创伤性骨关节炎(traumatic osteoarthritis, TOA)是指由于创伤导致关节软骨、骨及周围软组织损伤,进而引起关节软骨退变、磨损,骨质增生等病理改变,临床主要表现为关节疼痛、肿胀、活动受限等
[1]。TOA主要由外部创伤及运动损伤引发,常见诱因包括交通事故、运动过度导致半月板损伤等
[2]。炎性细胞浸润、软骨组织结构破坏与TOA发生机制密切相关
[3]。目前尚缺乏有效治疗TOA的方案,因此急需探寻新的药物用于TOA的治疗。牛蒡子苷元(ATG)属于双环氧木脂素,是从中药牛蒡中提取的一种活性成分,具有抗炎、调节免疫和抗氧化等功效
[4]。研究显示,ATG可降低骨关节炎大鼠炎症和软骨细胞焦亡,改善软骨组织形态
[5]。另有研究表明,ATG可降低椎间盘炎症和细胞外基质降解,促进软骨自噬,改善软骨组织形态
[6]。上述研究提示ATG可降低炎症反应程度,减弱软骨损伤,但其具体作用机制尚不明确。Toll样受体4(TLR4)/髓样分化因子88(MyD88)/核因子κ轻链增强子结合蛋白(NF-κB)信号通路是一条重要的免疫相关信号传导通路,在炎症反应、免疫应答等过程中发挥重要作用
[7]。研究显示,抑制该通路可减轻膝骨关节炎兔软骨细胞凋亡、软骨退化和炎症,提高软骨细胞存活
[7]。另有研究发现,抑制该通路可减轻膝骨关节炎大鼠炎症和软骨退化,改善软骨形态
[8]。推测该通路参与骨关节炎发生发展过程。基于此,本研究探讨ATG对TOA大鼠是否具有软骨保护作用,并阐明其潜在机制是否与调控TLR4/MyD88/NF-κB信号通路有关,以期为TOA的药物治疗提供新的实验依据。
1 材料与方法
1.1 动物
SD雄性大鼠,SPF级,50只,体质量300~330 g,10周龄,购自河南省实验动物中心,生产证号:SCXK(豫)2022-0001。饲养条件:(22±2)℃,湿度60%±5%,光照为12 h(早7:00至晚7:00)。本研究符合动物伦理要求,并经太原钢铁(集团)有限公司总医院伦理委员会审批通过,编号:科审S2024第(107)号。
1.2 试剂和仪器
ATG(货号:HY-N0035)和TLR4激活剂脂多糖(LPS,货号:HY-D1056)购自美国MCE公司);骨钙素(BGP,货号:ml106924)、碱性磷酸酶(ALP,货号:ml107021)、Ⅱ型胶原羧基端交联肽(CTX-Ⅱ,货号:ml038291)、白细胞介素(IL-6,货号:ml106838)、肿瘤坏死因子α(TNF-α,货号:ml106859)、白细胞介素(IL-1β,货号:ml107045)酶联免疫吸附法(ELISA)试剂盒购自上海酶联免疫生物科技有限公司;苏木精-伊红(HE)试剂(货号:G1120)、番红O-固绿染色试剂(货号:G1371)、末端脱氧核苷酸转移酶介导的dUTP缺口末端标记法(TUNEL,货号:T2130)、超氧化物歧化酶(SOD,货号:BC5165)、丙二醛(MDA,货号:BC0025)、一氧化氮(NO)试剂盒(货号:BC1475)购自北京索莱宝科技有限公司;NF-κB(货号:ab313430)、TLR4(货号:ab217274)、切割型半胱天冬酶-3蛋白(cleaved-Caspase-3)(货号:ab214430)、基质金属蛋白酶-13(MMP-13)(货号:ab315267)、β-肌动蛋白(β-actin)(货号:ab179467)、p-NF-κB(货号:ab239882)和MyD88(货号:ab131071)一抗及二抗IgG(货号:ab302644)购自英国Abcam公司。
CKX53显微镜、IX73荧光显微镜(上海门季生物科技有限公司);LD-ZQP-86切片机(山东海曼科学仪器有限公司);HBS-1101酶标仪(南京德铁实验设备有限公司);HD-UV90紫外分光光度计(山东环美分析仪器有限公司)。
1.3 分组、造模与给药
按随机数字表法将大鼠分为5组:假手术(sham)组、TOA组、ATG-L组、ATG-H组、ATG-H+LPS组。除sham组外其余大鼠均建立TOA模型,腹腔注射戊巴比妥钠将大鼠麻醉,将大鼠左肢备皮消毒后切开膝关节的皮肤,暴露筋膜及前方关节囊,切断前交叉韧带,然后对膝关节髌骨进行复位,缝合并消毒处理,造模成功标志:行走时跛行,膝关节肿胀
[9]。sham组大鼠仅切开膝关节皮肤。
造模成功后第2天,ATG-L组和ATG-H组分别灌胃15 mg/kg和30 mg/kg的ATG
[5],ATG-H+LPS组灌胃30 mg/kg的ATG并关节腔注射500 μg/kg的LPS
[10],sham组和TOA组灌胃等体积生理盐水,1 d/次,持续28 d。
1.4 样本采集
治疗结束后,将大鼠麻醉,腹主动脉采血2 mL,切开左肢膝关节皮肤取出软骨组织,备测。
1.5 HE和番红O-固绿染色观察关节软骨组织形态
HE染色:取大鼠关节软骨样本,经4%多聚甲醛固定后,置于脱钙液中脱钙处理。依次完成清洗、脱水、石蜡包埋及切片步骤,经脱蜡后行HE染色,镜下观察软骨组织形态,根据文献[
11]的方法进行Mankin′s评分,评分越高表明软骨组织损伤越严重。
番红O-固绿染色:将上述切片置于新配制的Weigert染液中染色5 min、盐酸乙醇分化15 s,水洗后固绿染色5 min、乙酸洗涤10 s,最后用番红O染液浸染5 min,于显微镜下观察。
1.6 TUNEL检测软骨细胞凋亡
取1.5中大鼠关节软骨切片,滴加TUNEL反应混合液和DAPI染色液,于荧光显微镜下观察,Image J分析细胞凋亡。
1.7 ELISA检测BGP、ALP、CTX-Ⅱ以及炎症因子水平
将血液置于4 ℃离心机中12 000 r/min离心10 min,取上清液用于BGP、ALP和CTX-Ⅱ水平检测;称取部分软骨组织,加入裂解液研磨匀浆后12 000 r/min离心10 min,取上清液用于TNF-α、IL-1β和IL-6水平检测。取上述上清液加入酶标管,再加入ELISA试剂盒中反应试剂、显色试剂,最后加入终止试剂,酶标仪检测吸光值,根据各因子标准曲线计算各指标水平。
1.8 SOD活性、MDA和NO含量的检测
称取部分软骨组织,加入预冷的无菌生理盐水后研磨匀浆,4 000 r/min离心10 min,取上清液加入离心管,再依次加入反应试剂、终止试剂,紫外分光光度计检测吸光值,根据标准品吸光值计算各因子水平。
1.9 Western blot检测蛋白表达水平
提取软骨组织总蛋白,BCA法分析蛋白浓度,将蛋白样品置于100 ℃水中水浴5 min,取10 μL进行电泳,转膜,5%脱脂奶粉封闭2 h,加入cleaved-Caspase-3、MMP-13、TLR4、MyD88、NF-κB、p-NF-κB和β-actin一抗(1∶5 000)4 ℃孵育过夜,二抗(1∶1 500)室温孵育2 h,置于ECL溶液中显色,曝光,以β-actin为内参分析蛋白灰度值。
1.10 统计学分析
采用Graphpad Prism 8.0.1分析数据。计量资料均符合正态分布,表示为均数±标准差(X±S),多组间比较采用单因素方差分析,进一步两两比较采用SNK⁃q检验。P<0.05认为差异有统计学意义。
2 结果
2.1 ATG对大鼠软骨组织形态的影响
sham组大鼠软骨表面平整无明显损伤;TOA组大鼠软骨表面有明显裂痕,软骨细胞形态变形且排列紊乱,软骨变薄,潮线结构模糊;ATG-L组和ATG-H组大鼠软骨组织形态有所改善;与ATG-H组比较,ATG-H+LPS组软骨组织形态损伤加重(见
图1)。
TOA组大鼠Mankin′s评分高于sham组(
P<0.05);ATG-L组和ATG-H组Mankin评分低于TOA组(
P<0.05);ATG-H+LPS组Mankin′s评分高于ATG-H组(
P<0.05,见
图1)。sham组大鼠软骨组织和细胞外基质形态完整;TOA组软骨表面有缺损,染色不均匀,软骨细胞有明显死亡,软骨组织变薄,软骨基质中纤维成分增多;与TOA组比较,ATG-L组和ATG-H组软骨组织增厚,软骨基质中纤维成分减少;与ATG-H组比较,ATG-H+LPS组软骨组织损伤程度明显加重(见
图2)。
2.2 ATG对大鼠软骨细胞凋亡率的影响
TOA组软骨细胞凋亡率高于sham组(
P<0.05),ATG-L组和ATG-H组软骨细胞凋亡率低于TOA组(
P<0.05),ATG-H+LPS组软骨细胞凋亡率高于ATG-H组(
P<0.05,见
图3)。
2.3 ATG对大鼠血清BGP、ALP和CTX-Ⅱ水平的影响
TOA组BGP、ALP和CTX-Ⅱ水平高于sham组(
P<0.05);ATG-L组和ATG-H组BGP、ALP和CTX-Ⅱ水平低于TOA组(
P<0.05);ATG-H+LPS组BGP、ALP和CTX-Ⅱ水平高于ATG-H组(
P<0.05,见
表1)。
2.4 ATG对大鼠软骨组织中TNF-α、IL-1β和IL-6水平的影响
TOA组TNF-α、IL-1β和IL-6水平高于sham组(
P<0.05);ATG-L组和ATG-H组TNF-α、IL-1β和IL-6水平低于TOA组(
P<0.05);ATG-H+LPS组TNF-α、IL-1β和IL-6水平高于ATG-H组(
P<0.05,见
表2)。
2.5 ATG对大鼠软骨组织SOD活性、NO和MDA含量的影响
TOA组NO和MDA含量高于sham组,SOD活性低于sham组(
P<0.05);ATG-L组和ATG-H组NO和MDA含量低于TOA组,SOD活性高于TOA组(
P<0.05);ATG-H+LPS组NO和MDA含量高于ATG-H组,SOD活性低于ATG-H组(
P<0.05,见
表3)。
2.6 ATG对大鼠膝关节软骨组织相关蛋白表达的影响
TOA组cleaved-Caspase-3、MMP-13、TLR4、MyD88和p-NF-κB/NF-κB蛋白表达高于sham组(
P<0.05);ATG-L组和ATG-H组cleaved-Caspase-3、MMP-13、TLR4、MyD88和p-NF-κB/NF-κB蛋白表达低于TOA组(
P<0.05);ATG-H+LPS组cleaved-Caspase-3、MMP-13、TLR4、MyD88和p-NF-κB/NF-κB蛋白表达高于ATG-H组(
P<0.05,见
图4和
表4)。
3 讨论
TOA是由于急性关节创伤或慢性重复性损伤导致的继发性骨关节炎,其主要病理特征为关节软骨的进行性退变、磨损及软骨下骨重塑等,最终引起关节疼痛和关节功能障碍,严重影响患者正常生活
[12]。目前临床针对TOA尚无理想的治疗方案,采取药物治疗可以缓解患者病痛,但尚不能有效治愈患者
[13]。因此,深入探究软骨损伤的分子机制并开发新的治疗药物,对治疗TOA具有重要意义。近年来,中医药在TOA治疗过程中展现出独特优势和较好的治疗效果,ATG化学式为C
21H
24O
6,是一种木脂素类化合物,具有调节免疫和代谢、抗氧化和抗炎等多种药理特性
[4]。Tang等
[14]研究显示,ATG可减轻骨关节炎小鼠炎症,降低细胞外基质降解,减轻软骨细胞损伤。胡笑燊
[15]研究表明ATG可预防软骨退变,减轻软骨细胞损伤。基于ATG的抗炎和软骨保护特性,我们推测其可能对TOA亦具有治疗潜力。
当关节遭受创伤时,外力可直接作用于关节软骨,导致软骨的磨损、撕裂或剥脱等软骨损伤,破坏软骨结构,使软骨组织失去正常的光滑表面和弹性,影响关节的正常功能。本研究通过HE和番红O-固绿染色发现,TOA大鼠软骨组织有明显损伤,软骨表面有明显裂痕,软骨变薄,软骨细胞存在明显凋亡,软骨基质中纤维成分增多;ATG可减轻软骨组织损伤,改善软骨形态,降低Mankin′s评分。TOA发生时,关节内的组织完整性遭到破坏,免疫细胞被激活,引发免疫反应,促使大量炎性细胞募集到损伤区域,这些炎性细胞可释放TNF-α、IL-1β、IL-6等大量促炎细胞因子,对软骨组织造成炎性损伤。同时炎症因子还可激活基质金属蛋白酶的表达与活性,促进软骨细胞外基质降解,导致软骨基质流失,软骨变薄
[16]。本研究中,ATG治疗可降低炎症因子TNF-α、IL-1β和IL-6水平和基质蛋白酶MMP-13表达,减轻炎性损伤和基质降解。CTX-Ⅱ胶原蛋白是软骨的主要成分,炎症因子可抑制CTX-Ⅱ蛋白等细胞外基质成分合成,同时软骨被破坏降解后,CTX-Ⅱ被释放进入血液,其血清浓度可作为软骨组织分解代谢的分子标志物
[17];软骨损伤还会引发软骨下骨的一系列病理改变,导致骨代谢失衡,血清BGP和ALP水平升高
[9];TOA发生后,关节结构损伤会引发局部微环境紊乱与氧化应激,造成ROS水平激增,过量的ROS通过氧化损伤破坏软骨细胞的生物大分子及细胞膜结构,干扰其正常代谢,最终诱导软骨细胞凋亡,推动TOA的病理进程
[18]。本研究结果显示,ATG治疗可降低血清BGP、ALP和CTX-Ⅱ水平、氧化应激产物NO和MDA含量、凋亡蛋白cleaved-Caspase-3表达,提高SOD活性,减轻软骨降解和软骨细胞凋亡,改善骨代谢。提示ATG可降低TOA大鼠炎症反应和氧化应激,进而改善关节软骨损伤。
TLR4/MyD88/NF-κB是一条炎症相关的信号转导通路,在识别病原体、启动免疫反应以及介导炎症过程中发挥重要作用。当TLR4识别到相应的配体后,其胞内结构域发生构象变化,招募MyD88,MyD88再通过一系列生物学作用可激活NF-κB,进而启动炎症相关基因表达,引发炎症反应。Wan等
[19]研究表明抑制该通路可减轻关节炎软骨细胞软骨退化和滑膜炎症。Jin等
[20]研究表明抑制该通路可改善骨关节炎兔活动状态和运动功能,减轻软骨组织损伤和炎症。本研究结果发现,TOA组TLR4、MyD88和p-NF-κB/NF-κB蛋白表达水平高于sham组,ATG干预后可逆转上述蛋白表达,抑制该通路。而且同时用ATG和LPS干预大鼠发现,LPS可降低ATG对TOA大鼠软骨损伤的改善作用,促进软骨组织损伤,提高Mankin评分、软骨细胞凋亡率、血清BGP、ALP和CTX-Ⅱ水平、软骨组织TNF-α、IL-1β和IL-6水平、NO和MDA水平、cleaved-Caspase-3、MMP-13、TLR4、MyD88和p-NF-κB/NF-κB蛋白表达水平,降低软骨组织SOD活性。提示ATG改善TOA大鼠软骨损伤可能与抑制TLR4/MyD88/NF-κB信号通路有关。
综上所述,ATG可能通过抑制TLR4/MyD88/NF-κB信号通路来降低TOA大鼠炎症反应和氧化应激,进而改善关节软骨损伤。本研究的核心意义在于从TLR4/MyD88/NF-κB通路阐明了ATG的软骨保护机制,为中药活性成分治疗TOA提供了新的实验依据和作用靶点,也为TOA的临床药物研发提供了潜在候选方向。但本研究仅从蛋白表达水平验证通路调控关系,未深入探究ATG与TLR4的直接结合作用,也未阐明通路下游调控炎症、氧化应激及凋亡的具体靶基因网络。后续研究将结合免疫共沉淀、荧光素酶报告基因等技术验证ATG与TLR4的相互作用及下游靶基因。
山西省卫健委卫生健康科研课题计划项目(2024109)