阿尔兹海默症(Alzheimer’s disease,AD)是一种慢性神经退行性疾病,其主要表现为记忆减退及行动和认知功能障碍,是导致老年痴呆的最普遍原因
[1]。随着人口老龄化的加剧,AD发病率逐年升高
[2],预计到2050年,全球AD患病人数将达到1.52亿,其中发展中国家的增幅最大
[3-4]。AD发病机制复杂多样,包括胆碱能降低、Tau蛋白异常和β-淀粉样蛋白(amyloid β-protein,Aβ)沉积等多方面
[4-5],但其作用机制尚未完全明确。目前,AD的诊断方法主要有正电子发射型计算机断层显像(positron emission computed tomography,PET)和脑脊液(cerebrospinal fluid,CSF)蛋白分析等方法,PET诊断准确性虽高,但因其高成本而未广泛应用,而CSF蛋白分析因技术时间的限制,难以实现早期诊断
[6]。因此,寻找AD诊断的潜在生物标志物十分重要。
生物信息学技术和机器学习(machine learning,ML)算法的快速发展为AD的研究带来了新机遇
[7-8]。利用生物信息学技术结合ML算法构建AD诊断模型,有利于识别AD的潜在生物标志物。基于此,本研究首先对AD组和对照组的基因表达数据进行差异分析和富集分析,初步筛选可能与AD相关的差异表达基因(differentially expressed genes,DEGs),识别DEGs参与的生物学现象、代谢和信号传导途径等,揭示AD发生发展过程中的分子机制;借助蛋白-蛋白相互作用(protein-protein interaction,PPI)网络分析寻找DEGs中的枢纽(
Hub)基因,采用最小绝对收缩和选择算子(least absolute shrinkage and selection operator,LASSO)回归、极限梯度提升(extreme gradient boosting,XGBoost)和随机森林(random forest,RF)3种ML算法对
Hub基因进一步筛选,取3种算法交集的
Hub基因作为AD关键基因,通过RF构建AD诊断模型并对关键基因进行重要性排序,以测试集对模型性能进行评价;利用单样本基因集富集分析评估AD组和对照组样本的免疫细胞浸润情况
[9-10],并对AD特征基因与单样本基因集富集分析(single sample Gene Set Enrichment Analysis,ssGSEA)中的28种免疫细胞亚型进行相关性分析,为AD的早期筛查、临床诊断和个性化治疗提供参考。
1 资料与方法
1.1 数据来源和处理
AD基因表达数据集GSE125583来源于美国国家生物技术信息中心(National Center for Biotechnology Information,NCBI)的基因表达综合(Gene Expression Omnibus,GEO)数据库,该数据集包含219例AD患者和70例神经学正常的冷冻梭形回组织。采用R软件对原始数据集进行标准化、数据格式转换、基因ID转换和质量控制等处理,剔除表达水平低或不表达的劣质基因,按照1∶1的近似比例划分为训练集和测试集,其中,训练集包含110例AD组织和35例正常组织,测试集包含109例AD组织和35例正常组织。
1.2 差异分析
采用R软件中的“DESeq2”“edgeR”“limma”3种R软件包分别对训练集的基因表达数据进行组间差异分析,筛选DEGs,3种R软件包筛选DEGs的标准:|Log2倍数变化(fold change,FC)|>0.5,且校正后的P<0.05。其中,FC为AD组与对照组组间基因表达水平的比值,若|Log2FC|>0.5且Adjust P<0.05,则为上调基因;若|Log2FC|<-0.5且Adjust P<0.05,则为下调基因。
1.3 富集分析
通过R软件中的“clusterProfiler”包
[11]对3种差异分析共同筛选出的交集DEGs进行基因本体论(Gene Ontology,GO)功能富集分析和京都基因与基因组百科全书(Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes,KEGG)信号通路富集分析。其中,GO功能富集分析按照生物过程(biological process,BP)、细胞组分(cell component,CC)和分子功能(molecular function,MF)对DEGs分别进行注释及分类;KEGG信号通路富集分析则是根据信号通路对DEGs进行注释和分类;2种富集分析的筛选标准均为Adjust
P<0.05。
1.4 PPI网络构建与Hub基因筛选
采用STRING数据库(
http://cn.string-db.org/)对交集DEGs构建PPI网络,最低要求互作分数设置为0.7,PPI网络可视化采用Cytoscape 3.9.0软件
[12-13],利用该软件中的CytoHubba插件筛选出边缘渗透组分(edge percolated component,EPC)得分最高的前100位基因作为Hub基因,并对其中前10位Hub基因进行相关性分析。其中EPC通过考虑节点在其邻近区域的连接性来评估该节点的重要性,EPC值越高,说明该节点连接性越强,重要性越高。
1.5 基于多种ML算法的Hub基因筛选
对EPC得分前100位的Hub基因,采用LASSO回归、XGBoost和RF 3种ML算法分别筛选可能与AD相关的基因。其中,基于R软件中的“glmnet”包构建LASSO模型,模型中变量系数为0,则对应基因被剔除;基于R软件中的“xgboost”包构建XGBoost模型,以增益(Gain)值衡量基因的重要性,筛选出Gain值最高的前20位Hub基因;基于R软件中的“randomForest”包构建RF模型,以平均基尼指数下降(mean decrease gini,MDG)作为变量重要性排序指标,筛选出MDG最高的前20位Hub基因;对3种ML算法筛选出的Hub基因取交集并借助韦恩图实现可视化。
1.6 AD诊断模型构建和性能评价
以3种ML算法共同筛选出的Hub基因作为自变量,以是否为AD组织作为因变量,构建RF模型。以平均准确度下降(mean decrease accuracy,MDA)和MDG评价Hub基因对AD的贡献程度,将Hub基因作为AD关键基因,基于测试集评价模型的综合性能,以受试者工作特性(receiver operating characteristic,ROC)曲线评估关键基因在AD诊断中的效能并计算模型的准确率、灵敏度和特异度等指标,进一步评价模型性能。
1.7 免疫细胞浸润分析
采用ssGSEA并结合基因表达数据比较AD组织和对照组织中免疫细胞亚型的浸润丰度,对28种免疫细胞亚型进行自相关性分析,以AD诊断模型中的关键基因联合免疫细胞进行相关性分析。基于免疫细胞基因集cellMarker并利用R软件中的“gsva”包量化免疫细胞浸润丰度,以“ggcor”包实现相关性分析可视化。
2 结 果
2.1 DEGs的筛选
3种R软件包对DEGs的筛选结果:“DESeq2”包的差异分析共筛选出1 530个DEGs,其中上调基因732个,下调基因798个(图
1A和
1B);“edgeR”包的差异分析共筛选出1 560个DEGs,其中上调基因769个,下调基因791个(图
1C和
1D);“limma”包的差异分析共筛选出1 639个DEGs,其中上调基因686个,下调基因953个(图
1E和
1F);3种R软件包取交集后,共筛选出1 287个DEGs,其中上调基因575个(
图2A),下调基因712个(
图2B)
2.2 基于DEGs的GO功能富集分析和KEGG信号通路富集分析
对DEGs分别进行GO功能富集分析和KEGG信号通路富集分析,按照筛选条件得到385个BP、96个CC、80个MF和25个KEGG信号通路。GO功能富集分析结果显示:BP主要为信号释放、跨突触信号传导调节、膜电位调节、突触内囊泡介导的转运和神经递质转运等过程(
图3A);CC主要为谷氨酸能突触、神经元细胞体、突触前膜、胞吐囊膜和γ-氨基丁酸能突触等组成(
图3B);MF主要为单原子离子通道活性、无机阴离子跨膜转运蛋白活性、神经递质受体活性、突触后神经递质受体活性和配体门控单原子阴离子通道活性等功能(
图3C)。KEGG信号通路富集分析结果显示:DEGs主要富集在神经活性配体-受体相互作用、磷脂酰肌醇3激酶(phosphatidylinositol 3-kinase,PI3K)/蛋白激酶B(protein kinase B,AKT)信号通路、环磷酸腺苷信号通路、γ-氨基丁酸能突触通路和5-羟色胺能突触通路等(
图3D)。
2.3 PPI网络构建和Hub基因筛选
基于筛选出的DEGs,利用STRING数据库并结合Cytoscape 3.9.0软件对DEGs构建PPI网络(
图4A),将EPC得分最高的前100位基因作为
Hub基因,EPC得分前10位的基因分别为脑源性神经营养因子(brain derived neurotrophic factor,
BDNF)、C-X-C基序趋化因子配体(C-X-C motif chemokine ligand 8,
CXCL)8、胰岛素样生长因子1(insulin-like growth factor 1,
IGF1)、转化生长因子β1(transforming growth factor beta1,
TGFB1)、基质金属蛋白酶9(matrix metallopeptidase 9,
MMP-
9)、趋化因子受体4(C-X-C motif chemokine receptor 4,
CXCR4)、G蛋白亚基γ2(G protein subunit gamma 2,
GNG2)、白蛋白(albumin,
ALB)、生长抑素(somatostatin,
SST)和神经肽Y(neuropeptide Y,
NPY),前10位
Hub基因的PPI网络是由10个节点和24条边组成(
图4B),前10位
Hub基因之间存在一定相关性(
图4C)。
2.4 基于多种ML算法筛选Hub基因
以LASSO回归、XGBoost和RF 3种ML算法对EPC得分前100位的Hub基因进一步筛选。通过R软件绘制LASSO回归的系数路径图和LASSO回归的交叉验证曲线(
图5A和图
5B),10折交叉验证确定最佳正则化参数λ(Lambda)为0.006 245 4,对应的Log(λ)为-5.075 91。根据λ确定LASSO回归模型中变量的回归系数(S),以S绝对值大小反映各Hub基因对AD的重要性,共筛选出成纤维细胞生长因子9(fibroblast growth factor 9,
FGF9)和胃泌素释放肽(gastrin releasing peptide,
GRP)等39个较为重要的基因(
图5D);XGBoost算法筛选过程中,根据Gain值共筛选出IGF2和血小板衍生生长因子受体β(platelet derived growth factor receptor beta,
PDGFRB)等20个基因(
图5E);RF算法筛选中,根据MDG值共筛选出
BDNF和
PDGFRB等20个基因(
图5F);3种ML算法共筛选出9个交集
Hub基因,分别为
BDNF、
PDGFRB、腺苷酸环化酶激活多肽1(adenylate cyclase activating polypeptide 1,
ADCYAP1)、
CXCR4、溶质载体家族32成员1(solute carrier family 32 member 1,
SLC32A1)、干扰素α2(interferon Alpha 2,
IFNA2)、
IGF2、
SST和
GRP(
图5C)。
2.5 AD诊断模型的构建及评价
将9个
Hub基因作为AD诊断的关键基因,采用RF算法构建AD诊断模型。利用10折交叉验证,确定最优mtry(指定节点中用于二叉树的变量数)为2,最佳ntree(构成森林的决策树的个数)为500;MDG和MDA均位列前5位的关键基因有4个:
BDNF、
ADCYAP1、
PDGFRB和
CXCR4(图
6A和
6B);模型的AUC值为0.828,准确率为81.25%(
图6C),灵敏度为84.40%,特异度为71.43%(
图6D); 关键基因
BDNF、
ADCYAP1、
PDGFRB和
CXCR4的AUC值分别为0.795、0.852、0.820及0.756(图
7A~
7D)。
2.6 AD组和对照组脑组织的免疫细胞浸润情况
与对照组织比较,AD组中活化B淋巴细胞、活化CD4+T淋巴细胞、CD56强NK/CD56弱阳性/NK细胞、中央记忆CD4+/CD8+T淋巴细胞、效应记忆CD8+T淋巴细胞、γδT细胞、幼稚B细胞、巨噬细胞、肥大细胞、髓源抑制性细胞、记忆B细胞、单核细胞、NK/NKT细胞、中性粒细胞、浆细胞样树突细胞(dendritic cell,DC)、调节性T淋巴细胞、1型辅助性T细胞/17型辅助性T细胞浸润程度较高(
P<0.05),而效应记忆CD4+T淋巴细胞及Th2细胞浸润程度较低(
P<0.05)(
图8A);免疫细胞自相关分析结果显示:中央记忆CD4+/CD8+T淋巴细胞与骨髓源性抑制细胞和NK细胞相关性较强,单核细胞、Th2细胞和嗜酸性细胞与其他免疫细胞相关性较弱(
图8B);ADCYAP1、CXCR4、PDGFRB和BDNF与NK/NKT细胞和浆细胞样树突状细胞均呈显著正相关关系(
P<0.01)(
图8B)。
3 讨 论
AD在痴呆类病例中占60%~80%,是最常见的痴呆类疾病
[14]。迄今为止,影响AD发病的因素十分复杂,而AD发病风险60%~80%取决于遗传因素
[15]。本研究从遗传学角度出发,利用生物信息学技术和ML算法对AD组及对照组的转录组数据进行分析,构建AD诊断模型,筛选关键基因,发掘AD相关的潜在分子标志物。
本研究采用“DESeq2”“edgeR”“limma” 3种差异分析R软件包来筛选DEGs
[16-18],综合3种R软件包的优势,提高DEGs筛选的可靠性和稳定性。最终共筛选出1 287个DEGs,其中上调575个,下调712个,将其用于后续分析以降低筛选假阳性,提高准确性。
为揭示DEGs的生物学功能和信号通路,本研究对1 287个DEGs分别进行了GO功能富集分析和KEGG信号通路富集分析。GO功能富集分析结果显示:DEGs主要参与神经信号传递、神经递质转运、突触功能和膜电位调节等BP。有研究者
[19]指出:谷氨酸作为人脑中兴奋性神经递质,在介导认知和行为功能等方面具有重要作用,而谷氨酸能突触的丧失被认为与AD的临床症状密切相关;DEGs主要定位在囊泡相关成分、突触相关成分和神经元特定成分等CC。研究
[20]显示:小鼠模型中囊泡谷氨酸转运蛋白1(vesicular glutamate transporters 1,VGLUT1)表达明显增加,具有广泛的Aβ沉积,而Aβ沉积正是AD的主要标志之一,提示囊泡及突触相关DEGs可能与AD发病机制高度相关;DEGs主要富集在跨膜离子转运功能、神经递质和配体门控的信号传导功能上。研究者
[21]分析了AD组和正常对照组研究对象的小脑转录谱,结果显示:活性离子跨膜转运蛋白活性基因的过度表达,可能会导致细胞内外离子浓度失衡,进而造成肌肉收缩、神经传导过程紊乱,最终引起AD。本研究中KEGG信号通路富集分析结果显示:DEGs主要调控神经递质通路、细胞内信号转导通路和离子信号通路。研究
[22]显示:PI3K-AKT等细胞内信号通路可以作为防治AD的天然靶点。
为构建AD诊断模型,本研究首先基于DEGs构建PPI网络,初步筛选
Hub基因,随后以LASSO回归、XGBoost和RF对
Hub基因进一步筛选,最终,利用RF构建AD诊断模型并对关键基因进行重要性排序,以测试集评价模型性能,结果显示:
BDNF、
ADCYAP1、
PDGFRB和
CXCR4均位列MDA及MDG排序的前5位,4个关键基因和模型的AUC均大于0.75,模型的准确率为81.25%,灵敏度为84.40%,特异度为71.43%,表明模型的诊断性能良好,关键基因对AD具有一定的诊断能力。ADCYAP1是一种腺苷酸环化酶激活肽,其受体可激活环磷酸腺苷(cyclic adenosine monophosphate,cAMP)信号通路介导的蛋白酶体活性,促进Tau蛋白水解,可能成为AD和Tau蛋白病变治疗的新靶点
[23]。研究
[24]显示:ADCYAP1编码的垂体腺苷酸环化酶激活肽(pituitary adenylate cyclase activating polypeptide,PACAP)具有调节神经递质和抗氧化应激的作用,其通过调节ADCYAP1表达水平来影响自身的生成,故在缓解AD方面具有一定的治疗价值。BDNF属于神经营养因子蛋白质家族的一员,研究
[25-27]显示:BDNF可通过酪氨酸蛋白激酶B(tyrosine protein kinase B,TrkB)激活PI3K/AKT等信号通路来抑制神经元凋亡,促进突触的形成和重塑,增强突触传递效率,对AD具有保护作用;PDGFRB是指血小板衍生生长因子受体β,其可调节脑内血管生成和修复,通过测量CSF中可溶性PDGFRB水平来衡量血脑屏障(blood-brain barrier,BBB)的受损程度,是判断认知功能障碍的生物标志物之一
[28];CXCR4属于CXC趋化因子受体家族,与特异性配体CXCL12结合可激活AKT和cAMP响应元件结合蛋白(cAMP responsive element binding protein,CREB)等,调节细胞存活和增殖、神经保护及可塑等,从而影响衰老及AD,故CXCR4可能会成为治疗AD的新靶点和生物标志物
[29]。
为进一步探讨AD患者的免疫学特征,本研究进行了免疫细胞浸润分析,结果显示:与对照组脑组织比较,AD组脑组织中多数免疫细胞活性显著上调,包括巨噬细胞、单核细胞、辅助性T细胞、各种NK细胞和淋巴细胞等,表明在AD进展中可能伴随着免疫系统的激活。研究
[30-31]证实:在多种AD小鼠模型中,外周1型和外周17型辅助性细胞与炎性细胞因子的释放有关。研究
[32]显示:NK细胞可以产生白细胞介素(interleukin,IL)3、IL-5和IL-10等细胞因子,而IL-10的稳定对帕金森症、骨关节炎和AD等炎症性疾病至关重要,因此NK细胞可能通过其释放的细胞因子影响AD的进展。研究
[33-34]显示:AD患者中,单核-巨噬细胞通过BBB进入脑组织,参与清除Aβ斑块,但持续的单核-巨噬细胞活化可能会导致慢性炎症状态,从而促进Aβ的沉积和神经元损伤。因此,单核-巨噬细胞在AD进展中可能具有双重作用:既参与病理物质的清除,也可能通过引发慢性炎症而加剧疾病进展。
综上所述,本研究利用生物信息学技术和ML算法逐步筛选AD相关Hub基因,并进一步构建AD诊断模型,挖掘AD相关的关键基因,探讨AD患者的免疫学特征,为其诊断提供了新的分子标志物。然而,本研究也存在局限性,首先,病例与对照组的比例不均衡,可能会影响基因筛选的准确性;其次,本研究是基于公共数据库进行的,缺乏关于Hub基因的验证性实验。因此,仍需要采用比例适宜的随机对照试验并结合临床数据验证,以期为AD的诊断和防治提供更有力的依据。
国家自然科学基金面上项目(81872719)
国家自然科学基金青年科学基金项目(81803337)
山东省科技厅自然科学基金面上项目(ZR2023MH034)
山东省潍坊市中医药科研立项项目(第二类)(WFZYY2024-2-001)