光生物调节对中度创伤性脑损伤小鼠损伤修复的影响

Effects of photobiomodulation on damage repair after moderate traumatic brain injury

摘要

背景 创伤性脑损伤(traumatic brain injury，TBI)是一种具有高致残率、高致死率的神经系统疾病，其治疗手段亟待创新。光生物调节(photobiomodulation，PBM)是一种新的非侵入性物理疗法，但目前其对中度TBI的作用机制及疗效参数缺乏系统性研究。 目的 探究PBM对中度TBI小鼠损伤修复的影响及其可能机制。 方法 36只8周龄的雄性C57BL/6小鼠随机采用随机数表法分为假手术组(Sham组)、TBI组和PBM组。TBI组和PBM组采用控制皮质冲击损伤法构建中度TBI模型；Sham组仅行相同伤口处理，不进行脑皮质冲击损伤；PBM组接受1 064 nm光治疗，功率密度为25 mW/cm²，每天12 min，治疗时间14 d。行为学上，通过疲劳转棒、Y迷宫等行为学试验评估小鼠运动和认知功能。组织学上，通过免疫荧光染色观察脑组织冰冻切片胶质纤维酸性蛋白(glial fibrillary acidic protein，GFAP)、微管相关蛋白2(microtubule-associated protein 2，MAP2)表达变化。分子生物学上，采用实时荧光定量聚合酶链式反应(quantitative real-time polymerase chain reaction，RT-qPCR)检测损伤区周围脑组织中脑源性神经营养因子(brain-derived neurotrophic factor，BDNF)、星形胶质细胞肿瘤坏死因子α(tumor necrosis factor α，TNF-α)、白细胞介素-1β(interleukin-1β，IL-1β)、IL-6的表达变化。 结果 在行为学方面，疲劳转棒实验显示，与TBI组比较，PBM组的平均跌落时间延长，运动距离显著增加，掉落时速度更快(P＜0.05)；Y迷宫实验显示，与TBI组比较，PBM组进入新异臂探索的时间和次数均增加(P＜0.05)。在组织学方面，TBI组损伤区脑组织MAP2的平均荧光强度显著低于Sham组和PBM组，GFAP的平均荧光强度显著高于Sham组和PBM组，差异均有统计学意义(P均＜0.05)。在分子生物学方面，RT-qPCR结果显示，与TBI组比较，PBM组小鼠损伤区的BDNF相对mRNA水平显著升高(P＜0.05)；在细胞层面，PBM治疗后炎性活化的星形胶质细胞中TNF-α、IL-1β、IL-6的表达显著下降(P＜0.05)。 结论 1 064 nm PBM可能通过促进神经元损伤修复、抑制星形胶质细胞活化、降低炎症因子水平来改善TBI后的运动和认知功能。

Abstract

Background Traumatic brain injury (TBI), as a neurological disorder characterized by high disability and mortality rates, demands urgent innovation in therapeutic approaches. Although photobiomodulation (PBM) demonstrates potential as a novel non-invasive physical therapy, current research lacks systematic investigation into its mechanisms of action and efficacy parameters specifically for moderate traumatic brain injury. Objective To investigate the neuroprotective effects and potential mechanisms of 1064 nm PBM in moderate TBI models. Methods Thirty six 8-week-old male C57BL/6 mice were randomized into sham group, TBI group, and PBM group. The TBI group and the PBM group were established using controlled cortical impact injury to model moderate brain injury, while the sham group underwent identical craniotomy procedures without cortical impact induction. The PBM group received daily 1064 nm irradiation (25 mW/cm², 12 min/day) for 14 consecutive days. Behavioral assessments employing rotarod fatigue testing and Y-maze paradigms were implemented to quantify locomotor coordination and spatial working memory, while histopathological evaluation utilizing immunofluorescence staining on cryopreserved cerebral sections enabled quantitative analysis of glial fibrillary acidic protein (GFAP) astrogliosis and microtubule-associated protein 2 (MAP2) neuronal integrity, complemented by molecular profiling through quantitative real-time PCR (RT-qPCR) that systematically measured transcriptional alterations in brain-derived neurotrophic factor (BDNF) and astrocyte-mediated pro-inflammatory cytokines including tumor necrosis factor-α (TNF-α), interleukin-1β (IL-1β), and interleukin-6 (IL-6) within peri-contusional parenchyma. Results ​In behavioral tests​, the fatigue rotarod test showed that compared to the TBI group​​, the PBM group exhibited a longer average fall latency, a significantly increased travel distance, and a higher falling speed (P<0.05). In the Y-maze test, compared to the TBI group, the PBM group demonstrated increased time spent exploring the novel arm and more entries into the novel arm (P<0.05).​Histologically, the TBI group exhibited significantly lower mean fluorescence intensity of MAP2 and significantly higher GFAP fluorescence intensity in the injured brain region compared to both the sham and PBM groups (all P<0.05). Molecular analysis by RT-qPCR showed that the PBM group had significantly increased BDNF mRNA expression levels in the injured area relative to the TBI group (P<0.05), while cellular studies revealed that PBM treatment significantly reduced the expression of pro-inflammatory cytokines TNF-α, IL-1β and IL-6 in activated astrocytes (P<0.05). Conclusion 1064 nm PBM may improve motor and cognitive functions after moderate TBI by promoting the repair of neuronal damage, inhibiting the activation of astrocytes, as well as decreasing their levels of pro-inflammatory factors.

Graphical abstract

关键词

创伤性脑损伤 / 光生物调节 / 损伤修复 / 神经炎症 / 星形胶质细胞 / 小鼠

Key words

traumatic brain injury / photobiomodulation / damage repair / neuroinflammation / astrocyte / mice

创伤性颅脑损伤(traumatic brain injury，TBI)是一个重要的全球性公共卫生问题，具有高发病率、高致死率、高致残率等特点。美国每年约有170万人遭受TBI，25个发达国家TBI平均致死率为11.7/100 000^[1]；中国人群TBI的致死率为13/100 000^[2]。根据报道，轻型TBI患者在受伤后3个月内，记忆减退和注意力障碍的发生率为40% ~ 60%；中、重型患者的认知功能障碍发生率显著升高(≥90%)，与损伤程度呈正相关^[3]。TBI后可引起长期的认知功能障碍和情绪紊乱^[4-7]，包括易怒、有攻击性、焦虑、抑郁、注意力和记忆力下降、睡眠障碍、易疲倦等，是阿尔茨海默病、帕金森病、慢性创伤性脑病等慢性神经退行性疾病的重要危险因素^[8-9]。目前TBI的治疗方法包括手术、药物治疗、对症支持治疗、高压氧疗和经颅磁刺激等^[10]，但这些方法存在一些弊端，如创伤较大、不良反应多、无法恢复受损的神经功能、治疗过程较为复杂等。因此，迫切需要一种更实用和有效的TBI治疗方法。

光生物调节(photobiomodulation，PBM)是一种在神经科学领域逐渐兴起的非侵入式物理疗法，包括红光(600 ~ 670 nm)和近红外光(800 ~ 1 100 nm)^[11-12]。有研究表明，近红外的光生物调节作用对脊髓损伤和外周神经损伤具有神经保护作用^[13-14]，也有学者将PBM用于TBI的治疗，目前研究较多的为810 nm激光^[15]。但另有研究表明，1 064 nm波长的发光二极管(light emitting diode，LED)相比其他波长有更强的组织穿透能力^[16-17]，还有研究提示其对神经退行性疾病具有保护作用^[15,18-19]，总体上1 064 nm LED对TBI后脑高级功能尤其是认知功能调节作用的研究较少。本研究旨在观察1 064 nm LED对中度TBI小鼠损伤修复和星形胶质细胞活化的影响，为PBM治疗TBI的临床转化提供理论依据。

1 材料与方法

1.1 实验动物与分组

36只6 ~ 8周龄清洁级健康C57BL/6小鼠，饲养于室温[(22±2)℃]，相对湿度50% ~ 60%，通风良好，自然昼夜规律的环境中(光照12 h/黑暗12 h)，自由获取水和食物。按随机数字表法将小鼠分为假手术组(Sham组)、创伤性脑损伤组(TBI组)、光生物调节治疗组(PBM组)，每组12只。Sham组仅开脑窗，不进行TBI造模；TBI组放置于1 064 nm LED光照下，但不开机；PBM组接受TBI造模和1 064 nm LED光照治疗。所有实验方案均经解放军军事医学研究院实验动物管理与使用委员会批准(IA-CUC-DWZX-2021-759)。

1.2 小鼠TBI模型的建立

采用经典的控制性皮质撞击(controlled cortical impact，CCI)法构建小鼠TBI模型。每只小鼠根据体质量腹腔注射2,2,2-三溴乙醇(240 mg/kg)进行麻醉。动物被放置在附着于温控加热垫(37℃)的立体定向框架上，头皮脱毛，75%乙醇消毒后沿脑正中线左侧切开头皮。暴露颅骨后，在皮质上进行直径为4 mm的颅骨钻孔术(3.0 mm AP和2.0 mm ML to bregma)。气动操作的金属冲击器(直径3 mm)以3.5 m/s的速度撞击大脑，到达硬脑膜层以下1.0 mm的深度，并在大脑中停留400 ms。止血及碘伏消毒后缝合伤口。

1.3 细胞培养

小鼠星形胶质细胞C8-DA1培养于含10%胎牛血清(Gibco公司，美国)和1%青霉素/链霉素的DMEM培养基(Gibco公司，美国)中，置于37℃、5% CO₂培养箱中培养。细胞在80% ~ 90%融合时传代。

1.4 光生物调节治疗

动物PBM处理：将小鼠置于光照箱内，小鼠自由活动。调节光照装置，用积分球光谱仪测量光照强度为25 mW/cm²时固定光照仪器。PBM组从TBI后4 h开始接受光照每天1次，具体参数：LED连续波长1 064 nm，照射12 min，能量密度18 J/cm²，治疗周期14 d。Sham组和TBI组小鼠置于光照箱同样的位置，但不打开电源。

细胞分组及PBM处理：将C8-D1A细胞随机分为3组：(1)Sham组，即对照组；(2)脂多糖(lipopolysaccharide，LPS)组，即使用100 ng/mL的LPS进行刺激，构建体外炎症模型；(3)PBM组，即在LPS刺激后12 h，使用1 064 nm波长的LED进行连续照射，功率密度为12 mW/cm²，能量密度为4 J/cm²，间隔12 h后进行收样。

1.5 行为学检测

1.5.1 疲劳转棒实验

为检测小鼠运动协调与平衡能力，对小鼠进行疲劳转棒试验。首先对小鼠进行2 d的训练：第1天训练，设置转速为5 r/min，时间5 min；第2天训练，设置转速为40 r/min，时间5 min；每天训练4次，上午2次，下午2次，每两次实验之间至少相隔30 min，训练期间小鼠掉落则再次将小鼠放置在转棒上。第3天测试，设置转速为40 r/min，时间上限为5 min，记录小鼠在棒时间、运动距离。注意每一轮实验后，都用75%乙醇喷洒擦拭转棒，避免留有其他鼠的气味。

1.5.2 Y迷宫实验

Y迷宫试验利用小鼠对新异环境的探索天性检测其空间识别记忆能力^[20]。Y迷宫实验装置由3个完全相同的臂组成，分别标记为A臂、B臂、C臂，各个臂之间夹角为120°。小鼠首先在实验场地适应30 min，指定一个区域为新异臂，并将其封闭，将小鼠放在A臂的远端，面对迷宫中心。让小鼠在迷宫中自由探索5 min。1 h后打开新异臂的挡板，进入正式测试阶段，让小鼠重新在Y迷宫中进行探索5 min，记录小鼠进入新异臂的时间及次数。

自发性交替行为：测试时将小鼠头部朝Y迷宫中央置于A臂起始端，赋予其8 min自主探索权限。通过视频追踪系统连续记录运动轨迹，量化分析臂间转换次数与有效交替次数。交替百分比(%)=(交替次数/总探索次数-2)×100%。

每只动物实验结束后清除箱底粪便，75％乙醇喷洒箱底并用洁净纱布抹干，以避免前次实验动物的残留气味影响本次实验。

1.6 组织分子学检测

1.6.1 脑组织取材

每只小鼠腹腔注射5 mL 2,2,2-三溴乙醇进行麻醉。将麻醉的小鼠仰卧固定在解剖板上，用剪刀沿胸骨正中线剪开皮肤，暴露胸腔，用镊子轻轻拉开胸腔，暴露心脏。将头皮针针头插入左心室，可见回血，用剪刀在右心耳处剪一个小口。20 mL注射器吸取0.9%氯化钠注射液，缓慢推动注射器，以2 ~ 3 mL/min的速度灌注0.9%氯化钠注射液，直到肝和肺部完全变白。20 mL注射器吸取4%多聚甲醛溶液，缓慢推动注射器，以2 ~ 3 mL/min的速度进行灌注，观察小鼠四肢肌肉僵直，表明固定液已充分灌注。灌注完成后，用剪刀沿冠状缝剪开颅骨，暴露脑组织，用镊子和剪刀小心地将脑组织完整取出，放入预冷的4%多聚甲醛溶液中，4℃固定24 h。

1.6.2 免疫荧光染色

小鼠麻醉后进行心脏灌注取材，并使用4%多聚甲醛固定脑组织，分别使用15%和30%的蔗糖溶液进行梯度脱水，使用包埋剂包埋后在-20℃下进行厚度为35 μm的冷冻切片。在孔板中加入封闭液，室温封闭1 h后加入稀释好的一抗(比例为1∶200) 4℃过夜孵育，然后使用磷酸盐缓冲液(phosphate buffered saline，PBS)洗涤脑片3 ~ 5次，每次5 min。加入相应的二抗(比例为1∶200)继续室温孵育1 h，PBS溶液洗涤3次以上，每次不低于5 min。将脑片用枪头吸出至干净的载玻片上，使用滤纸缓慢吸干脑片周围的水分后再滴加4’,6-二氨基-2-苯基吲哚(4’,6-diamidino-2-phenylindole，DAPI)(Sigma公司，美国)抗荧光淬灭剂，轻轻盖上盖玻片，避免产生气泡。将制备好的脑片置于荧光显微镜下观察，拍照记录，4℃保存。所用的一抗为胶质纤维酸性蛋白(glial fibrillary acidic protein，GFAP) (Millipore公司，德国)、微管相关蛋白2(microtubule-associated protein 2，MAP2) (Abcam公司，美国)，二抗为琥珀酰亚胺酯488(alexa 488)(Jackson Immuno Research公司，美国)和花青染料3(cyanine3，Cy3) (Jackson Immuno Research公司，美国)。采用ImageJ软件分析平均荧光强度。

1.6.3 RT-qPCR

使用Trizol试剂(Invitrogen公司，美国)将含有脑组织样本溶解，采用氯仿提取和异丙醇沉淀法提取总RNA，然后进行反转录。每个扩增循环包括95℃(5 min)的初始步骤，然后40个循环的95℃变性(15 s)，60℃退火(1 min)，72℃延伸(30 s)。以GAPDH、β-actin作为内参对照，采用2^-ΔΔCt法计算肿瘤坏死因子α(tumor necrosis factor α，TNF-α)、白细胞介素-1β(interleukin 1β，IL-1β)、IL-6、脑源性神经营养因子(brain-derived neurotrophic factor，BDNF)相对于内参基因的表达量。引物序列由上海生工生物工程股份有限公司设计合成(表1)。

1.7 统计学分析

使用GraphPad Prism 9.5软件对实验数据进行统计和作图，经Shapiro-Wilk正态性检验，所有数据符合正态分布，以x±s表示，三组间比较采用单因素方差分析，P＜0.05为差异有统计学意义。所有实验均独立重复3次。

2 结果

2.1 行为学检测结果

采用控制性皮质撞击法构建小鼠TBI模型，撞击速度3.5 m/s，深度为到达硬脑膜层以下1.0 mm，在大脑中停留400 ms。分别在不同时间点对三组小鼠进行行为学检测。TBI后第7天的疲劳转棒实验结果显示，与TBI组比较，PBM组的平均跌落时间延长(P＜0.01)，运动距离显著增加(P＜0.01)，掉落时速度更快(P＜0.001，图1)。提示PBM治疗后小鼠的运动耐力和运动协调性得到改善。

TBI后第17天，采用Y迷宫实验评估1 064 nm PBM对TBI小鼠空间认知能力的影响，见图2。与Sham组比较，TBI组的新异臂探索时间显著下降(P＜0.001)，进入新异臂的次数减少(P＜0.001)，经过PBM治疗后，小鼠的新异臂探索时间(P＜0.05)和探索次数(P＜0.001)均提高。TBI后小鼠的交替百分比显著下降(P＜0.05)，PBM治疗后无显著变化(P＞0.05)。图2D是三组小鼠在Y迷宫中的运动路线图。以上结果表明，TBI后小鼠的空间记忆能力受损，经过PBM治疗后，小鼠的空间记忆能力得到显著提高。

2.2 组织与分子学检测结果

TBI后第7天分别对三组小鼠进行脑组织取材(图3A)，PBM组小鼠伤口处的面积和深度均显著轻于TBI组。为进一步探究1 064 nm LED对BDNF的影响，通过RT-qPCR检测BDNF的表达，结果见图3B，TBI后小鼠损伤区皮质周围组织表达的BDNF显著减少(P＜0.001)，经过PBM治疗后，BDNF的表达显著上调(P＜0.001)。

为了量化成熟的神经元，我们在损伤后的第4天对损伤区脑组织进行MAP2染色和平均荧光强度统计(图4)。结果显示，在TBI后的第4天，TBI组损伤区脑组织的神经元大多断裂、杂乱，且MAP2染色强度均显著低于Sham组(P＜0.001)，PBM组神经元的连续性恢复，MAP2染色荧光强度定量与Sham组相当(P＜0.001)。

在体内实验中，我们使用GFAP标记三组脑组织中星形胶质细胞。免疫荧光染色和强度定量数据显示，在第4天TBI组的损伤区观察到星形胶质细胞增大、分支扩大的现象，GFAP表达水平升高，荧光强度较Sham组增加(P＜0.001)，而PBM组的GFAP标记的荧光强度降低至Sham组水平(P＜0.001)，形态接近静息状态(图5)。

在体外实验中，我们进行了星形胶质细胞系C8-D1A的培养，并且使用LPS诱导C8-D1A的炎性表达，随后通过PBM治疗。RT-qPCR结果显示(图6)，PBM可以显著抑制C8-D1A细胞中炎症因子IL-6、IL-1β、TNF-α的表达(P＜0.001)。

3 讨论

TBI易导致认知和情绪障碍的发生，且对患者的生活质量和社会功能产生严重的负面影响，目前的治疗方法效果有限。干细胞治疗是一种新兴的改善TBI预后的方法，但相关研究尚不成熟，存在伦理问题，且干细胞具有成瘤的风险，治疗效果具有不确定性^[21]。虽然有研究报道，经颅磁刺激和经颅直流电刺激可通过调控皮质兴奋性改善TBI患者的认知功能和情绪状态，但对操作人员技术的要求较高，对于颅骨缺损或有金属置入物的患者禁用^[22]。越来越多研究表明，PBM对脑损伤、脊髓损伤等神经系统损伤以及神经退行性疾病有着积极的调节作用。不同波长PBM的不同干预模式可显著改善模型小鼠的神经行为学表现，其作用机制也不尽相同。

研究表明，光在组织中的穿透性取决于波长、辐照度、曝光时间、暴露面积、相干性和脉冲结构等，

基金资助

国家自然科学基金面上项目(81971167)