农药百克敏对小鼠精母细胞GC-2铁死亡的诱导作用

汤子怡 ,  阳诗盈 ,  杨天珍 ,  刘闻强 ,  钟江雪 ,  尹俐

吉林大学学报(医学版) ›› 2026, Vol. 52 ›› Issue (01) : 18 -25.

PDF (625KB)
吉林大学学报(医学版) ›› 2026, Vol. 52 ›› Issue (01) : 18 -25. DOI: 10.13481/j.1671-587X.20260103
基础研究

农药百克敏对小鼠精母细胞GC-2铁死亡的诱导作用

作者信息 +

Induction effect of pesticide pyraclostrobin on ferroptosis of spermatocytes GC-2 of mice

Author information +
文章历史 +
PDF (639K)

摘要

目的 探讨百克敏对小鼠精母细胞GC-2铁死亡的影响,阐明百克敏是否能引起雄性生殖毒性。 方法 小鼠精母细胞GC-2分为对照组(普通培养基)、低剂量百克敏组(0.8 µmol·L-1百克敏)、中剂量百克敏组(1.6 µmol·L-1百克敏)和高剂量百克敏组(2.4 µmol·L-1百克敏)。给予百克敏处理24 h后,采用噻唑蓝(MTT)法检测不同剂量百克敏作用下GC-2细胞活性,JC-1线粒体膜电位检测试剂盒检测各组GC-2细胞中线粒体膜电位,超氧化物歧化酶(SOD)活性检测试剂盒检测各组GC-2细胞中SOD活性,丙二醛(MDA)检测试剂盒检测各组GC-2细胞中MDA水平,还原型谷胱甘肽(GSH)和氧化型GSH(GSSG)检测试剂盒检测各组GC-2细胞中GSH和GSSG水平,并计算GSH/GSSG比值;Western blotting法检测各组GC-2细胞中血红素氧合酶1(HO-1)、铁蛋白重链1(FTH1)和GSH过氧化物酶4(GPX4)蛋白表达水平。 结果 与对照组比较,百克敏剂量≥1.0 μg·L-1各组GC-2细胞活性均降低(P<0.01),设置其低、中和高剂量分别为0.8、1.6和2.4 μmol·L-1百克敏。JC-1法,与对照组比较,中和高剂量百克敏组GC-2细胞线粒体膜电位均降低。与对照组比较,低、中和高剂量百克敏组GC-2细胞中SOD活性均降低(P<0.01),MDA水平升高(P<0.01)。与对照组比较,低、中和高剂量百克敏组GC-2细胞中GSH水平均降低(P<0.01)、GSSG水平均升高(P<0.01),且GSH/GSSG比值均降低(P<0.01)。与对照组比较,低、中和高剂量百克敏组GC-2细胞中HO-1蛋白表达水平明显升高(P<0.05或P<0.01),FTH1和GPX4蛋白表达水平明显降低(P<0.05或P<0.01)。 结论 百克敏能够诱导小鼠精母细胞GC-2铁死亡。

Abstract

Objective To discuss the effect of pyraclostrobin on ferroptosis in the spermatocytes GC-2 of the mice, and to clarify whether pyraclostrobin can cause male reproductive toxicity. Methods The mouse spermatocytes GC-2 were divided into control group, low dose of pyraclostrobin group (0.8 µmol·L-1 pyraclostrobin), medium dose of pyraclostrobin group (1.6 µmol·L-1 pyraclostrobin) and high dose of pyraclostrobin group (2.4 µmol·L-1 pyraclostrobin). After being treated with pyraclostrobin for 24 h,methylthiazolyldiphenyl-tetrazolium bromide (MTT) method was used to detect the proliferation activities of the GC-2 cells after treated with different doses of pyraclostrobin; mitochondrial membrane potential detection kit JC-1 was used to detect the mitochondrial membrane potential in the GC-2 cells in various groups; superoxide dismutase (SOD) activity detection kit was used to detect the activities of SOD in the GC-2 cells in various groups; malondialdehyde (MDA) assay kit was used to determine the levels of MDA in the GC-2 cells in various groups; reduced glutathione (GSH) and oxidized glutathione (GSSG) detection kits were used to detect the levels of GSH and GSSG in the GC-2 cells, and the ratios of GSH/GSSG in various groups were calculated; Western blotting method was used to detect the expression levels of heme oxygenase-1 (HO-1), ferritin heavy chain 1 (FTH1) and glutathione peroxidase 4 (GPX4) in the GC-2 cells in various groups. Results Compared with control group, the proliferation activities of the GC-2 cells in various pyaclostrobin dose ≥1.0 μg·L-1 groups were decreased (P<0.01). The low, medium, and high doses of pyraclostrobin were 0.8, 1.6, and 2.4 µmol·L-1. The results of JC-1 method showed that compared with control group, the mitochondrial membrane potential of the GC-2 cells in medium, and high doses of pyraclostrobin groups were decreased. Compared with control group, the SOD activity in the GC-2 the cells in low, medium, and high doses of pyraclostrobin groups were decreased (P<0.01), and the MDA levels in the GC-2 cells were increased (P<0.01). Compared with control group, the GSH levels in the GC-2 cells in low, medium, and high doses of pyraclostrobin groups were significantly decreased (P<0.01), the GSSG levels were increased (P<0.01), and the GSH/GSSG ratios were decreased (P<0.01). Compared with control group, the expression levels of HO-1 protein in the GC-2 cells in low, medium, and high doses of pyraclostrobin groups were significantly increased (P<0.05 or P<0.01), while the expression levels of FTH1 and GPX4 proteins were significantly decreased (P<0.05 or P<0.01). Conclusion Pyraclostrobin can induce the ferroptosis of the spermatocytes GC-2.

Graphical abstract

关键词

百克敏 / 小鼠精母细胞 / 铁死亡 / 谷胱甘肽过氧化物酶4 / 氧化应激

Key words

Pyraclostrobin / Mouse spermatocytes / Ferroptosis / Glutathione peroxidase 4 / Oxidative stress

引用本文

引用格式 ▾
汤子怡,阳诗盈,杨天珍,刘闻强,钟江雪,尹俐. 农药百克敏对小鼠精母细胞GC-2铁死亡的诱导作用[J]. 吉林大学学报(医学版), 2026, 52(01): 18-25 DOI:10.13481/j.1671-587X.20260103

登录浏览全文

4963

注册一个新账户 忘记密码

百克敏又称吡唑醚菌酯,是一种农业用的广谱杀菌剂,广泛应用于小麦、大豆、花生和水稻等多种作物的真菌病害防治1-3。然而,其环境残留问题日益引起关注。在美国加利福尼亚采集的鱼类和沙蟹样本中,百克敏的检出率高达100%4。同时,在中国不同地区的稻田水体中,施用百克敏3 d后检测到的最大残留浓度可达17.24 µg·L-1[5。随着百克敏在自然水体和食物链中被频繁检出,其对生态系统和人类健康的潜在风险逐渐显现。研究6-9显示:百克敏对罗非鱼和斑马鱼等水生生物具有显著的毒性效应,可诱导胚胎发育毒性、心脏毒性、神经毒性和肝毒性。同时,其对土壤线蚓的繁殖功能也产生不利影响10。在人类健康方面,百克敏暴露可导致接触性皮炎等不良反应11。然而,关于百克敏对人类生殖系统,特别是雄性生殖功能的潜在影响尚未得到充分研究。铁死亡是一种铁依赖性的程序性细胞死亡形式,其特征是谷胱甘肽(glutathione, GSH)耗竭和GSH过氧化物酶4(GSH peroxidase 4,GPX4)活性降低,导致脂质过氧化物代谢障碍并大量积累12-13。上述过氧化物在二价铁离子(Fe2+)的催化下发生芬顿反应,产生大量活性氧(reactive oxygen species,ROS),最终引发铁死亡14。近年研究15-17表明:多种环境污染物可通过诱导铁死亡途径对机体造成损伤。然而,百克敏是否通过铁死亡影响雄性生殖功能目前尚未阐明。基于此,本研究旨在探讨百克敏暴露能否通过诱导精母细胞铁死亡而导致小鼠雄性生殖毒性,以期为评估百克敏的生殖健康风险提供新的科学依据。

1 材料与方法

1.1 细胞、主要试剂和仪器

小鼠精母细胞GC-2购自美国典型培养物保藏中心(American Type Culture Collection,ATCC)细胞库。高糖培养基改良Eagle培养基(Dulbecco’s modified Eagle medium,DMEM)和胎牛血清购自上海逍鹏生物科技有限公司,双抗(1%青-链霉素)购自苏州新赛美生物科技有限公司,百克敏购自上海叶源生物科技有限公司,噻唑蓝(methylthiazolyldiphenyl-tetrazolium bromide,MTT)购自北京酷来搏科技有限公司,JC-1线粒体膜电位检测试剂盒、超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)活性检测试剂盒、丙二醛(malondialdehyde,MDA)检测试剂盒、GSH和氧化型GSH(oxidized glutathione,GSSG)检测试剂盒购自上海碧云天生物技术有限公司,辣根酶标记山羊抗兔IgG和辣根酶标记山羊抗小鼠IgG购自北京中杉金桥生物技术有限公司,血红素氧合酶1(heme oxygenase-1,HO-1)和GPX4购自中国Proteintech公司,铁蛋白重链1(ferritin heavy chain 1,FTH1)购自成都正能生物技术有限责任公司。Centrifuge 5804R型高速冷冻离心机购自德国 Eppendorf 公司,Fluor Chem HD2型化学发光凝胶成像系统购自美国Protein Simple公司,Synergy H1型多功能荧光酶标仪购自美国BioTek公司,NIS-Elements型激光共聚焦显微镜购自日本Nikon公司。

1.2 小鼠精母细胞GC-2的培养和分组

采用含有10%胎牛血清和1%青-链霉素的DMEM高糖培养基,于37 ℃、5% CO2的恒温孵箱中培养小鼠精母细胞GC-2。取处于对数生长期的GC-2细胞均匀接种在6孔细胞培养板中,24 h后观察细胞状态。将GC-2细胞分为对照组、低剂量百克敏组、中剂量百克敏组和高剂量百克敏组。对照组细胞采用普通培养基处理24 h,低、中和高剂量百克敏组细胞分别给予0.8、1.6和2.4 µmol·L-1百克敏处理,24 h后收集细胞进行下一步实验操作。

1.3 MTT法检测不同剂量百克敏作用下GC-2细胞活性

取处于对数生长期的GC-2细胞,均匀接种于24孔细胞培养板中,放置于37 ℃、5% CO2恒温孵箱中培养。重新配置培养基并加入百克敏,使其终浓度为0.5、1.0、1.5、2.0、2.5、3.0、3.5、4.0和4.5 µmol·L-1。吸弃24孔细胞培养板中的培养基,向对照组中加入不含百克敏的完全培养基,实验组加入上述含有不同浓度百克敏的培养基,于恒温孵箱中培养24 h后每孔加入50 µL浓度为5 g·L-1的MTT溶液,置于恒温孵箱中继续培养4 h。吸弃24孔细胞培养板中的培养基并向其中加入550 µL的二甲基亚砜(dimethyl sulfoxide,DMSO)溶液,将其放在低速摇床上避光振荡10 min,用酶标仪在波长570 nm处(参比波长630 nm)测定其吸光度(A)值,并计算细胞活性。细胞活性=(实验组A值-空白组A值)/(对照组A值-空白组A值)×100%。

1.4 采用试剂盒检测GC-2细胞中线粒体膜电位

取处于对数生长期的GC-2细胞均匀接种于6孔细胞培养板中,置于37 ℃、5% CO2恒温孵箱中培养。将细胞分为对照组和实验组,对照组加入普通培养基,实验组依次加入低、中和高剂量的百克敏处理24 h。收取样品时吸弃培养基,用磷酸盐缓冲液(phosphate buffer saline,PBS)清洗1次,将完全培养基与JC-1染色工作液按1∶1的比例充分混匀后,每孔加入2 mL混合溶液,于恒温孵箱中孵育20 min,弃去上清,用JC-1染色缓冲液(1×)清洗2次,重新加入2 mL完全培养基后用激光共聚焦显微镜进行观察。绿色荧光表示细胞中线粒体膜电位降低,红色荧光表示细胞中线粒体膜电位正常。

1.5 采用试剂盒检测各组GC-2细胞中SOD活性

按照“1.4”中的细胞接板和分组方式对细胞进行处理。吸弃培养基后用预冷的PBS缓冲液清洗1次,加入SOD样品制备液,吹打裂解细胞,于4 ℃预冷离心机中12 000 g离心3 min,取上清液作为待测样品。在96孔细胞培养板中分别加入20 µL的空白对照、样品和标准品,每孔加入160 µL的WST-8/酶工作液混匀,再加入20 µL的反应启动工作液,于37 ℃条件下孵育30 min,用酶标仪检测其在波长450 nm处的A值。抑制百分率=(空白对照1 A值-样品A值)/(空白对照1 A值-空白对照2 A值)×100%,SOD酶活性(U·µg-1)=抑制百分率/(1-抑制百分率)×(Cprot×V)。Cprot为样本蛋白浓度,V为样品体积。

1.6 采用试剂盒检测各组GC-2细胞中MDA水平

按照“1.4”中的细胞接板和分组方式对细胞进行处理。用裂解液收取样品,二喹啉甲酸(bicinchoninic acid,BCA)法测定蛋白浓度,在1.5 mL离心管中加入100 µL裂解液作为空白对照,加入100 µL不同浓度的标准品用于制作标准曲线,加入100 µL样品用于测定,每个管中加入200 µL MDA检测工作液混匀后于100 ℃的沸水中加热15 min,水浴冷却至室温后1 000 g离心10 min取上清,在96孔细胞培养板中加入200 µL上清,用酶标仪测定其在波长532 nm处的A值,根据标准曲线计算样品的MDA水平,再根据蛋白浓度来计算总样品中的MDA水平。

1.7 采用试剂盒检测各组GC-2细胞中GSH和GSSG水平

按照“1.4”中的细胞接板和分组方式对细胞进行处理。用PBS缓冲液洗涤细胞1次,离心后取一部分细胞用于蛋白浓度检测,另一部分细胞加入细胞沉淀体积的3倍量的蛋白去除剂M溶液后振匀,利用液氮和37 ℃水浴对样品进行2次快速冻融,4 ℃放置5 min后放于4 ℃预冷的离心机中10 000 g离心10 min,收集上清用于后续总GSH和GSSG的测定。总GSH检测:在96孔细胞培养板中加入标准品和样品,加入150 µL总GSH检测工作液混匀并室温孵育5 min,加入50 µL的0.5 mg·L-1还原型烟酰胺腺嘌呤二核苷酸磷酸(nicotinamide adenine dinucleotide phosphate,NADPH) 溶液混匀, 测定其在412 nm波长处A值;GSSG测定:按照100 µL样品加入20 µL GSH清除辅助液振匀,再加入4 µL GSH清除工作液混匀,室温静置60 min后,按照上述测定总GSH的方法测定A值。样品对照标准曲线计算样品中总GSH和GSSG的水平,利用测定得到的蛋白浓度计算出每毫克蛋白中的总GSH和GSSG的水平,后通过公式计算出GSH的水平。GSH=总GSH-GSSG×2。GSH/GSSG=GSH/GSSH×100%。

1.8 Western blotting法检测各组GC-2细胞中HO-1、FTH-1和GPX4蛋白表达水平

按“1.4”的方法接板和分组。每孔加入200 µL细胞裂解液,放置在冰上裂解30 min后收集细胞裂解液,于4 ℃预冷的离心机中以12 000 g离心20 min,取上清液用BCA法测定样品的蛋白浓度。用测得的蛋白浓度进行样品的配制,加入相应的裂解液和5×缓冲液将样品的蛋白浓度调成一致并进行变性,用12.5%十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳(sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis,SDS-PAGE)对蛋白进行分离,之后放置在冰水中湿转,将蛋白转至聚偏二氟乙烯(polyvinylidene fluoride,PVDF)膜上,用5%脱脂奶粉在室温下封闭1 h,分别用HO-1、FTH-1、GPX2和β-tubulin的抗体在室温下孵育2 h,用含吐温Tris缓冲盐溶液(Tris buffered saline with Tween-20,TBST)冲洗3次,加入相应的二抗在室温下孵育1 h,TBST溶液冲洗3次,结束后显影。采用Image J软件分析蛋白条带灰度值,计算目的蛋白表达水平。目的蛋白表达水平=目的蛋白条带灰度值/β-tubulin蛋白条带灰度值。

1.9 统计学分析

采用GraphPad Prism 8软件进行统计学分析。各组GC-2细胞活性,各组GC-2细胞中SOD活性、MDA水平、GSH水平、GSSG水平和GSH/GSSG比值,各组GC-2细胞中HO-1、GPX4和FTH1蛋白表达水平均符合正态分布,以x±s表示,多组间样本均数比较采用单因素方差分析,组间样本均数两两比较采用LSD-t检验。以P<0.05为差异有统计学意义。

2 结 果

2.1 不同剂量百克敏作用下各组GC-2细胞活性

与对照组比较,百克敏剂量≥1.0 µmol·L-1各组GC-2细胞活性均降低(P<0.01)。见表1。后续实验以半数抑制浓度(half maximal inhibitory concentration,IC50)作为百克敏的最高剂量,设置其低、中和高剂量分别为0.8、1.6和2.4 µmol·L-1

2.2 各组GC-2细胞的线粒体膜电位

与对照组比较,低、中和高剂量百克敏组中GC-2细胞绿色荧光强度均明显增强,表明百克敏处理后GC-2细胞中的线粒体膜电位明显降低。见图1

2.3 各组GC-2细胞中SOD活性和MDA水平

与对照组比较,低、中和高剂量百克敏组GC-2细胞中SOD活性降低(P<0.01),MDA水平升高(P<0.01)。见表2。与对照组比较,高剂量百克敏组GC-2细胞中SOD水平下降78.63%,MDA水平升高167.00%。

2.4 各组GC-2细胞中GSH和GSSG水平及GSH/GSSG比值

与对照组比较,中和高剂量百克敏组GC-2细胞中GSH水平降低(P<0.01),GSSG水平升高(P<0.01),GSH/GSSG比值降低(P<0.01)。见表3。与对照组比较,高剂量百克敏组GC-2细胞中GSH水平下降62.88%,GSSG水平升高47.02%,GSH/GSSG比值降低74.95%。

2.5 各组GC-2细胞中HO-1、FTH1和GPX4蛋白表达水平

与对照组比较, 低、 中和高剂量百克敏组GC-2细胞中HO-1蛋白表达水平升高(P<0.05或P<0.01),FTH1和GPX4蛋白表达水平降低(P<0.05或P<0.01)。见图2表4。与对照组比较,高剂量百克敏组GC-2细胞中HO-1蛋白表达水平增加281.00%,FTH1蛋白表达水平降低83.00%,GPX4蛋白表达水平降低54.00%。

3 讨 论

百克敏作为QoI类杀菌剂的典型代表,因其具有广谱高效的杀菌活性而在农业生产中得到了广泛应用1。然而,百克敏在环境介质(土壤、水体和大气)中的持续积累,其生态毒理学效应日益引起研究者关注18。研究510表明:百克敏对多种非靶标生物(水生生物和土壤无脊椎动物)具有显著的急性毒性和慢性毒性效应,然而,其对哺乳动物生殖系统,特别是雄性生殖功能的潜在毒性作用及其分子机制仍缺乏系统性研究。为了探讨百克敏是否具有生殖毒性,本研究以小鼠精母细胞GC-2为体外模型,采用不同剂量(0.5~4.5 µmol·L-1)的百克敏处理24 h。细胞活性检测结果显示:当百克敏暴露剂量≥1.0 µmol·L-1时,GC-2细胞的活性显著降低。进一步分析发现:百克敏暴露导致GC-2细胞中SOD活性和GSH水平降低,MDA水平和GSSG水平升高,并且GSH/GSSG比值显著降低。上述结果表明:百克敏可通过破坏GC-2细胞的氧化还原稳态,诱导氧化应激反应,从而可能对雄性生殖系统造成潜在损伤。基于上述发现,本研究进一步探讨了百克敏能否诱导GC-2细胞发生铁死亡。

铁死亡是一种铁依赖性的程序性细胞死亡方式,其特征包括脂质过氧化物的过度积累和抗氧化防御系统的崩溃,其能够通过调控生殖细胞的数量和质量、参与精子形态塑造、影响精子运动能力和受精能力,在精子发生过程中发挥关键作用19。然而,铁死亡过程的异常可导致精子发生障碍,进而引发男性不育20-21。GPX4是铁死亡的标志分子,具有抑制脂质过氧化的功能,能够降解小分子过氧化物和脂质过氧化物,在铁死亡调控中发挥关键作用22。研究23显示:约30%的少弱精子症患者精液中GPX4蛋白表达水平显著降低,并且在小鼠精母细胞中特异性敲除GPX4会导致精子数量显著减少、精子活力显著降低和精子结构异常等现象。本研究结果显示:小鼠精母细胞GC-2暴露于百克敏后,GPX4蛋白表达水平显著下调,可能导致其抑制脂质过氧化的功能受损,从而诱导GC-2细胞发生铁死亡。FTH1作为铁储存蛋白,其主要功能是通过结合游离铁,维持细胞内铁稳态24。在双酚F诱导小鼠暴露模型导致的生殖损伤中,FTH1能够介导生精细胞中的铁死亡,并且影响双酚F诱导的生殖损伤25。在本研究中,GC-2细胞暴露于百克敏后,FTH1蛋白表达水平显著下调,可能导致细胞中游离铁水平升高,促进铁催化的Fenton反应和脂质过氧化,进一步促进铁死亡的发生26。另一方面,HO-1能够通过分解血红素释放游离铁,增加细胞内铁离子的含量,促进铁死亡的发展27。而HO-1的过度激活会增加ROS和脂质过氧化,对精子质量、睾丸功能和激素水平等产生负面影响21。在本研究中,GC-2细胞中的HO-1蛋白表达水平上调可能进一步加剧铁死亡过程。基于上述实验结果,本研究发现百克敏能够诱导小鼠精母细胞GC-2发生铁死亡,进而对生殖系统产生毒性作用。

百克敏杀菌机制主要依赖于抑制真菌细胞色素b与c1之间的电子传递,阻断线粒体呼吸链复合体Ⅲ的功能,从而抑制三磷酸腺苷(adenosine triphosphate,ATP)的生成,干扰真菌的能量代谢循环,最终发挥抑菌作用128。线粒体不仅是细胞能量代谢的核心细胞器,在铁死亡调控中发挥关键作用。作为铁代谢和ROS生成的主要场所,线粒体通过维持细胞内氧化还原稳态来参与铁死亡的调控过程29-30。本研究结果显示:百克敏暴露可导致GC-2细胞线粒体膜电位显著降低,表明百克敏可能通过干扰线粒体功能影响细胞的能量代谢过程。这一发现为进一步阐明百克敏诱导铁死亡的分子机制提供了重要线索,同时也提示线粒体功能障碍可能是百克敏生殖毒性的关键环节之一。

综上所述,百克敏暴露可显著降低精母细胞的抗氧化能力,导致细胞内脂质过氧化物积累,并且诱导精母细胞发生铁死亡。本研究揭示了百克敏能够通过诱导精母细胞铁死亡,进一步引发生殖毒性作用,为阐明环境污染物诱导男性生殖相关疾病的潜在诱因和发病机制提供了新的理论依据和研究思路。

参考文献

[1]

张明浩, 康珊珊, 王 曦, . 基于多作物中吡唑醚菌酯的环境行为评估长期膳食风险[J]. 农业工程学报202339(11): 286-294.

[2]

JOSHI JSHARMA SGURUPRASAD K N. Foliar application of pyraclostrobin fungicide enhances the growth, rhizobial-nodule formation and nitrogenase activity in soybean (var. JS-335)[J]. Pestic Biochem Physiol2014114: 61-66.

[3]

刘冰卿, 陈 霞, 凌金锋, . 氯氟醚菌唑·吡唑醚菌酯对柑橘炭疽病的田间防治效果[J]. 热带农业科学202343(7): 53-56.

[4]

罗 跃, 吴小毛, 胡贤锋, . 吡唑醚菌酯的降解代谢及毒理研究进展[J]. 农业资源与环境学报202239(4): 651-663.

[5]

李烨青, 张昌朋, 赵学平, . 吡唑醚菌酯对斑马鱼早期生命阶段的亚致死效应研究[J]. 生态毒理学报202419(4): 338-349.

[6]

LI HZHAO FCAO F Jet al. Mitochondrial dysfunction-based cardiotoxicity and neurotoxicity induced by pyraclostrobin in zebrafish larvae[J]. Environ Pollut2019251: 203-211.

[7]

WU Y ZWANG Y JTONG Zet al. Pyraclostrobin induces developmental toxicity and cardiotoxicity through oxidative stress and inflammation in zebrafish embryos[J]. Environ Pollut2024358: 124490.

[8]

WU M QBIAN J HHAN Set al. Characterization of hepatotoxic effects induced by pyraclostrobin in human HepG2 cells and zebrafish larvae[J]. Chemosphere2023340: 139732.

[9]

MAO L GJIA WZHANG Let al. Embryonic development and oxidative stress effects in the larvae and adult fish livers of zebrafish (Danio rerio) exposed to the strobilurin fungicides, kresoxim-methyl and pyraclostrobin[J]. Sci Total Environ2020729: 139031.

[10]

KOVAČEVIĆ MHACKENBERGER D KHACKENBERGER B K. Effects of strobilurin fungicides (azoxystrobin, pyraclostrobin, and trifloxystrobin) on survival, reproduction and hatching success of Enchytraeus crypticus[J]. Sci Total Environ2021790: 148143.

[11]

WANG Q YLUO N NLEI Met al. Facial irritant contact dermatitis caused by pyraclostrobin[J]. Clin Cosmet Investig Dermatol202215: 1643-1647.

[12]

TANG D LKANG RVANDEN BERGHE Tet al. The molecular machinery of regulated cell death[J]. Cell Res201929(5): 347-364.

[13]

STOCKWELL B RFRIEDMANN ANGELI J PBAYIR Het al. Ferroptosis: a regulated cell death nexus linking metabolism, redox biology, and disease[J]. Cell2017171(2): 273-285.

[14]

ZHANG S PXIN WANDERSON G Jet al. Double-edge sword roles of iron in driving energy production versus instigating ferroptosis[J]. Cell Death Dis202213(1): 40.

[15]

WU S F, GA Y, MA D Yet al. The role of ferroptosis in environmental pollution-induced male reproductive system toxicity[J]. Environ Pollut2024363(Pt 1): 125118.

[16]

NAKAMURA TNAGURO IICHIJO H. Iron homeostasis and iron-regulated ROS in cell death, senescence and human diseases[J]. Biochim Biophys Acta Gen Subj20191863(9): 1398-1409.

[17]

YANG L LCAI X MLI R B. Ferroptosis induced by pollutants: an emerging mechanism in environmental toxicology[J]. Environ Sci Technol202458(5): 2166-2184.

[18]

HAN L XWANG Y RWANG Y Jet al. Pyraclostrobin repeated treatment altered the degradation behavior in soil and negatively affected soil bacterial communities and functions[J]. J Hazard Mater2025485: 136876.

[19]

YUAN W ZSUN Z BJI G Jet al. Emerging roles of ferroptosis in male reproductive diseases[J]. Cell Death Discov20239(1): 358.

[20]

焦丹丽, 马秉哲, 赵 琛, . 铁死亡在睾丸生精功能障碍中的机制研究进展[J]. 中华男科学杂志202228(11): 1044-1048.

[21]

LIU YCAO X HHE Cet al. Effects of ferroptosis on male reproduction[J]. Int J Mol Sci202223(13): 7139.

[22]

ZHANG WLIU YLIAO Yet al. GPX4, ferroptosis, and diseases[J]. Biomed Pharmacother2024174: 116512.

[23]

IMAI HHAKKAKU NIWAMOTO Ret al. Depletion of selenoprotein GPx4 in spermatocytes causes male infertility in mice[J]. J Biol Chem2009284(47): 32522-32532.

[24]

CHEN YMA QZHANG Jet al. Endogenous iron(Ⅱ) self-enriched fenton nanocatalyst via FTH1 activity inhibition and iron(Ⅲ) reduction for amplified cancer ferroptosis therapy[J]. Mol Pharm202522(3): 1568-1583.

[25]

ZHOU S MSHI YLI J Yet al. Bisphenol F induces spermatogenic cell ferroptosis via FTO-mediated m6A regulation of FTH1[J]. Free Radic Biol Med2025229: 364-373.

[26]

TIAN YLU JHAO X Qet al. FTH1 inhibits ferroptosis through ferritinophagy in the 6-OHDA model of parkinson’s disease[J]. Neurotherapeutics202017(4): 1796-1812.

[27]

TANG Z MJU Y HDAI X Cet al. HO-1-mediated ferroptosis as a target for protection against retinal pigment epithelium degeneration[J]. Redox Biol202143: 101971.

[28]

CARBONE MMATHIEU BVANDENSANDE Yet al. Impact of exposure to pyraclostrobin and to a pyraclostrobin/boscalid mixture on the mitochondrial function of human hepatocytes[J]. Molecules202328(20): 7013.

[29]

CHANG H CWU R XSHANG Met al. Reduction in mitochondrial iron alleviates cardiac damage during injury[J]. EMBO Mol Med20168(3): 247-267.

[30]

AHOLA SLANGER T. Ferroptosis in mitochondrial cardiomyopathy[J]. Trends Cell Biol202434(2): 150-160.

基金资助

国家自然科学基金青年基金项目(81402655)

重庆市科技局自然科学基金面上项目(cstc2019jcyj-msxmX0427)

AI Summary AI Mindmap
PDF (625KB)

0

访问

0

被引

详细

导航
相关文章

AI思维导图

/