女性生殖系统最致命的恶性肿瘤,卵巢癌(ovarian cancer,OV)是全球女性癌症死亡的第七大原因
[1]。由于起病初期缺乏特异性的临床症状,75%以上的卵巢癌患者确诊时已于病程晚期
[2]。目前的规范模式是手术治疗+以铂类为基础的化疗+维持治疗,即便如此,由于其高耐药率和高复发率,卵巢癌5年总生存率仍不足30%
[2],根据2022年全球癌症统计数据库(Global Cancer Statistics Database,GLOBOCAN)统计,卵巢癌发病率有下降趋势,但其死亡率无明显变化
[3]。所以不断探索新的治疗靶点是目前面临的主要挑战。
RAB(Ras-related proteins)组成了Ras超家族中最大的小GTP酶家族。人体组织中已鉴定出60多种RAB GTP酶
[4]。RAB GTP酶可以驱动细胞间囊泡运输,它们通过与下游效应子的瞬时相互作用来控制膜芽的形成、囊泡运输和膜融合
[5]。RAB蛋白表达失调与恶性肿瘤密切相关,某些RAB GTP酶的过表达可以增强某些癌细胞类型的增殖、侵袭和迁移
[6]。RAB42,也称为RAB7b,是RAB GTP酶家族的新成员,可能参与代谢相关途径
[7]。随着研究的深入,RAB42已被证实与肿瘤的关系紧密,一项研究报道,与健康对照组相比,RAB42在黏液性肺腺癌患者的肺组织中过表达
[8]。RAB42被指出参与了乳腺癌的发病机制,可能是乳腺癌的潜在治疗靶点
[9]。有学者指出RAB42是脑胶质瘤预后不良的有力指标,在胶质瘤中具有促瘤功能,下调RAB42可通过调控VEGF信号通路,从而触发脑胶质瘤细胞凋亡,抑制脑胶质瘤细胞的增殖和侵袭
[10]。沉默RAB42可以抑制肝癌细胞E2F信号通路,下调PD-L1表达,抑制免疫逃逸,RAB42可能成为肝细胞癌临床诊断和治疗的新标志物
[11]。并且在肝细胞癌中RAB42过表达与细胞凋亡、细胞外基质蛋白、上皮-间充质转化有关,敲低RAB42表达或使其功能失活可显著抑制肝癌细胞的增殖、侵袭和迁移
[12]。然而迄今为止鲜见RAB42在卵巢癌中作用的报道,在卵巢癌细胞中是否存在RAB42异常表达情况,并且其异常表达与卵巢癌细胞的增殖、侵袭、迁移等恶性生物学行为是否有关不得而知。本研究从生物信息学角度探究RAB42在卵巢癌中的表达,观察了RAB42在卵巢癌组织中的表达情况,并分析其表达与患者临床病理特征及预后的关系,同时通过敲低RAB42表达探究其对卵巢癌细胞增殖、侵袭、迁移及EMT的影响,以期为进一步探索卵巢癌的治疗提供研究基础。
1 材料与方法
1.1 标本来源
选择2016年1月至2018年12月在山西白求恩医院治疗的卵巢癌患者55例作为研究对象,年龄41~70岁,平均55岁,对55例卵巢癌患者进行随访,最长时间为90个月。卵巢癌按照2014年国际妇产科联盟(FIGO)制定的标准,Ⅰ期、Ⅱ期、Ⅲ期和Ⅳ期患者分别为10例、6例、25例和14例。根据肿瘤的病理组织学分级,中、高分化26例,低分化29例。选择因子宫平滑肌瘤进行全子宫+双侧附件切除的患者23例,以其正常卵巢组织作为对照。手术切除标本一部分常规制作蜡块行HE染色;一部分组织于新鲜状态下冻存于液氮以便提取总RNA。本研究经山西白求恩医院伦理委员会批准(批准号:YXLL-2024-020),患者知情并签署知情同意书。卵巢癌组织标本经HE染色,经两名病理医师共同鉴定其组织标本为上皮性卵巢癌。
1.2 细胞株及主要试剂
人卵巢癌细胞株SKOV-3购自中国科学院细胞库(上海)。慢病毒GVl02载体购自上海吉凯基因生物公司,嘌呤霉素购自美国sigma公司,CCK-8试剂盒购自美国Abbkine公司,Matrigel基质胶购自美国BD公司,BCA蛋白检测试剂盒购自美国Sigma公司,RAB42抗体购自美国Abcam公司,Transwell小室购自德国Millipore公司。Ki-67及Vimentin、E-cadherin及N-cadherin一抗购自美国ABCAM武汉伊莱瑞特公司,GAPDH一抗、二抗购自上海泊湾生物科技有限公司。
1.3 生物信息学分析
应用GEPIA数据库(
http://gepia.cancer-pku.cn/)分析卵巢癌及多种恶性肿瘤组织以及正常样本中的RAB42表达数据,并分析卵巢癌组织中mRNA表达。用Kaplan-Meier Plotter数据库(
https://kmplot.com/analysis/)分析RAB42表达对卵巢癌患者生存期的影响。
1.4 qRT-PCR检测RAB42基因的表达水平
从卵巢癌组织及对照组标本中提取总RNA,按TRIzol试剂盒说明书操作。总RNA逆转录成cDNA,并以其为模板进行扩增,GAPDH作为内参,行qRT-PCR扩增检测RAB42的表达,由2-ΔΔCt 计算目标基因的相对表达量。使用以下PCR程序(每个样品重复3次):95 ℃预变性5 min;95 ℃变性10 s,60 ℃退火延伸20 s,循环45次。RAB42上游引物序列:5′-AGACCTCGGTTAAAAACAACTGC-3′,下游引物序列:5′-AGCCCTCTTCTAGCTTGATGTC-3′;GAPDH上游引物序列:5´-CAGGAGGCATTGCTGGATGAT-3′,下游引物序列:5´-GAAGGCTGGGGCTCATTT-3´。
1.5 细胞培养
将人卵巢癌细胞株SKOV-3培养于含10%胎牛血清和1%青-链霉素培养基中,37 ℃、5%CO2培养。根据细胞生长速度和密度更换培养基,取对数生长期的卵巢癌细胞进行后续实验。
1.6 慢病毒转染和分组
构建稳定RAB42基因下调的卵巢癌细胞株,根据RAB42基因序列设计合成干扰片段,构建sh-RAB42干扰质粒,同时合成无义链。根据慢病毒转染手册操作步骤转染,分别将其克隆入慢病毒并转染到SKOV-3细胞系中,用嘌呤霉素(5 μg/mL)筛选转染细胞14 d,获得稳定细胞株,分别命名为sh-RAB42组和sh-NC组。另设不做任何处理的SKOV-3细胞为control组。这三组细胞株用于后续实验。
1.7 Western blot检测RAB42及EMT相关蛋白表达
收集处于对数生长期的细胞,RIPA蛋白裂解液(含1%蛋白酶抑制剂和1%磷酸酶抑制剂)提取总蛋白。BCA法测定蛋白浓度。SDS-PAGE分离蛋白,转PVDF膜,10%脱脂牛奶封闭4 ℃过夜,加入一抗稀释液RAB42(稀释倍数1∶1 000)、E-cadherin、Vimentin、N-cadherin、Ki-67(稀释倍数1∶5 000),TBST洗3次,加羊抗兔IgG二抗(1∶1 000)常温孵育1 h,TBST洗3次,避光显影、拍照,Image J软件分析条带灰度,内参一抗选用GAPDH(1∶ 5 000)。
1.8 CCK-8实验检测卵巢癌细胞的增殖能力
将处于对数生长期的卵巢癌细胞接种至96孔板,待细胞贴壁后,加入CCK-8试剂在培养箱中孵育1 h。使用酶标仪测定24,48,72 h细胞在450 nm波长下的吸光度值(OD值),并绘制增殖曲线图。
1.9 划痕实验检测卵巢癌细胞的迁移能力
将处于对数生长期的细胞接种于6孔板,培养至细胞达80%融合,待细胞贴壁后,无菌移液管尖端垂直于孔板轻划直线,PBS洗后用细胞培养基培养。观察0,24,48 h时细胞迁移状态并拍照。用ImageJ测量划痕宽度,计算平均划痕愈合率。细胞的迁移能力是通过细胞对划痕区域的修复能力来判断的。
1.10 Transwell侵袭实验检测卵巢癌细胞的侵袭能力
取处于对数生长期的细胞进行侵袭实验。将Matrigel胶与DMEM 培养液按1∶9稀释,上室垂直加入50 μL,放置在37 ℃培养箱中培养3 h,使Matrigel聚合成膜,吸弃上室多余液体,将细胞密度调整为1.0×105/mL,接种于上室,小室的下腔加入500 μL的含10%胎牛血清的高糖DMEM培养基,37 ℃、5%CO2孵育48 h。取出小室,PBS洗3次,用甲醇固定,0. 1%结晶紫染色,显微镜下随机选取5个视野观察并拍照,计数每个视野中的细胞数。
1.11 统计学分析
实验数据分析应用Image J处理分析,并通过Prism10.0和SPSS 26.0进行数据分析与对比,计量资料以均数±标准差(X±S)表示,两组间比较采用独立样本t检验,多组间比较采用单因素方差分析,进一步两组间比较采用SNK-q检验,采用χ2检验分析分类变量的组间差异。P<0.05为差异有统计学意义。
2 结果
2.1 RAB42在不同肿瘤组织中的表达
GEPIA数据库中检索结果显示,RAB42在卵巢癌、慢性大B细胞淋巴瘤、多形成性胶质细胞瘤、肾透明细胞癌、肾乳头状细胞癌等肿瘤中均显著高表达(见
图1)。
2.2 RAB42蛋白在卵巢癌组织中的表达及与临床病理特征的关系
GEPIA数据库结果显示,RAB42在卵巢癌组织中的表达水平显著高于正常卵巢组织(
P<0.05,见
图2A)。本研究检测55例卵巢癌组织和23例正常卵巢组织中RAB42基因的表达,结果同样显示RAB42在卵巢癌组织中的相对表达量显著高于正常卵巢组织(
P<0.05,见
图2B)。根据RAB42基因在卵巢癌中表达的中位数(2.025 7),将55例卵巢癌患者分为高表达组(29例)和低表达组(26例),分析患者RAB42基因表达与临床病理特征的关系,结果显示RAB42基因高表达与淋巴结转移及FIGO分期相关(
P<0.05,见
表1)。
2.3 卵巢癌中RAB42表达对患者生存率的影响
GEPIA数据库和Kaplan-Meier Plotter数据库中生存分析显示,与RAB42低表达患者相比,RAB42高表达的卵巢癌患者总生存期缩短(
P<0.05,见
图3)。通过Kaplan-Meier法,绘制卵巢癌患者的总生存时间曲线,结果表明,RAB42高表达的卵巢癌患者总生存期更短(
P<0.05,见
图3)。
2.4 敲低RAB42对卵巢癌细胞增殖能力的影响
Western blot结果显示,sh-RAB4转染至SKOV-3
细胞后,RAB42表达成功下调(P<0.05,见图4)。CCK-8实验结果显示,与control组及sh-NC组相比,sh-RAB42组细胞增殖能力明显被抑制(P<0.05,见图4)。
图4 敲低RAB42对卵巢癌SKOV-3细胞增殖能力的影响
Figure 4 Effect of RAB42 knockdown on proliferation of ovarian cancer cell line SKOV-3
2.5 敲低RAB42对卵巢癌细胞迁移和侵袭能力的影响
细胞划痕实验结果显示,敲低RAB42可抑制卵巢细胞的迁移能力(
P<0.05,见
图5)。Transwell实验结果亦表明,敲低RAB42可抑制卵巢细胞的侵袭能力(
P<0.05,见
图6)。
2.6 敲低RAB42对卵巢癌细胞EMT的影响
Western blot实验结果显示,与control组和sh-NC组相比,sh-RAB42组E-cadherin表达水平明显升高(
P<0.05),而N-cadherin、Ki-67和Vimentin的表达水平则显著下降(
P<0.05,见
图7)。
3 讨论
卵巢癌严重威胁女性的生命健康,然而由于其发病部位的隐匿性,临床预后往往较差
[13,14]。即使经过规范化治疗,其复发率及死亡率仍居高不下
[15]。为了改善患者预后,以期为卵巢癌的治疗提供新的思路,探寻卵巢癌的潜在治疗靶点迫在眉睫。
RAB42是小GTP酶Rab家族的成员
[16],研究发现RAB42在乳腺癌、肺腺癌、脑胶质瘤、肝细胞癌中均存在异常表达,并且与脑胶质瘤、肝细胞癌患者的不良预后有关,提示RAB42有可能作为恶性肿瘤早期诊断和预后评估的生物学标志物
[8,9,17-19]。本研究首先通过GEPIA在线数据库分析,发现RAB42在卵巢癌组织中表达明显增加,并且与患者的不良预后有关,这与RAB42在其他肿瘤表达的报道情况一致,而且这一结论在本研究临床资料中亦得到了验证,即在卵巢癌患者中RAB42表达与淋巴结转移、临床分期呈正相关,证明其高表达可能与卵巢癌进展有关。为了进一步探讨RAB42对卵巢癌细胞生物学功能的影响,本研究设计合成RAB42干扰片段,并转染SKOV3细胞降低RAB42基因表达后,发现卵巢癌细胞增殖、迁移和侵袭能力明显下降。而这一发现也与其他报道RAB42促进肿瘤细胞增殖、侵袭等生物学功能一致
[18,19]。这些研究结果提示RAB42在卵巢癌中过表达并发挥致癌功能,并影响患者的预后。
导致肿瘤复发的主要原因是肿瘤细胞的侵袭和转移,而上皮-间质细胞转化(EMT)是其获得迁移和侵袭的重要生物学过程
[20]。肿瘤细胞发生EMT过程中可发生免疫抑制作用,从而使其能够躲避机体免疫系统的识别和攻击。EMT发生过程中,当E-cadherin转化为N-cadherin时,可促进细胞增殖,细胞生长失去控制,增强肿瘤细胞的迁移和侵袭能力,而N-cadherin的异常表达提供给肿瘤细胞由原发肿瘤范围转移至继发部位的能力,使其获得侵袭性的肿瘤表型的能力,是EMT的标志。Vimentin是典型的间充质分子标志物,对患者的治疗及预后评估具有重要临床意义
[14,21]。有学者发现沉默肝细胞癌中RAB42基因的表达可以显著抑制肝癌细胞侵袭、迁移和EMT进程
[12]。为了进一步明确卵巢癌细胞中RAB42表达变化与EMT是否同样存在相关性,本研究检验了抑制RAB42基因表达后EMT相关蛋白的表达,结果显示相比空白组和sh-NC组,sh-RAB42组卵巢癌SKOV3细胞中与肿瘤增殖侵袭相关E-cadherin表达水平显著上升,N-cadherin、Vimentin和Ki-67表达水平明显降低,这与既往学者在其他恶性肿瘤中的研究结果一致。提示RAB42可能参与EMT进程,并通过调控EMT相关基因的表达进而促进卵巢癌细胞的恶性行为。
综上所述,RAB42基因在卵巢癌中高表达,并且与患者的不良预后有关,敲低RAB42基因的表达会抑制卵巢癌增殖、迁移、侵袭能力及EMT进展,提示RAB42可能是卵巢癌的一种促癌基因,有望成为卵巢癌预后评估的标志物。但本研究未能观察RAB42对卵巢癌细胞凋亡的影响,且仅从体外实验初步探讨RAB42表达及对卵巢癌细胞生物学行为的影响,未来需进一步研究其是通过何种途径促进EMT的发生,并进行动物实验以验证其在体内是否具有同样效应。
山西省基础研究计划项目(202103021224352)
中央引导地方科技发展基金项目(YDZJSX2022B012)