虎(
Panthera tigris)是国家一级重点保护野生动物
[1],也是国家林业和草原局“十四五”规划中列出的12种“旗舰种、关键种”之一
[2],曾广泛分布于我国东北、华南、华中乃至新疆等地。华南虎(
P.t.amoyensis)作为我国特有的虎亚种
[3],其种群的健康状况关乎物种延续。目前,尽管国内动物园及其他动物保育机构已保育了一定数量的虎,但在圈养或半圈养条件下,种群近交系数普遍偏高
[4],其生活环境、营养组成和机能状态与野生个体存在很大差异,使得疾病防控面临严峻挑战。
猫杯状病毒(Feline calicivirus,FCV)为杯状病毒科(Caliciviridae)水疱性病毒属(
Vesivirus)成员
[5],是引发猫科(Felidae)动物呼吸道疾病的重要病原体。感染FCV的猫通常表现为口腔疼痛性糜烂和轻度上呼吸道症状,严重时发展为致死性肺炎或突发性死亡
[6-8]。狮(
Panthera leo)、猎豹(
Acinonyx jubatus)和虎等大型猫科动物感染该病毒的情况也时有发生
[9-13]。尽管FCV的研究在家猫群体中已较为深入,但在大型猫科动物领域,相关研究主要集中于病原检测、分子生物学鉴定和致病性分析等方面
[11,13],而新型虎源猫杯状病毒(Feline calicivirus isolated from tiger,TCaV)的病毒特性、传播规律和防控治疗等关键信息仍有待填补
[14]。
荧光定量PCR技术凭借高灵敏度、强特异性和精确定量等优势,已在病毒核酸检测领域被广泛应用
[15-16]。在前期研究中,本团队通过宏病毒组学高通量测序技术,首次从一例突发死亡的华南虎组织病料中鉴定出一株新型TCaV毒株,命名为LYH1224。经NCBI BLAST比对,该毒株基因组与目前已知FCV序列的相似性最高,为85.14%(未公开发表)。为实现对新型TCaV的快速、准确检测以及日常监控,本研究旨在建立一种绝对荧光定量PCR检测方法。
本研究围绕TCaV LYH1224株的基因组序列设计特异性引物,通过优化反应体系和条件,建立了荧光定量PCR检测方法,旨在填补大型猫科动物病毒学检测技术的空白,为华南虎等大型猫科动物的疫病防控提供关键技术支撑。
1 材料与方法
1.1 材料
所用病原材料包括新型TCaV(LYH1224株)、FCV、猫泛白细胞减少症病毒(Feline panleukopenia virus,FPV)、猫冠状病毒(Feline coronavirus,FCoV)、猫疱疹病毒(Feline herpesvirus,FHV)、猫星状病毒(Feline astrovirus,FeAstV)和猫嵴病毒(Feline kobuvirus,FeKoV)等病料或病毒培养液。临床样本为2019—2024年采集自71只大型猫科动物的79份样本(组织、血液或粪便等),物种包括东北虎(Panthera tigris altaica)、华南虎、孟加拉虎(P.t.tigris)、狮和豹(P.pardus)等,采集地区涵盖河南、山东、上海、湖南、广东和广西等地。病毒材料及临床样本均由广州动物园野生动物微生物实验室(以下简称“本实验室”)保存。
1.2 引物设计与合成
对经宏病毒组学测序拼接的基因序列,使用Primer premier 5.0软件设计6条特异性引物,并组合成4组引物对:4158S/4270A、4160S/4270A、5074S/5269A和5074S/5290A(
表1),交由北京擎科生物科技股份有限公司合成。
1.3 质粒标准品制备
将较长的4158S/4270A、5074S/5290A引物对的PCR产物序列进行串联,送至北京擎科生物科技股份有限公司合成,然后把合成的序列连接至pMD18-T载体,并转化至Top10感受态细胞。将经测序验证正确的重组质粒命名为p-TCaVq,并使用上述4组引物对进行PCR验证。使用质粒小提试剂盒抽提重组质粒,测定其纯度和浓度,当OD260/OD280为1.8~2.0时,质粒纯度符合要求。根据质粒浓度计算其DNA拷贝数浓度,使用ddH2O倍比稀释后,将其作为荧光定量PCR的质粒标准品。
1.4 荧光定量PCR反应体系与程序优化
以p-TCaVq质粒标准品为模板,使用TB Green Premix Ex Taq Ⅱ(Tli RNaseH Plus)试剂,在CFX96实时荧光定量PCR仪上进行反应条件优化。通过比较不同引物终浓度(0.4 μmol/L、0.5 μmol/L)及不同退火时间(30 s、45 s)的组合,以确定最佳反应体系与程序。
1.5 标准曲线建立
以10倍倍比稀释的质粒标准品(1 × 101~1 × 109拷贝/μL)为模板,使用优化后的荧光定量PCR体系和程序进行扩增,每个浓度梯度设置2个重复。以质粒标准品拷贝数浓度的对数为横坐标,检测得出的Ct值为纵坐标,绘制标准曲线。
1.6 灵敏度试验
以10倍倍比稀释的质粒标准品(1 × 100~1 × 109拷贝/μL)为模板,采用优化后的荧光定量PCR体系和程序进行扩增,每个浓度梯度设置2个重复,以确定可检测的最低拷贝数浓度。同时,将检测结果与常规PCR进行比较,以评价本方法的敏感性。
1.7 特异性试验
为评估所建立方法的特异性,使用优化后的荧光定量PCR体系和程序,对常见的大型猫科动物病原(TCaV LYH1224株、FCV、FPV、FCoV、FHV、FeAstV和FeKoV等病料或病毒培养液)进行检测。所有检测样本的核酸均使用AxyPrep体液病毒DNA/RNA小量抽提试剂盒,从研磨液上清或病毒培养液中抽提。对于DNA病毒(FPV、FHV),将抽提的核酸直接作为模板进行检测;对于RNA病毒(TCaV LYH1224株、FCV、FCoV、FeAstV和FeKoV),则先将抽提的核酸使用PrimeScript™ Ⅱ 1st Strand cDNA Synthesis Kit合成为cDNA后,再作为模板进行检测。
1.8 重复性试验
为评估所建立方法的重复性,选取4个浓度梯度(1 × 108、1 × 105、1 × 104、1 × 103拷贝/μL)的质粒标准品,采用优化后的荧光定量PCR体系和程序进行扩增。对每个浓度样品在同一组内重复检测3次,以评估组内重复性;设置3个独立小组,分别进行试验,以评估组间重复性。最后,分别计算组内与组间重复Ct值的变异系数(CV),以综合评价该方法的重复性与稳定性。
1.9 临床样品检测
采用优化后的荧光定量PCR体系和程序,对本实验室保存的79份组织、血液或粪便等临床样品进行检测,以筛查新型TCaV。其中,组织、粪便样品需与无菌PBS混合,经研磨、冻融和离心后,取上清液备用。检测样品的核酸提取方法同1.7特异性试验。
2 结果
2.1 重组质粒验证及质粒标准品制备
重组质粒验证:以抽提的p-TCaVq重组质粒DNA为模板,采用4对引物(4158S/4270A、4160S/4270A、5074S/5269A和5074S/5290A)进行PCR扩增。结果显示,所有引物对均能特异性扩增出预期大小的片段(
图1),证明该质粒可作为检测模板。
标准品制备:经测定,抽提制备的p-TCaVq重组质粒的OD260/OD280为1.8~2.0,符合纯度要求,其质量浓度为200 ng/μL,换算为拷贝数浓度为6.037 × 1010拷贝/μL。将此质粒用ddH2O稀释至1010拷贝/μL后,再进行10倍梯度稀释,作为质粒标准品待用。
2.2 荧光定量PCR体系与程序优化
以p-TCaVq质粒标准品为模板,通过设置不同引物终浓度及退火时间,对4组引物对的扩增效率(
E)和相关系数(
R2)进行比较,以确定最佳反应体系和程序。结果显示,当4160S/4270A引物对终浓度为0.5 μmol/L、退火时间为45 s时,扩增效率最佳(101.8%),且相关系数最高(
R2 = 0.996)(
表2)。由此,确定TCaV荧光定量PCR的最佳反应体系(20.0 μL):SYBR Mix 10.0 μL、4160S/4270A引物终浓度0.5 μmol/L、核酸模板2.0 μL,最后以ddH
2O补至20.0 μL。最适反应程序:95 ℃预变性30 s;95 ℃变性5 s,60 ℃退火延伸45 s,40个循环。
2.3 标准曲线建立
在2.2节确定的最佳条件下,将不同浓度梯度(1.0 × 10
1~1.0 × 10
9拷贝/μL)的p-TCaVq质粒标准品作为模板进行荧光定量PCR扩增。以标准品浓度的对数值为
x轴,测得的
Ct值为
y轴,绘制标准曲线。结果显示,4160S/4270A引物对的标准曲线方程为
y = -3.280
x + 36.992
,E为101.8%,
R2为0.996(
图2),表明
Ct值与各标准品拷贝数浓度对数之间具有良好的线性关系。
2.4 灵敏度试验
选取10倍倍比稀释的p-TCaVq质粒标准品(1.0 × 10
0~1.0 × 10
9拷贝/μL)作为模板,比较本研究建立的荧光定量PCR和常规PCR方法的灵敏度。由
图3可见,荧光定量PCR方法在所有浓度梯度下均能检测到荧光信号,且在1.0 × 10
1~1.0 × 10
9拷贝/μL时,有完整的扩增曲线,其最低检测限为2.0 × 10
1拷贝/反应(
图3A);而常规PCR方法仅在1.0 × 10
5~1.0 × 10
9拷贝/μL的高浓度范围内可观察到特异性扩增条带,其最低检测限为10
5拷贝/反应(
图3B)。结果表明,建立的TCaV荧光定量PCR方法敏感性较强,比常规PCR方法的灵敏度高出约4个数量级。
2.5 特异性试验
采用建立的荧光定量PCR法对TCaV LYH1224分离株、FCV、FPV、FCoV、FHV、FeAstV和FeKoV的cDNA或DNA进行检测,结果仅TCaV LYH1224样品呈特异性阳性反应,其余病毒及阴性对照均无扩增曲线,结果为阴性(
图4),表明此方法具有良好的特异性。
2.6 重复性试验
选取4个浓度梯度(1×10
8、1×10
5、1×10
4、1×10
3拷贝/μL)的质粒标准品作为模板,分别进行组内和组间重复性试验。结果显示,所有浓度下组内和组间试验的
CV均小于2.50%,表明该方法的重复性和稳定性较好(
表3)。
2.7 临床样品检测
为调查新型TCaV在我国大型猫科动物中的流行情况,使用建立的荧光定量PCR方法,对2019—2024年从河南、山东、上海、湖南、广东和广西等地采集的71只大型猫科动物的79份组织、血液和粪便等临床样本(
表4)进行检测。样本包括东北虎、华南虎和孟加拉虎等60只虎的68份样本,以及与虎亲缘关系较近的美洲豹(
P. onca)、豹和狮等其他11只大型猫科动物的11份样本。
设定Ct平均值小于30为阳性判定标准,结果显示:在79份样本中,共检出6份阳性,样本阳性检出率为7.59%(6/79);进一步分析表明,6份阳性样本均为组织样本,其病毒拷贝数为105.88~107.89拷贝/g,且均来源于2只发病死亡的华南虎,即个体阳性检出率为2.82%(2/71),且这2只阳性华南虎来自于同一保育机构,提示TCaV可能已在该华南虎种群中小范围传播。
3 讨论
已有研究表明,FCV在全球家猫群体中广泛流行,是最常见的病毒传染性病原之一
[5,17]。在大型猫科动物中,FCV感染也时有发生,如高玉伟等
[10]从猎豹与虎中分离到FCV;杨清等
[12]从贵州省某动物园死亡的东北虎脾脏中分离得到1株FCV;周易等
[18]对40份东北虎血液样本进行检测,发现4份FCV阳性。但关于大型猫科动物源FCV的深入研究仍然较少,尤其是新型TCaV亟需开展相关研究以助力大型猫科动物的疫病防控与种群保护。
在前期研究中,本团队利用宏病毒组学测序和生物信息学分析,成功鉴定出一种新型TCaV,即LYH1224株,该毒株基因组序列与目前已知的FCV序列相似性较低。该毒株的鉴定不仅拓展了大型猫科动物相关病毒的种类,也为后续开展病毒的遗传特性、进化规律等研究奠定了基础,为深入了解FCV在猫科物种间的传播与演化路径提供了关键线索。
在检测方法的构建方面,本研究针对TCaV LYH1224株设计特异性引物,通过对反应体系和条件的细致优化,建立了一种灵敏度高、特异性强的荧光定量PCR方法。经验证,该方法重复性佳,最低检测限可达2×101拷贝/反应。与常规PCR方法相比,荧光定量PCR检测耗时更短,且能检测出低病毒载量样本,显著提高了检测效率和准确性。这一方法适用于临床中低载量病毒的筛查,尤其适用于疫病早期诊断和常态化监测,为及时采取防控措施争取了关键窗口期。
临床样本检测结果显示,在本实验室保存的大型猫科动物临床样本中,TCaV的样本阳性检出率为7.59%,个体阳性率为2.82%,且2例阳性个体均来自同一保育机构。这一发现表明,TCaV已在华南虎种群内小范围传播,若不及时防控,极易引发大规模疫情,对种群健康构成严重威胁。因此,本研究结果警示,必须强化对华南虎等大型猫科动物的疫病监测,建立常态化监测体系,以阻断病毒的进一步扩散。
综上所述,本研究建立的荧光定量PCR方法为国内大型猫科动物新型TCaV的快速检测提供了可靠的技术支持,在临床诊断、疫病监测以及防控决策制定等方面具有重要应用价值。然而,本实验室保存的临床样本,在地域和时间跨度上具有局限性,其结果可能无法全面反映新型TCaV在自然环境中的真实流行情况。未来,需进一步扩大样本采集范围,开展多地区、多时间点和多物种的监测,以深入探究新型TCaV的传播机制与流行规律。此外,可参考其他猫科病毒研究的成功经验,开展病毒致病性和免疫原性研究,为开发针对性的疫苗和治疗药物提供理论支撑,从而切实保障华南虎等大型猫科动物的种群安全。
4 结论
本研究成功建立了一种新型TCaV荧光定量PCR检测方法。该方法特异性强、灵敏度高、重复性佳,且检测速度快于常规PCR方法,为我国大型猫科动物新型TCaV的快速检测、流行病学监测及早期预警提供了可靠的技术工具,为新型TCaV的有效防控奠定了坚实基础。