肺癌作为常见的恶性肿瘤类型,其发病率与致死率长期居于癌症前列
[1]。流行病学数据显示,在肺癌的病理分型中,非小细胞肺癌(non‑small cell lung cancer,NSCLC)约占肺癌亚型的85%
[2]。虽然目前手术、放化疗、靶向和免疫治疗等方法能控制肺癌进展,但其5年生存率仍然较低,且存在耐药性、药物不良反应、术后并发症等问题
[3]。而中医药治疗肺癌具有悠久的历史,大量的临床研究已经证实,中医药在增强化疗药物敏感性、逆转耐药性、减轻毒性、减少转移率和延长生存期等方面倍具优势
[4]。因此,挖掘中药抗肿瘤作用显得尤其重要,其作用机制值得深入研究。
白芍总苷胶囊(total glucosides of White Paeony capsules,TGP)是以传统药材白芍根茎提取物为核心成分的中药制剂,已被证实具有抗炎、抗氧化以及免疫调节等多种药理功效
[5,6]。有研究显示,TGP具有抗肿瘤作用,能抑制乳腺癌、前列腺癌、舌癌等肿瘤细胞的增殖、迁移和侵袭
[7‑9]。然而,关于TGP对肺癌特别是非小细胞肺癌的影响及作用机制的研究却鲜有报道。因此,本研究主要以肺腺癌细胞株A549和H1975为研究对象,检测TGP对NSCLC增殖、迁移、侵袭和凋亡的影响,并探究其作用机制,为临床治疗NSCLC提供新的理论支持和实验依据。
1 材料与方法
1.1 细胞株及培养
肺癌A549和H1975细胞,均购于中国科学院上海生命科学院细胞库,在含10%胎牛血清、1%双抗的1640培养基中,于37 ℃、5%CO2的培养箱中培养。
1.2 实验药物
TGP(宁波立华制药有限公司,批号:211109),在4 g白芍总苷中加入1 mL二甲基亚砜(DMSO),配置浓度为4 g/mL母液,放置于-20 ℃冰箱保存,正式实验时稀释为相应浓度。
1.3 主要试剂
LY294002(上海皓元生物医药科技有限公司,批号:HY‑10108‑10 ml);1640培养基、Annexin V‑FITC/PI凋亡试剂盒(武汉赛维尔生物科技有限公司,批号:G4531、G1511);CCK‑8试剂盒(上海碧云天生物技术有限公司,批号:C0037);磷脂酰肌醇3‑激酶(PI3K)、磷酸化磷脂酰肌醇3‑激酶(p‑PI3K)、蛋白激酶B(AKT)、磷酸化蛋白激酶B(p‑AKT)、B淋巴细胞瘤‑2(Bcl‑2)、Bcl‑2相关X蛋白(Bax)、活化的天冬氨酸蛋白水解酶‑3(Cleaved Casepase‑3)、E‑钙黏蛋白(E‑cadherin)、N‑钙黏蛋白(N‑cadherin)(英国Abcam公司,批号:Ab278545、Ab302985、Ab179463、Ab38449、Ab32503、Ab194583、Ab32042、Ab40772、Ab76011);甘油醛‑3‑磷酸脱氢酶(GAPDH)(美国proteintech公司,批号:10494‑1‑AP)。
1.4 主要仪器
荧光倒置显微镜(日本尼康公司,TE300),酶标仪(美国伯腾仪器有限公司,ELx800),流式细胞仪(美国贝克曼库尔特公司,A00‑1‑1102),凝胶成像仪(美国伯乐公司,Chemi Doc XRS+)。
1.5 CCK8实验检测细胞活力
将A549和H1975细胞按照3×103/孔的密度铺于96孔板,给予不同浓度TGP(0、0.4、0.8、1、2、3、4、5、6 g/L)干预24 h,每孔加入100 µL含10%CCK‑8的培养基,培养箱内继续培养1 h,使用酶标仪检测吸光OD450 nm数值。计算细胞存活率及细胞半数抑制浓度(IC50)。细胞存活率=(试验组OD值/对照组OD值)×100%。
1.6 细胞分组与给药
根据CCK‑8实验结果,将后续实验细胞分为5组:对照组(Control)、TGP低剂量组(TGP‑L)、TGP高剂量组(TGP‑H)、LY294002组(PI3K通路抑制剂)、TGP高剂量+LY294002组(TGP‑H+LY294002)。对照组给予常规培养,TGP低、高剂量组分别予1 g/L和4 g/L的TGP处理,LY294002组给予10 nmol/L的LY294002处理
[10],TGP高剂量+LY294002组给予4g/L的TGP和10 nmol/L的LY294002处理。
1.7 克隆形成实验检测细胞增殖
调整A549和H1975细胞密度为1×103/孔,接种至6孔板,待细胞形成小群落时,按照1.6的方法进行分组与处置,置于细胞培养箱继续培养2周,进行甲醛固定,结晶紫染色,拍照并计数。
1.8 划痕实验检测细胞迁移
用Marker笔在6孔板背部画直线,每孔横穿3条直线,将细胞按照1×105/孔的密度铺到6孔板中,待细胞融合率达到80%时,用1 mL枪头做笔直划痕,磷酸盐缓冲溶液(PBS)洗涤后,加入含有2%胎牛血清的1640培养基,按照1.6的方法进行分组与处置,分别于0 h和48 h拍照记录,用ImageJ软件处理图像。
1.9 Transwell检测细胞侵袭
Transwell小室置于24孔板中,上室内加入按照1∶8稀释后的基质胶60 µL,培养箱内孵育1 h,吸除残余液体,上室加入无血清培养的细胞200 µL(1×106个细胞/mL),下室加入含有20%血清的1640培养基600 µL,按照1.6的方法进行分组与处置24 h后,PBS洗涤,甲醛固定,结晶紫染色,倒置显微镜下拍照计数。
1.10 流式细胞术检测细胞凋亡
按照1.6的方法进行分组与处置24 h后,消化离心收集细胞,预冷PBS洗涤,100 μL 1×Binding buffer重悬细胞,加入10 μL Annexin V‑FITC溶液与5 µL PI试剂,室温下避光反应15 min,上流式细胞仪检测凋亡率。
1.11 Western blot检测上皮‑间充质转化(EMT)相关蛋白、凋亡相关蛋白和PI3K/AKT信号通路相关蛋白的表达水平
按照1.6的方法进行分组与处置24 h后,进行蛋白裂解并收集蛋白样品,BCA法测定总蛋白浓度,之后进行上样,电泳,转膜,封闭,抗体孵育,曝光显影,蛋白条带使用ImageJ软件处理分析。
1.12 统计学处理
所有数据均通过GraphPad Prism 9.0软件统计分析。计量资料以()表示,多组比较用单因素方差分析法,两组对比采取独立样本t检验。P<0.05为差异具有统计学意义。
2 结果
2.1 TGP对NSCLC细胞活力的影响
CCK‑8实验结果显示,当TGP浓度在0~4 g/L范围,A549和H1975细胞存活率均呈剂量相关性降低,计算IC
50值分别为4.79 g/L和5.39 g/L,因此后续实验设置TGP低剂量组为1 g/L,TGP高剂量组为4 g/L。见
图1。
2.2 TGP对NSCLC细胞增殖的影响
克隆形成实验结果显示,与对照组相比,TGP低剂量组、LY294002组、TGP高剂量组、TGP+LY294002组,A549和H1975细胞克隆形成数量明显减少(均
P<0.05);与TGP低剂量组相比,TGP高剂量组的A549和H1975细胞克隆形成数量明显减少(
P<0.05);与TGP高剂量组或者LY294002组相比,TGP高剂量+LY294002组的A549和H1975细胞克隆形成数量明显减少(均
P<0.05)。见
表1。
2.3 TGP对NSCLC细胞迁移的影响
划痕实验结果显示,与对照组相比,TGP低剂量组、LY294002组、TGP高剂量组、TGP+LY294002组,A549和H1975细胞迁移率明显降低(均
P<0.05);与TGP低剂量相比,TGP高剂量组的A549和H1975细胞迁移率明显降低(
P<0.05);与TGP高剂量组或者LY294002组相比,TGP高剂量+LY294002组的A549和H1975细胞迁移率明显降低(均
P<0.05)。见
表2。
2.4 TGP对NSCLC细胞侵袭的影响
Transwell侵袭实验结果显示,与对照组相比,TGP低剂量组、LY294002组、TGP高剂量组、TGP+LY294002组A549和H1975细胞的侵袭细胞数明显减少(均
P<0.05);与TGP低剂量组相比,TGP高剂量组的A549和H1975细胞的侵袭细胞数明显减少(
P<0.05);与TGP高剂量组或者LY294002组相比,TGP高剂量+LY294002组的A549和H1975细胞的侵袭细胞数明显减少(均
P<0.05)。见
图2。
2.5 TGP对NSCLC细胞凋亡的影响
流式细胞术实验结果显示,与对照组相比,TGP低剂量组、LY294002组、TGP高剂量组、TGP+LY294002组,A549和H1975细胞的凋亡率升高(均
P<0.05);与TGP低剂量组相比,TGP高剂量组的A549和H1975细胞的凋亡率明显升高(
P<0.05);与TGP高剂量组或者LY294002组相比,TGP高剂量+LY294002组的A549和H1975的细胞凋亡率明显升高(均
P<0.05)。见
图3。
2.6 TGP对NSCLC细胞的EMT相关蛋白、凋亡相关蛋白和PI3K/AKT信号通路相关蛋白表达水平的影响
Western blot实验结果显示,与对照组相比,TGP低剂量组、LY294002组、TGP高剂量组、TGP+LY294002组,A549和H1975细胞的
E‑cadherin、Bax、Cleaved caspase‑3蛋白的表达升高,
N‑cadherin、Bcl‑2、p‑PI3K/PI3K、p‑AKT/AKT蛋白表达下降(
P<0.05),差异具有统计学意义,见
图4~
6;与TGP低剂量组相比,TGP高剂量组的
E‑cadherin、Bax、Cleaved caspase‑3蛋白的表达明显升高,
N‑cadherin、Bcl‑2、p‑PI3K/PI3K、p‑AKT/AKT蛋白表达明显下降(
P<0.05),差异具有统计学意义;与TGP高剂量组或者LY294002组相比,TGP高剂量+LY294002组的
E‑cadherin、Bax、Cleaved caspase‑3蛋白表达明显升高,
N‑cadherin、Bcl‑2、p‑PI3K/PI3K、p‑AKT/AKT蛋白表达明显下降(均
P<0.05)。
3 讨论
肺癌是威胁人类健康的主要恶性肿瘤,是癌症相关死亡的主要原因
[1]。尽管免疫疗法和靶向疗法的发展改善了肺癌患者预后,但其总体治愈率和生存率仍然很低,全球癌症负担依然很重
[11]。因此,寻求治疗肺癌的新药物并探究其抗癌机制至关重要。近年来,中药的天然化学活性成分在恶性肿瘤的防治中作用显著
[12]。TGP作为我国传统中药白芍的主要天然活性成分,进一步探索其在肺癌领域中的潜在作用,或许能为肺癌的治疗提供新的视角和策略。
增殖是癌细胞的基本特点,因此抑制肿瘤细胞的增殖是治疗肿瘤的一种重要方式。而检测肿瘤细胞的增殖情况是评价抗肿瘤药物是否有效的重要指标。本课题首先通过CCK‑8实验检测不同浓度TGP干预NSCLC细胞株A549和H1975后对细胞活力的影响。结果显示,随着给药浓度的增加,肿瘤细胞活力逐渐下降;随后实验加入PI3K/AKT信号通路抑制剂LY294002共同干预,进行克隆形成实验检测NSCLC细胞的增殖情况。结果显示,TGP和LY294002均能抑制NSCLC细胞的增殖,且TGP高剂量组的抑制效果优于TGP低剂量组;二者联合使用能增强抑制NSCLC细胞的增殖。
恶性肿瘤生长和扩散的关键特征之一是肿瘤的转移和侵袭。上皮细胞与间充质细胞之间的转化(EMT)已被证明在肿瘤转移和侵袭中起关键作用
[13]。上皮属性蛋白
E‑cadherin和间质属性蛋白
N‑cadherin是EMT过程中重要的标志性蛋白,在肿瘤的EMT过程中,
E‑cadherin作为一种肿瘤抑制因子,其表达下调,会伴随
N‑cadherin上调,这种钙黏蛋白的转换会促进肿瘤细胞的转移和侵袭
[14]。本研究通过划痕实验和Transwell侵袭实验显示,TGP能减弱NSCLC细胞的迁移和侵袭能力;进一步Western blot实验结果提示,TGP可上调
E‑cadherin蛋白的表达,下调
N‑cadherin蛋白的表达,表明TGP可以抑制NSCLC细胞的迁移和侵袭,延缓EMT的发生。且本研究还发现,TGP与LY294002联合干预能显著抑制NSCLC细胞迁移和侵袭的能力,更有效的延缓EMT的进程。
细胞凋亡是一种程序性的细胞死亡。线粒体介导的内源性凋亡途径,是细胞凋亡的一种主要途径
[15]。Bcl‑2家族(包括抗凋亡因子Bcl‑2与促凋亡因子Bax)和Caspase家族中的凋亡执行因子Caspase‑3是细胞凋亡的关键调节因子
[16]。在内源性凋亡途径中,Bcl‑2和Bax能激活下游的凋亡执行因子Caspase‑3成为Cleaved caspase‑3,最终诱导细胞凋亡
[17]。本研究中,发现TGP干预NSCLC细胞后,细胞的凋亡率增加。进一步Western blot实验结果提示,TGP处理NSCLC细胞后Bcl‑2蛋白表达下降,Bax和Cleaved caspase‑3蛋白表达升高,且与LY294002联合干预对上述线粒体途径凋亡蛋白的影响更加明显。说明TGP是通过上调Bax、Cleaved caspase‑3表达,下调Bcl‑2表达,激活线粒体途径,诱导NSCLC细胞发生内源性途径凋亡。
PI3K/AKT信号通路是各类癌症的主要信号通路,可参与调控多个生物学过程,与肿瘤发生和疾病进展密切相关
[18]。在促癌信号下,PI3K发生磷酸化,激活下游靶标AKT,活化的AKT再激活或抑制下游效应因子参与调节细胞的增殖、迁移、侵袭和凋亡
[19]。有研究显示,PI3K/AKT信号通路激活可促进NSCLC进展与转移
[20]。现有诸多报道证明,中药可以通过阻断PI3K/AKT信号通路激活,抑制NSCLC细胞的恶性生物学行为,进一步发挥抗肿瘤作用
[21‑23]。因此,阻断该通路的激活可能成为一种潜在的治疗NSCLC的方法。此前已有研究发现,TGP可通过抑制PI3K/AKT信号通路,抑制喉癌Hep‑2细胞的增殖、侵袭和迁移能力
[24]。但TGP是否可以通过调控PI3K/AKT信号通路发挥抗NSCLC作用尚不清楚。本课题前面实验研究已证实TGP可以抑制NSCLC的恶性表型,结合PI3K/AKT信号通路在肿瘤细胞生物学功能中的重要作用,假设在NSCLC中,TGP可能通过抑制PI3K/AKT信号通路发挥抗肿瘤作用。结果显示,TGP能下调NSCLC细胞的p‑PI3K/PI3K、p‑AKT/AKT蛋白表达水平,与LY294002发挥同样的抑制效果;且TGP与LY294002联合干预,NSCLC细胞的p‑PI3K/PI3K、p‑AKT/AKT蛋白表达水平显著下调。提示TGP可能通过抑制PI3K/AKT信号通路影响NSCLC细胞的生物学功能。因此,TGP可能是一种天然的PI3K/AKT信号通路抑制剂,有潜力成为非小细胞肺癌患者临床治疗的新型抗肿瘤药物。
综上,TGP可以抑制肺癌A549和H1975细胞增殖、迁移和侵袭,并促进细胞发生线粒体途径凋亡,其机制可能与阻断PI3K/AKT信号通路有关,且与单用TGP和LY294002相比,TGP联合LY294002干预可明显增强对NSCLC细胞生物学功能的影响,能更有效地抑制肿瘤细胞的发展。但本研究仅在体外实验探讨TGP的抗肿瘤效果及作用机制,未来将完善异种移植动物模型研究,进一步在体内验证其有效性和安全性。
作者贡献度说明:
孙露露:实验研究、数据处理、论文写作和投稿;吴晓、季娟娟:收集数据与实验研究;郁文越、宝音:文献检索;朱佳:实验指导和论文修改。
所有作者声明不存在利益冲突关系。