB信号通路对其下游趋化因子、细胞因子表达的影响,对子宫trNK细胞募集和分化及子代生长的影响,为深入理解母胎免疫平衡与子代正常发育的分子机制提供参考。
1 材料和方法
1.1 实验动物
SPF级8 ~ 10周龄健康雌性ICR小鼠32只,体重28 ~ 32 g;8 ~ 10周龄雄性小鼠20只,体重34 ~ 40 g,购于北京华阜康生物科技公司。
1.2 主要试剂与仪器
NF-κB抑制剂(MCE),溶于PBS缓冲液;4%多聚甲醛溶液(索莱宝);pH值6.0柠檬酸钠缓冲液(索莱宝);无碳封闭液(Vectorlabs);双花扁豆(DBA)凝集素(Sigma);兔SP试剂盒(中杉金桥);DAB显色试剂盒(中杉金桥),苏木素染色液(索莱宝);反转录试剂盒(Taraka),荧光定量试剂盒(Taraka);八连管(Bio-rad);荧光定量PCR仪(Bio-rad)。
1.3 抑制NF-κB活性小鼠动物模型的建立
取16只8周龄正常发情雌性小鼠,与正常雄性小鼠1∶1合笼,次日上午8:00检查雌鼠,见阴道栓者记为假孕0.5 d。实验组于妊娠5.5 ~ 7.5 d给予腹腔注射溶于PBS的NF-κB抑制剂(250 mg/kg/d)
[9],对照组给予相同体积PBS。
1.4 样本收集
1.4.1 孕囊及蜕膜样本收集
于妊娠8.5 d脱颈处死母鼠,剪开腹部皮肤取出子宫,在显微镜下小心撕开子宫,注意保证孕囊完整性,对分离出的孕囊样本进行称重记录,每只母鼠取3个孕囊固定于4%多聚甲醛中,随后将胎鼠和胎盘剔除后的蜕膜组织冻存于EP管中,液氮速冻后转移至-80℃冰箱冷冻保存。
1.4.2 胎鼠及胎盘样本收集
于妊娠14.5 d脱颈处死母鼠,剪开腹部皮肤取出子宫,小心剪开子宫,分离出胎鼠和胎盘称重记录并计算胎盘效率(胎鼠重量/胎盘重量)。
1.5 免疫组织化学染色检测小鼠子宫trNK细胞的募集和分化
常规4%多聚甲醛固定,石蜡包埋切片,石蜡切片脱蜡、水化及抗原修复。内源性过氧化物酶阻断剂阻断内源性过氧化物酶,无碳封闭液封闭减少非特异性结合,滴加DBA凝集素(1∶1 200)室温孵育60 min,辣根酶标记链霉卵白素工作液室温孵育15 min,DAB显色液显色,自来水中止显色。置于蒸馏水中。氧化剂孵育8 min,流动自来水冲洗10 min,苏木素染核,酸分化液分化后自来水冲洗返蓝,切片按照常规程序脱水,二甲苯透明,中性树胶封片。
1.6 Real time PCR检测子宫trNK细胞募集相关趋化因子和胎盘生长相关细胞因子的mRNA表达
取妊娠8.5 d蜕膜组织,采用Trizol法提取两组蜕膜样本中的总RNA,用takara反转录试剂盒(Cat#RR820,Lot#AKE1145A)进行扩增,按照产品说明书进行操作。扩增程序:37℃,15 min;85℃,5 s;4℃,∞。Real Time反应体系:2×TB Green Premix:12.5 μL,上游引物 (10 μmol/L):1 μL,下游引物(10 μmol/L):1 μL,模板:2 μL,加入灭菌蒸馏水至25 μL。反应体系以GAPDH为内参,引物序列见
表1。
1.7 统计学方法
采用Prism 8.0统计分析软件对数据进行录入及分析。计量资料符合正态分布采用表示,两组间比较采用t检验;P<0.05为差异有统计学意义。
2 结果
2.1 NF-κB通路对胎鼠和胎盘发育的调控作用
通过对小鼠妊娠8.5 d孕囊,妊娠14.5 d胎鼠及胎盘重量进行称重,并计算胎盘效率。结果显示,与PBS组相比,APDC组小鼠妊娠8.5 d时孕囊重量降低,差异有统计学意义(
P<0.001)。见
表2。与PBS组相比,APDC组小鼠妊娠14.5 d时胎鼠重量、胎盘重量和胎盘效率降低,差异有统计学意义(
P<0.05)。见
表3。
2.2 抑制NF-κB活性对子宫trNK细胞的影响
通过PAS染色和DBA凝集素免疫组织化学技术,分析了使用NF-κB抑制剂(APDC)后小鼠妊娠8.5 d基底蜕膜中子宫trNK细胞的密度(阳性细胞数占总细胞数的比例)。结果表明,与PBS组相比,APDC组小鼠在妊娠8.5 d基底蜕膜中的密度降低,差异有统计学意义(
P<0.001)。见
图1。
2.3 抑制NF-κB活性对子宫trNK细胞分泌功能的影响
采用Real time PCR技术对小鼠蜕膜组织中趋化因子和细胞因子的mRNA表达水平进行检测,结果显示,与PBS组相比,APDC组小鼠蜕膜组织趋化因子CXCL11、CXCL12、CXCL14、CX3CL1、CCL2表达水平降低,差异有统计学意义(
P<0.05)。与PBS组相比,APDC组小鼠蜕膜细胞因子表达水平IL-15、IL-24、PLGF和TGF-β的表达水平降低,差异有统计学意义(
P<0.05)。见
表4。
3 讨论
胚胎成功植入依赖于子宫内膜精确调控的炎症反应,而NF-κB是这一过程的核心调控因子。既往研究证实,抑制NF-κB会延迟小鼠胚胎着床,表明其对妊娠建立至关重要
[10-14]。然而,NF-κB在着床后,对胎儿及胎盘生长发育产生影响,其分子机制尚不明确。本研究不仅再次验证了NF-κB对胚胎早期存活的重要性,更重要的是,首次揭示了NF-κB通路通过影响子宫trNK细胞的密度,来调控后续胎盘与胎鼠的生长发育。这一发现将母胎界面免疫微环境(trNK细胞)与胎儿生长发育结局直接联系起来,为理解妊娠维持机制提供了新的视角和实验依据。
既往研究已证实,NF-κB在炎症、病毒感染及肿瘤等病理过程中,对外周血cNK细胞的募集与分化具有关键调控作用。例如,病毒感染可通过激活NF-κB通路诱导趋化因子CCL2的产生,从而促进cNK细胞的浸润
[15]。树突状细胞的活化亦可通过该通路分泌IL-12,进而激活cNK细胞
[16]。在生殖领域,已知子宫内膜在蜕膜化及胚胎植入阶段会发生NF-κB介导的炎症反应,该通路对ESCs的蜕膜化及胚胎植入至关重要。研究表明,抑制NF-κB活性不仅会阻碍ESCs的蜕膜化进程
[17],也会导致胚胎植入失败
[18]。此外,有体外实验发现,激活DSCs的NF-κB信号可显著上调CXCL10与CXCL11等趋化因子的表达,并增强其对外周血cNK细胞的趋化能力
[19]。因此,我们抑制NF-ĸB活性后,对其下游与NK细胞募集和分化相关的趋化因子和细胞因子的表达水平进行了检测,结果显示抑制NF-ĸB活性后,其下游与NK细胞募集和分化相关的趋化因子和细胞因子的表达水平受到显著影响。然而,上述研究多集中于着床初期或体外环境,NF-κB在着床后阶段对trNK细胞的调控作用尚不明确。为此,本研究在抑制NF-κB活性后,对其下游与NK细胞募集及分化相关的关键趋化因子与细胞因子进行了检测。结果显示,该通路被抑制后,这些因子的表达水平发生显著改变,提示NF-κB在着床后阶段通过调控局部免疫微环境,影响子宫trNK细胞,这可能是其参与妊娠维持的新机制。
子宫trNK细胞是妊娠早期子宫中的主要白细胞,参与了妊娠的基本生理过程。人类子宫trNK细胞在表型和功能上与外周血cNK细胞不同,95%以上的人类子宫trNK细胞表型为CD56brightCD16dim,低细胞毒性,被认为是具有免疫调节特性的有效细胞因子生产者。但在蜕膜化和胚胎植入阶段,NF-κB激活后是否可以调控子宫trNK细胞的募集和分化,目前尚未见报道。本研究中,我们利用NF-κB抑制剂,在小鼠胚胎植入阶段抑制蜕膜组织的NF-κB活性,发现小鼠妊娠8.5天孕囊重量显著降低,妊娠14.5 d胎鼠重量、胎盘重量及胎盘效率显著降低,这表明,NF-κB活性参与了胎鼠及胎盘的生长发育。当抑制NF-κB活性后,我们发现小鼠子宫trNK细胞数量显著降低,首次揭示了NF-κB信号通路可调控子宫trNK细胞。接下来的实验结果显示,当使用NF-κB抑制剂后,NF-κB下游趋化因子和细胞因子的mRNA表达水平受到了明显的影响。因此,推测NF-κB活性的降低,进一步影响其下游细胞因子的产生,是导致子宫trNK细胞募集和分化异常的重要原因,这进一步导致了胎盘异常,最终致子代生长发育受限。
然而,本研究也有一定的局限性,我们仅对子宫trNK细胞的数量进行了分析,未能对NF-κB活性抑制后子宫trNK细胞的功能进行研究。另外,研究中缺少更直接的功能性实验,以验证蜕膜中trNK细胞密度下降与胎盘效率降低之间的因果关系是否存在,有待于后续的实验进行补充。
综上,本研究利用小鼠模型,揭示了NF-κB信号通路在胚胎发育中的关键作用:其活性缺失会导致子宫trNK数量减少及相关趋化因子表达下调,进而损害胎盘功能,最终引发子代生长受限。这一发现不仅阐明了母胎界面免疫微环境调控的核心机制,也为理解不明原因复发性流产、胎儿生长受限等人类不良妊娠的病因提供了新视角。靶向调控NF-κB通路以改善子宫局部免疫状态,未来可能成为干预相关生殖障碍的潜在策略。进一步的研究将在人类样本中验证该通路的功能,推动这一机制从基础认知向临床应用的转化,最终为不良妊娠结局的免疫干预提供新思路。
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国家自然科学基金面上项目(82271734)
国家自然科学基金面上项目(82071717)