0 引言
抑郁症作为一种常见的精神障碍,其典型症状包括情绪低落、兴趣减退以及认知功能和睡眠方面的异常,严重影响患者的生活品质,使其社会功能难以有效维系
[1]。然而,目前的抗抑郁治疗手段(如药物和心理治疗)效果有限,且药物常伴随副作用,存在个体化效果差异和治疗耐受性等问题
[2-4]。探索更为有效、低副作用的干预措施已成为抑郁症研究的热点与难点。
慢性温和不可预知应激(Chronic Unpredictable Mild Stress, CUMS)模型是研究抑郁症发病机制的经典动物模型,其能有效模拟人类抑郁症的核心症状和病理特征,主要包括快感缺失(糖水偏爱率降低)、行为抑制、活动能力下降及体重减轻等
[5]。在CUMS大鼠模型中,研究者已观察到神经递质失衡、炎症反应和神经可塑性受损等多方面的病理变化
[6-9]。然而,现有研究多集中于单一的生物学假说,未能充分揭示抑郁症复杂的代谢紊乱机制
[10-12]。
高强度间歇性训练(High-Intensity Interval Training, HIIT)作为一种新兴的运动模式,以其高效率和多系统调节效应在心理健康领域受到关注
[13-14]。既往研究表明,HIIT不仅能够显著改善心肺功能、胰岛素敏感性及脂质代谢水平,还可调节炎症因子表达、促进神经可塑性并提高脑源性神经营养因子(Brain-Derived Neurotrophic Factor, BDNF)水平,从而改善抑郁样行为表现;在动物模型中,HIIT已被证实可提高糖水偏爱率、提高活动水平,并调节5-羟色胺(5-Hydroxytryptamine, 5-HT)、多巴胺(Dopamine, DA)等单胺类神经递质水平,提示其具有明确的抗抑郁效应
[15]。HIIT运动可显著提高外周乳酸水平
[16],乳酸不仅是代谢产物,还可作为信号分子通过单羧酸转运体(monocarboxylate transporters, MCTs)跨越血脑屏障(blood-brain barrier, BBB)
[17],参与中枢能量代谢及神经功能调节
[18]。
早在20世纪70年代,Niklasson等
[19]研究报道抑郁症患者存在BBB通透性改变,近年来,BBB损伤进一步被证实为抑郁症的重要病理机制之一。S100B(calcium binding protein B, S100B)作为BBB完整性丧失的外周生物标志物
[20],在抑郁症患者的血清和脑脊液中显著升高
[21]。血脑屏障通透性改变可导致S100B由中枢释放至外周循环。然而,HIIT诱导的乳酸变化是否可以通过调节S100B的血液代谢进而影响大鼠BBB改善抑郁样行为尚未可知。近年来,代谢组学技术的兴起为研究抑郁症的病理机制提供了新的视角,该技术通过分析生物体内代谢物的动态变化,能够为机制研究和干预措施开发提供重要依据。
本研究以CUMS大鼠为模型,通过行为学检测,评估4周HIIT对其抑郁样行为的改善效果,并结合代谢组学技术和生理生化指标测试结果全面解析其血清代谢机制,并通过网络药理学方法构建HIIT作用的靶点-通路网络,深入揭示HIIT改善抑郁症状的血清代谢物谱变化机制,为基于代谢标志物的运动处方开发和制定提供理论依据。
1 材料与方法
1.1 实验动物分组
选取体重在180~200 g的8周龄SD大鼠48只,经1周适应性喂养后,对其进行体重测量,糖水偏爱实验与旷场实验的基线测试。将大鼠随机分为空白对照组(C)、模型组(M)、运动对照组(HC)、运动模型组(HM),每组12只。CUMS抑郁大鼠模型的构建以Willner等
[22]方法为基础,结合本研究需求由课题组进行了改进
[23]。实验方案经山西大学科学研究伦理委员会批准(SXULL2022069)。
1.2 抑郁大鼠模型建立
应激源共9种,分别为热刺激;4℃冰水游泳;超声刺激;夹尾处理;昼夜节律干扰;足底电击刺激;禁水;躯体束缚以及禁食处理,每天1种,每种刺激随机实施3~4次,持续28天。空白对照组不给予任何刺激,保持正常喂饲和饮水(见
图1)。建模阶段每周需检测指标包括:各组大鼠体重变化数值、糖水偏好程度百分比、旷场测试中运动式数及站立次数等行为学参数,详细流程参考本课题组前期已建立的方法
[23]。
1.3 HIIT运动干预方案
HIIT运动方案借鉴课题组前期模式进行
[9]:采用动物执行3 min高强度运动结合1 min低强度恢复的无间歇的循环模式。训练前后均以15 m/min的速度分别进行5 min热身和5 min放松。每周训练5天,休息2天,共4周(见
表1)。
1.4 行为学检测
于每周末实施行为学测试,包括糖水偏爱实验与旷场实验;详细流程参考本课题组前期已建立的方法
[9]。
1.5 ELISA
采用ELISA试剂盒检测大鼠血清样本中5-HT(Andy gene 公司, AD2930Ra)、DA(Andy gene 公司,AD12522Hu)、S100B蛋白(Andy gene 公司, AD2397Ra)和谷氨酸(Glutamic acid,GLU,Andy gene 公司,AD3298Ra)含量,具体操作参照试剂盒说明书进行。
1.6 LC-MS代谢组学检测
检测仪器为高分辨液质联用仪 (UPLC-Q-Exactive HF, Thermo Fisher Scientific, 美国)。
1.7.1 血清样本制备
从 ℃冰箱取出血清样本,于4 ℃条件下解冻,吸取100 uL血清置于2 mL EP管中,加入0.1%甲酸乙腈200 uL,充分混匀并离心(4 ℃, 13 000 r / min, 15. min),取上清液待测。每个样本取10·uL 混合制成 QC 样本。
1.7.2 LC-MS分析条件
液相条件:流动相 A,纯水(10mM乙酸铵、0. 1%氨水,体积分数);流动相 B,乙腈。梯度洗脱(所有百分含量均为体积分数):0 min ~0. 5 min,5% A;0. 5 min ~9 min,5%~30% A;9 min ~11 min,30% A;11 min ~13 min, 30%~60% A;13 min ~13. 5 min,60%~5% A. 13. 5 min ~16 min,5% A进样量2 ul;流速0. 3 mL/ min;Waters. ACQUITY UPLC BEH Amide Column, 130A色谱柱(2. 1 mm X 100 mm,1. 7 µm),柱温设定在40℃。质谱条件:采用负离子模式下的HESI离子源进行检测。具体参数设定如下:鞘气=55 arb,辅助气体=15 arb,吹扫气体=3 arb,喷雾电压(-)=2. 5 kV,毛细管温度为=320 ℃,加热器温度=450 ℃, S - lens RF 水平=65.0,扫描范围=60-900( m / z );分辨率=35, 000;最大注入时间=120 ms;自动增益控制( AGC )=1e6 ions。
1.7.3 LC-MS数据的处理
于 Compound Discoverer 3. 1 软件(Thermo Fisher, USA)完成各组样本数据预处理工作,以获取匹配和对齐的峰值数据,这些数据经过Excel软件进行归一化处理后,使用SIMCA-P 14. 1(Umetrics, Sweden)对所导入数据依次进行主成分分析(PCA)、偏最小二乘判别分析(PLS-DA)与正交偏最小二乘判别分析(OPLS-DA)。筛选标准方面:通过S-plot图且VIP>1 的标准,以及独立样本t检验(P <0. 05)结果,筛选所得数据为所需组间的显著差异代谢物。
根据HMDB,Massbank,Metlin, Lipid Maps等多个专业在线数据库资源,结合二级质谱碎片信息和标准品比对完成物质确认。经鉴定获得的差异性代谢物数据,由MetaboAnalyst 5. 0 (
https://www. metaboanalyst. ca)实施通路富集分析操作,使用 KEGG数据库和文献资料共同辅助解析相关代谢途径。
1.8 网络药理学数据的处理
(1)以“Depression”“High-intensity Interval Training”作为筛选词,在 Genecards数据库中进行检索,将所得数据筛选并去除重复项,分别得到 “HIIT” 和 “抑郁症” 各自相关的基因靶点。
(2)筛选两者的交集靶点,随后使用STRING11. 5 平台完成蛋白质-蛋白质相互作用(Protein-Protein Interaction Networks, PPI)网络的构建。使用Cytoscape3. 7. 2 软件中的“Network Analyzer”工具开展数据可视化分析。
(3)将上述所得数据导入 Metascape3. 5 平台,进行基因本体(Gene Ontology,GO)功能富集分析与京都基因与基因组百科全书(Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes, KEGG)信号通路富集分析。采用 Origin Lab 2018 软件分别绘制 GO 功能分析结果柱状图和 KEGG 通路气泡图。
(4)使用 Cytoscape 3. 7. 2 搭建HIIT 抗抑郁的靶点-通路网络,并结合 Network Analyzer 工具进行网络拓扑分析。利用 CytoHubba 插件筛选出 HIIT 抗抑郁的核心靶点
[24]。
1.9 统计分析
数据处理采用IBM SPSS Statistics 26软件完成计算工作,由GraphPad Prism 10. 1软件进行图形绘制。符合正态分布特性的数值采用均数±标准差()的形式呈现,双因素方差分析作为主要分析法来对行为学指标进行评估,应用多元统计分析方法对代谢组数据进行处理;组间差异的显著性判断则通过t检验来完成。P值<0. 05则被认为具有统计学意义。网络药理学分析结果使用Metascape 3. 5数据库进行生物信息富集分析。
2 结果
2.1 4周HIIT干预前后CUMS大鼠抑郁样行为的变化
针对动物行为学实验,糖水偏好测试与旷场测试可评估其享乐动机水平、运动能力及焦虑状态
[25-26]。经4周CUMS干预后,与C组相比,M组、HM组体重下降明显、糖水偏爱率降低、穿越格数与直立行为次数显著降低(
P <0.01,
P <0.05,
图2),一系列数据表明CUMS模型造模成功。
经过4周HIIT干预后:与C组相比,M组与HC组的体重显著降低(P <0.01),HM组体重显著低于M组(P <0.05);M组糖水偏爱率比C组显著降低,HM组糖水偏爱率较M组明显回升(P <0.05);与C组相比,M组穿越格数和直立次数显著降低(P <0.01),HM组穿越格数和直立次数较M组呈显著回调趋势(P <0.01)。
2.2 4周HIIT干预后CUMS大鼠血清生化指标的变化
2.2.1 单胺类递质变化
关于抑郁症发病机制的解释中,经典的单胺类神经递质假说认为,主要产生于大脑及肾上腺部位的神经递质5-HT和DA,其临床数据表明浓度下降现象与抑郁症发作存在关联
[27-28]。本研究通过检测各组大鼠血清中的5-HT、DA浓度发现,M组5-HT、DA浓度较C组明显降低(
P <0.01,图
3(a),
3(b)),4 周 HIIT 干预后,HM组5-HT、DA浓度显著回调(
P <0.01)。
2.2.2 血脑屏障损伤标志物变化
S100B主要在神经胶质细胞中表达,当神经损伤或BBB破坏时,会释放到血液中,通常作为神经损伤或脑损伤的生物标志物
[29-30]。因此,选用S100B蛋白来作为BBB损伤标志物进行探讨。发现,相比于C组,M组S100B蛋白浓度明显升高(
P <0.01,
图3(c))。4 周 HIIT 干预后,HC组S100B蛋白浓度显著升高(
P <0.01)。但HM组与M组相比无显著差异。
2.2.3 谷氨酸含量变化
在神经系统的兴奋性递质中,Glu占据着主导地位。作为中枢神经系统的重要组成部分,其水平的变化可能与神经兴奋毒性、突触可塑性受损等有关
[31]。BBB破坏也可能导致脑内谷氨酸外泄。为了进一步验证此猜想,本实验对大鼠血清中的Glu含量也进行了测量,发现相比于C组,M组Glu浓度升高(
P <0.05,
图3(d))。经4周HIIT干预后,C组与HC组间,HM组与M组间相比均无显著差异。
2.3 4周HIIT干预调节CUMS大鼠代谢物谱
2.3.1 多元统计分析
本研究应用具有监督模式特征的多元统计分析方法正交偏最小二乘判别分析(orthogonal PLSDA,OPLS-DA )。
图4(a)所示,C组与M组存在明显分离现象,且QC样品呈现良好聚类。表明该分析方法具备稳定性与可靠性,可适用于大规模样本检测需求。为考查模型是否存在过拟合问题,使用偏最小二乘法判别进行分析(PLS-DA)(
n=200)(
图4(b)),结果表明该分析方法不存在过拟合现象。
在OPLS-DA分析中,C组与M组存在显著分离(
图4(c)、(d)),说明CUMS大鼠血清代谢谱发生了明显改变。
图4(e)、(f)显示C组与HC组呈现显著分离趋势。由此可得4周HIIT干预对大鼠血清代谢谱产生了显著影响。此外M 组与HM的明显分界(
图4(g)、(h)),表明4周HIIT干预对CUMS大鼠血清中代谢物具有显著调节作用。
2.3.2 差异代谢物分析
对C 组与M 组实施 OPLS-DA 分析后,采用双标准筛选法对抑郁症状关联的血清代谢差异物进行鉴定,以及S-Plot 图示中 VIP>1且满足T 检验中 P <0.05的标准。基于 HMDB数据库以及已有文献检索结果,确定C-M、M-HM组间共有26种代谢差异物发生显著变化,C与HC组间有12种代谢差异物发生显著变化。结果显示,相较于C组样本,油酸、棕榈酸及乳酸等21种代谢产物在M组呈现显著上升态势;相反,L-谷氨酸、溴化氢复合物与天冬氨酸等5种物质水平明显下降。HM组的油酸、二氯甲烷化合物与丙酸等6种代谢物水平相比于M组而言显著上调;而乳酸、抗坏血酸以及3-硫酸盐等12种成分则表现出下调趋势(见
表2)。对照C组数据可见HC组的乳酸、尿苷和富马酸等5种物质水平升高明显;丝氨酸、乙酰丙酸和氮鸟嘌呤等7种成分呈现降低特征(见
表3)。
2.3.3 代谢通路分析
将所得数据导入Metabo Analyst 5. 0平台进行通路分析操作。筛选标准设定为代谢通路影响值(Impact Value)> 0.1。观察到主要涉及7条氨基酸相关代谢通路,分别为丙酮酸代谢;丙氨酸与天冬氨酸及谷氨酸的代谢;组氨酸代谢;苯丙氨酸、色氨酸和酪氨酸的生物合成苯丙氨酸代谢;烟酸和烟酰胺代谢(
图5(a)),4 周 HIIT 干预回调C组大鼠精氨酸生物合成;丙氨酸、天冬氨酸和谷氨酸代谢;组氨酸代谢;丙酮酸代谢4条代谢通路(
图5(b));以及能够显著回调HM组精氨酸生物合成;丙氨酸、天冬氨酸和谷氨酸代谢;烟酸和烟酰胺代谢;丙酮酸代谢4条代谢通路(
图5(c))。
2.4 网络药理学分析
2.4.1 HIIT-抑郁症相关靶点基因预测PPI网络构建
对获得的“Depression”和“High-intensity Interval Training”相关靶点筛选后删除重复值,分别得到218个和441个相关靶点,通过VENNY 2.1将“High-intensity Interval Training”和“Depression”相关靶点进行映射,取交集获得142个交集靶点(
图6)。
2.4.2 PPI网络构建
为了探究潜在靶点间的相互关联性,将经过筛选获得的交集靶点导入至String12. 0 数据库中。利用 Cytoscape3. 10. 3 工具完成PPI网络的构建。工作得到包含33 个节点和 125 条边的PPI网络(
图7)。通过Cytoscape平台集成的MCODE插件的分析处理,识别出白细胞介素-6(Interleukin-6,IL-6)、肿瘤坏死因子(Tumor Necrosis Factor,TNF)、胰岛素(Insulin,INS)、白细胞介素-18(Interleukin-18,IL-18)等19个关键靶点。推测这些靶点为潜在的HIIT抗抑郁作用靶点。
2.4.3 GO富集分析和KEGG通路分析
通过DAVID数据库,针对HIIT干预抑郁症状的潜在靶点群,开展GO富集和KEGG通路分析。得出经过系统分类后的三大功能模块:生物过程(BP,Biological Process)、细胞组分(CC,Cellular Components)和分子功能(MF,Molecular Functions)中P值各排名前20的GO条目(图
8(a)、
8(b)、
8(c))。由图可知,HIIT干预抑郁症潜在靶点参与的生物过程主要包括细胞内信号传导、神经元的正向调控、炎症反应的正调节等;参与的细胞组分主要包括胞外区、血液微粒、细胞外基质等;参与的分子功能主要包括信号生长因子活性、细胞因子活性、激素活性等。
图8(d)展示了P值排名前20的KEGG通路。由图可知,HIIT干预抑郁症的潜在关键通路为神经退行性病变、cAMP信号通路、IgA产生的肠道免疫网络等。
2.4.4 靶点-通路网络构建及核心靶点筛选
构建“靶点-通路”网络图,通过分析HIIT干预抑郁症靶点网络拓扑参数,得到核心作用靶点(
图9)。根据Degree值判断HIIT干预抑郁症的核心靶点。其中IL-6、TNF、INS、瘦素(Leptin,LEP)、蛋白激酶B1(Protein Kinase B1,AKT1)、白蛋白(Albumin,ALB)和肿瘤蛋白p53(Tumor Protein p53,TP53)的Degree值均大于10,预测上述7个靶点为HIIT干预抑郁症的核心靶点,剩余靶点则为相对重要的靶点。
3 讨论
3.1 4周HIIT改善CUMS大鼠抑郁样行为
在本研究中,所用的CUMS造模方法在4周内成功诱导出抑郁样行为特征;证明HIIT运动干预对于改善CUMS大鼠体重、糖水偏好、穿越格数以及直立次数等此类抑郁样行为具有积极效果。其中HM组体重显著低于M组,考虑HIIT增加能量消耗,可能导致体重下降,但其行为学指标改善提示代谢质量提高。而HC组与C组相比未出现显著抑郁样行为改变,提示HIIT本身不会对正常大鼠产生负性情绪影响,其行为变化更多体现为运动适应性改变。
3.2 4周HIIT对CUMS大鼠血脑屏障功能的影响
S100B 蛋白主要分布于中枢神经系统神经胶质细胞内(如星形胶质细胞),在部分特定神经元集群中也存在该蛋白的表达
[32-33]。正常成年人外周血液中,S100B蛋白含量处于极低水平状态。仅当BBB出现单纯性开放现象时,外周血液中S100B蛋白水平才会呈现上升趋势。基于此,外周血内该蛋白质浓度升高现象可作为反映血脑屏障受损程度的敏感性指标之一
[29]。作为中枢神经系统主要兴奋性神经递质的Glu,其浓度在正常生理状态下受到调控机制的约束,并通过BBB屏障作用实现与外周系统的有效隔离
[34]。一旦BBB功能受损,Glu可能从脑组织中外泄进入血液,引发外周浓度升高,进而反映中枢神经系统的代谢紊乱与应激状态。
本研究发现,与C组相比,M组大鼠血清S100B与GLU水平均显著升高,提示CUMS诱导的慢性应激可能导致BBB产生病理性功能紊乱。4周HIIT干预后,HM组S100B水平呈回调趋势,同时血清乳酸水平显著下降。结合课题组前期研究
[35],4周HIIT可能通过调节乳酸跨BBB转运及其代谢分布,重塑乳酸-丙酮酸轴稳态,改善能量代谢异常并平衡炎症相关通路,从而缓解慢性应激造成的 BBB 病理性损伤,进而改善大鼠抑郁样行为。
本研究中HM组S100B及Glu水平较M组均未出现统计学显著差异,推测该现象可能与BBB生理性调节和病理性损伤的机制相关。已有研究证实
[36-38],高强度运动可在无器质性脑损伤的前提下,诱导BBB发生短暂、可逆的生理性开放,属于机体对运动的正常适应性调节,不伴随结构破坏;而CUMS造成的是长期、持续性的病理性BBB损伤。HIIT干预诱发的BBB通透性波动,是运动过程中血流动力学改变及乳酸升高介导的一过性生理功能调节,与CUMS介导的病理性损伤属于两类不同性质的生物学过程,二者调控机制存在区别。HC组S100B水平轻度升高进一步证实单纯HIIT干预即可诱导BBB发生轻度、可逆性的生理性开放,与CUMS介导的病理性损伤有着本质区别。同时,HM组Glu较M组无显著差异,也提示HIIT对BBB以生理性适应性调节为主,可通过代谢重塑与炎症平衡协同维持其功能稳定。
综上,4周HIIT可通过调节乳酸代谢、平衡炎症相关通路,有效缓解CUMS诱导的BBB病理性功能紊乱;HM组与M组相关指标无统计学差异,是运动诱导的BBB生理性适应与病理修复同步发生的正常表现,并不影响HIIT对BBB病理性损伤的影响。
3.3 4周HIIT对CUMS大鼠血清代谢物谱的影响
血清代谢物水平的变化反映了体内代谢网络的动态调控与各类生理病理状态的密切关系
[36,39]。经过4周HIIT干预后,其中11种代谢物的含量得到显著回调。正常大鼠接受相同干预后,观察到12种代谢物发生显著变化。由此可见,HIIT干预对代谢过程产生影响,包括能量平衡调节和神经功能改变以及应激反应等方面。
本研究中,与C组相比,M组油酸水平升高可能与体内抗炎反应的启动相关。油酸作为一种单不饱和脂肪酸,具有较强的抗炎作用
[40],棕榈酸作为一种饱和脂肪酸,通常与应激代谢综合征等疾病相关
[41],本研究中升高的棕榈酸水平可能提示大鼠处于代谢应激状态。
乳酸升高是HIIT的典型代谢反应。乳酸作为代谢产物,不仅仅是废物,它还通过激活神经可塑性、调节神经递质(如DA、5-HT)等作用,对神经功能产生正向调节
[41-42]。本研究中M组较C组乳酸水平显著升高,可能是机体对CUMS应激反应的代偿效应,经HIIT干预后显著回调。HIIT过程中由机体无氧代谢产生的乳酸缓冲了CUMS诱导产生的代偿性乳酸增加,重塑了机体的内环境稳态,促进了CUMS大鼠抑郁样行为的改变。
L-谷氨酸是自然界中唯一存在的谷氨酸构型,也是生物体内发挥生理功能的唯一形式。天冬氨酸与L-谷氨酸均属于非必需氨基酸,二者通过可逆的转氨基反应直接关联,不直接作为主要能量底物(如葡萄糖)供能,而是通过参与三羧酸循环(Tricarboxylic Acid Cycle,TCA)、尿素循环、苹果酸-天冬氨酸穿梭系统等核心代谢途径,间接调控能量的产生、转化与利用,是连接氨基酸代谢与能量代谢的关键“桥梁”
[43-44]。在本研究中,M组L-谷氨酸和天冬氨酸均显著低于C组。它们的下降可能表明在进行CUMS造模后,能量代谢出现了障碍,而经4周HIIT运动干预后能量代谢异常有所改善。
3.4 4周HIIT对CUMS大鼠血清代谢物通路的影响
在CUMS抑郁大鼠模型中,代谢通路的改变提示抑郁症的多因素病理机制,涉及神经递质失衡、能量代谢紊乱、炎症反应及神经可塑性的降低等方面。本研究揭示了CUMS大鼠受到干扰的7条代谢通路,其中包括①精氨酸生物合成、②丙氨酸,天冬氨酸和谷氨酸代谢、③烟酸和烟酰胺代谢、④组氨酸代谢、⑤丙酮酸代谢、⑥苯丙氨酸代谢、⑦色氨酸和酪氨酸的生物合成等关键代谢途径。4周的HIIT干预能显著回调这些通路,表明运动干预可以作为抗抑郁治疗的一种重要手段。
精氨酸在体内通过一系列生物化学反应转化为一氧化氮(Nitric Oxide,NO)等物质。NO在神经系统中可调控血管扩张、神经可塑性及神经递质释放
[45-46]。在本研究中,精氨酸代谢途径的紊乱表明NO的合成可能受到抑制,进而影响脑血流与神经功能,而HIIT干预可显著回调精氨酸相关代谢通路,提示运动可能通过调节NO生成及血流动力学状态,改善神经功能环境。
丙氨酸、天冬氨酸、谷氨酸参与神经递质合成、信号传导及代谢调控,其中谷氨酸为中枢主要兴奋性神经递质
[31],天冬氨酸则参与神经兴奋和抑制的平衡。本研究中,CUMS大鼠血液中丙氨酸、天冬氨酸和谷氨酸代谢途径的紊乱印证了抑郁症的神经递质失衡学说。而HIIT干预后该通路得到显著回调,提示运动可能通过增强线粒体代谢能力、改善氨基酸转运与转化效率,恢复能量代谢稳态。
维生素B3包含烟酸和烟酰胺两种形式,且二者可以相互转化,其代谢通路参与烟酰胺腺嘌呤二核苷酸(Nicotinamide Adenine Dinucleotide,NAD⁺)合成,而NAD⁺是细胞氧化还原反应及线粒体功能的重要辅酶。慢性应激会降低NAD⁺水平、加剧氧化应激,损伤神经元存活与功能慢性应激
[47-50]。本研究中该通路在HIIT干预后得到改善,提示运动可能通过提升NAD⁺代谢能力,增强抗氧化防御及线粒体功能,从而缓解抑郁样行为。
丙酮酸代谢作为糖酵解与TCA循环之间的关键连接环节,在能量供给中具有核心作用
[35]。其紊乱可能导致ATP生成不足、乳酸堆积。HIIT通过调节丙酮酸代谢通路,可能重塑乳酸—丙酮酸轴稳态,提高能量利用效率,这与本研究中乳酸水平变化结果相呼应。
组氨酸代谢、苯丙氨酸代谢及色氨酸、酪氨酸的生物合成途径也在本研究中受到显著干扰。这些氨基酸不仅参与神经递质的合成,还与免疫反应和炎症调节密切相关。推测HIIT运动干预通过调节这些代谢途径,可能恢复了神经递质的平衡及免疫稳态,从而减轻了抑郁症状
[51-54]。
综上,HIIT通过协同调节氨基酸代谢、NO生成、NAD⁺合成及能量转换通路,促进代谢网络重构,从系统层面缓解CUMS诱导的代谢紊乱,为抑郁样行为改善提供代谢基础。
3.5 基于网络药理学探讨HIIT干预抑郁症的作用机制
网络药理学结果表明,HIIT可能通过多靶点、多途径的调节作用,显著缓解抑郁症状。IL-6、TNF、INS、LEP、AKT1、ALB和TP53这些关键分子,通过消除炎症、改善机体代谢、增强神经可塑性以及减轻氧化应激等机制在HIIT抗抑郁中发挥重要作用。需要明确的是,本研究所筛选的核心靶点均为预测结果,有待后期实验验证。
重度抑郁症患者血液和脑脊液中IL-6、TNF和INS水平显著升高
[55],而持续的慢性炎症状态能够通过破坏血脑屏障、激活神经胶质细胞等途径损伤中枢神经系统功能,进而诱发或加重抑郁症状。HIIT已被证实可有效降低 IL-6、TNF和INS等促炎因子水平
[56-57]。此外,抑郁症患者常伴有INS和LEP等代谢相关分子水平异常
[58-59]。INS作为调节葡萄糖代谢的关键激素,其水平异常将导致大脑能量供给不足;LEP通过调控食欲及能量平衡参与中枢神经功能调节,二者的失衡共同破坏大脑能量代谢稳态,可能会诱发抑郁症状的发生。
在抑郁症的病理机制研究中,蛋白激酶B(AKT)信号通路已成为一个重要的研究靶点。AKT1通过抑制细胞凋亡促进神经元存活。TP53作为关键的抑癌基因蛋白,在细胞应激反应中维持基因组稳定性,并在DNA损伤修复过度时启动细胞凋亡程序以防止损伤积累
[60-61]。因此,AKT1与TP53的动态平衡对神经细胞微环境稳态至关重要。ALB是人体血浆中主要的非酶类抗氧化剂
[62],在调节机体氧化应激平衡中发挥重要作用。氧化应激与炎症反应之间的密切联系
[63],为上述关键蛋白在HIIT过程中发挥抗抑郁作用奠定了物质基础。
4 结论
4周HIIT可以显著提高CUMS大鼠血清5-HT和DA的浓度,改善血脑屏障功能,显著回调精氨酸生物合成;丙氨酸、天冬氨酸和谷氨酸代谢;烟酸和烟酰胺代谢;丙酮酸代谢4条代谢通路,可能作用于IL-6、TNF、INS等7个核心靶点,诱导抑郁相关的血液代谢重塑进而改善其抑郁样行为。
山西省2025年度重点国别科技合作项目(202504041101012)
国家自然科学基金面上资助项目(82374153)