胃癌在全球范围内的发病率和死亡率均居高位,分别排名第5和第3
[1]。而在中国,胃癌的发病率和死亡率均高居第3,并呈逐年上升趋势
[2]。尽管目前胃癌的诊疗技术不断进步,但传统诊疗技术灵敏度和特异度仍然较低,难以做到对胃癌的早期发现、早期诊断和早期治疗,胃癌患者的长期生存率并未显著提高
[3, 4]。因此,深入研究胃癌相关分子机制,寻找具有更高灵敏度和特异性的生物标记物具有重要意义。Abelson相互作用因子(ABI)是Abelson非受体酪氨酸激酶(c-ABL)的作用底物
[5],其包括ABI1、ABI2和ABI3三种类型
[6]。既往研究显示,ABI在肌动蛋白细胞骨架的动态重组中发挥重要调控作用,其可调节细胞的运动和迁移
[5, 7-12]。Jensen等
[13]研究发现,在前列腺癌中ABI2表达升高并与癌细胞的运动和侵袭能力增强相关。此外,既往研究显示,ABI2在肝细胞癌中高表达并与癌细胞的增殖、耐药能力提高和不良预后密切相关
[14]。然而关于ABI2在胃癌中的表达情况及其对胃癌患者预后的影响未见报道。基于此,本研究尝试探讨ABI2在胃癌进展和预后中的作用,并分析其可能的作用机制。
1 资料和方法
1.1 临床资料
选取2016年1月~2018年10月在本院接受胃癌根治术治疗的患者,共计120例。所选取患者均为原发性胃癌,且术前未接受过放疗、化疗和免疫治疗,病例资料完整。收集患者临床病例信息;通过电话随访了解患者术后5年的生存情况,随访截至2023年10月;从本院病理科获取患者的病理组织蜡块。本研究通过蚌埠医科大学第一附属医院伦理委员会审查(伦科批字[2023]KY028号)。
1.2 材料与试剂
人胃癌细胞系MGC-803(国家实验资源共享平台);胎牛血清(FBS)和RPMI 1640培养基(Gibco);一抗ABI2、Wnt2和β-catenin(武汉三鹰);一抗Vimentin、N-cadherin、E-cadherin(CST),一抗β-actin(Abcam);二抗HRP 标记山羊抗兔/鼠IgG聚合物(中杉金桥)。ABI2慢病毒工具(上海吉凯基因);CCK-8试剂盒(北京索莱宝科技);基质胶和Transwell小室(Corning);裸鼠从江苏集萃药康生物科技股份有限公司购买(SCXK苏2018-0008)。
1.3 检测方法
1.3.1 生物信息学分析
通过TIMER2.0数据库分析ABI2在泛癌中的表达情况。通过GEPIA数据库查询分析胃癌组织与癌旁非肿瘤组织中ABI2表达水平的差异情况。Kaplan-Meier Plotter数据库分析评估胃癌组织中ABI2表达水平与患者生存期之间的关联。通过cBioPortal数据库获取ABI2在胃癌组织中具有相关性的基因,并于DAVID数据库平台进行KEGG和GO富集分析,以预测ABI2在细胞或生物系统中的功能调控和参与的生物学过程。
1.3.2 免疫组织化学检测胃癌和癌旁组织中ABI2表达水平
将收集的120例胃癌及癌旁组织蜡块制备成切片,脱蜡水化后进行抗原修复,3% H2O2孵育去除内源性过氧化物酶活性,随后进行血清封闭、一抗ABI2(1∶200)孵育过夜、加二抗(HRP 标记山羊抗兔IgG聚合物,1∶1)及DAB显色、苏木素复染细胞核,最后封片并拍照。使用ImageJ软件分析计算ABI2相对积分光密度(IOD)值。
1.3.3 细胞转染技术调控胃癌细胞ABI2表达
用完全培养基制备MGC-803细胞悬液,将细胞分为ABI2上调组(LV-ABI2)、ABI2下调组(Si-ABI2)和空白对照组(Control)分别接种于6孔板中,待细胞生长至80%左右,加入ABI2过表达载体和ABI2的特异性干扰载体(siRNA:GCGAGAACAACTACATACAGTCA),轻柔混匀,转染6 h后更换新鲜完全培养基,培养48 h后使用嘌呤霉素筛选出ABI2稳定表达的细胞株用于后续实验。
1.3.4 蛋白质免疫印迹法验证胃癌细胞ABI2调控效果
将转染成功的MGC-803细胞使用RIPA裂解液裂解30 min,并从中提取总蛋白,使用BCA法测定蛋白浓度,随后将所得蛋白变性,进行SDS-PAGE电泳、湿法转膜、封闭,加入一抗ABI2(1∶1000)和β-actin(1∶1000)4 ℃孵育过夜,再经TBST洗膜、二抗(HRP 标记山羊抗兔/鼠IgG聚合物,1∶3000)孵育、显影剂显影,最后上机拍摄并使用ImageJ软件对结果进行分析。
1.3.5 CCK-8法测定ABI2对胃癌细胞增殖的影响
取上述3组中生长良好的MGC-803细胞,消化后按适当比例重悬,吸取100 μL分别接种于96孔板中(1×103/孔),于5% CO2、37 ℃环境中培养,分别在第1、2、3、4、5天取出,选取目的孔室加入CCK8溶液(10 μL/孔),继续孵育2 h后取出孔板,使用酶联免疫检测仪,测定目的孔室细胞在450 nm波长处的吸光度值。
1.3.6 细胞划痕迁移实验和Transwell实验检测ABI2对胃癌细胞迁移和侵袭能力的影响
细胞划痕迁移实验:将MGC-803细胞于RPMI 1640培养基中培养至80%左右的密度,使用无菌枪头尖端在培养皿中的细胞单层上划出均匀的直线,随后用PBS冲洗,去除游离细胞和细胞碎片,加入新鲜培养液进行培养,分别在划线后0 h和24 h选取同一视野拍照记录。
Transwell侵袭实验:将50 μL基质胶铺在Transwell小室上层,使用无血清培养基重悬各组MGC-803细胞(已提前饥饿处理12 h),将细胞浓度稀释为1×105 /mL,取200 μL滴加到上室中,取600 μL含10%FBS的RPMI 1640完全培养基加入下室,于细胞培养箱中培养48 h,取出小室,PBS淋洗,再经多聚甲醛(4%)固定和结晶紫(0.2%)染色处理,于显微镜下观察并拍照,计算侵袭细胞数量。Transwell迁移实验除不加基质胶外,其他同侵袭实验。
1.3.7 蛋白质免疫印迹法检测胃癌细胞上皮间充质转化相关蛋白及Wnt通路蛋白表达水平
一抗为:Vimentin,N-cadherin,E-cadherin,Wnt2,β-catenin和β-actin,所有抗体稀释比例为1∶1000,实验操作同1.3.4。
1.3.8 构建裸鼠移植瘤模型
选取BALB/c-Nude裸鼠(6~8周龄、雌性、体质量20~22 g),于我校动物房环境适应1周后,随机分成3组:ABI2上调组(LV-ABI2)、ABI2下调组(Si-ABI2)和空白对照组(Control),3只/组。选取上述3组生长良好的MGC-803细胞消化重悬(1×108/mL),各取100 μL细胞重悬液接种于对应实验组裸鼠皮下,继续饲养裸鼠,于接种后第5、10、15、20、25天使用游标卡尺测量肿瘤长径(L)和短径(W),成瘤体积(V)按照公式V=(L×W2)/2计算,25 d后对裸鼠安乐死,取出瘤体,并对瘤体进行下一步处理。
1.3.9 蛋白质免疫印迹法检测胃癌瘤体组织上皮间充质转化相关蛋白及Wnt通路蛋白表达水平
将移植瘤组织进行破碎匀浆,使用RIPA裂解液于冰上裂解提取蛋白。其余步骤和抗体同1.3.7。
1.4 统计学方法
采用SPSS26.0和GraphPad Prism 9软件进行相应统计学处理和绘图。使用χ 2 检验、t检验和单因素方差分析评估组间差异。通过Spearman检验进行相关性分析,运用K-M生存曲线分析ABI2表达水平与患者术后5年生存率的关系,使用Cox回归模型分析对预后产生影响的危险因子。当P<0.05时,认为差异具有统计学意义。
2 结果
2.1 ABI2在胃癌组织中的表达水平升高
通过TIMER2.0数据库分析显示,相比于正常组织,ABI2在包括胃癌在内的多种癌组织中高表达(
图1A,
P<0.01)。GEPIA数据库也表明,ABI2在胃癌组织中表达水平升高(
图1B,
P<0.05)。使用免疫组化对本院120例胃癌患者病理组织进行IOD值检测,发现胃癌组织中的ABI2表达水平显著高于癌旁非肿瘤组织(
图1C、D,
P<0.05)。
2.2 胃癌组织中ABI2表达水平与疾病恶性进展相关
胃癌组织中ABI2表达水平与外周血CEA(
P=0.017)和CA19-9水平(
P<0.001)、病理分级(
P=0.003)、T分期(
P=0.006)和N分期(
P=0.028)相关(
表1)。并且CEA≥5 μg/L、CA19-9≥37 kU/L、G3-G4期、T3-T4期和N2-N3期的患者在ABI2高表达组中的比例更高。随后对以上指标进行相关性分析发现,ABI2的表达水平与患者外周血CEA(
r=0.5528,
P<0.0001)和CA19-9(
r=0.5944,
P<0.0001)的水平呈正相关(
图2)。
2.3 胃癌组织中ABI2表达水平影响胃癌患者预后
通过KM Plotter数据库(
n=631)分析发现:胃癌组织中ABI2高表达患者的总体生存期明显低于低表达患者(
图3A,
P<0.0001)。此外,对本院120例胃癌患者术后5年生存率进行分析发现,与ABI2低表达胃癌患者相比,高表达患者的术后5年生存率明显更低(
图3B,
P<0.0001)。
2.4 胃癌组织中ABI2表达水平是胃癌患者的独立预后因素
对本院120例患者生存数据进行Cox单因素和多因素分析发现,ABI2表达水平、病理分级、CEA、CA19-9、T分期和N分期为影响胃癌患者5年生存率的独立预后因素(
图4)。
2.5 ABI2在胃癌中的作用可能与Wnt通路相关
KEGG和GO富集分析发现,ABI2在胃癌中的调控作用可能与Wnt通路相关(
图5)。
2.6 ABI2在体外实验中促进胃癌细胞增殖、迁移、侵袭和上皮间充质转化
通过慢病毒转染构建ABI2干扰及过表达模型,免疫印迹结果表明上调组(LV-ABI2)中胃癌细胞的ABI2基因表达水平明显升高,下调组(Si-ABI2)中的ABI2基因表达水平明显下降(
图6A、B,
P<0.05)。CCK8实验结果显示,ABI2上调组胃癌细胞的增殖能力显著高于对照组,而ABI2下调组的胃癌细胞增殖能力显著低于对照组(
图6C、D,
P<0.05)。划痕和Transwell实验显示,相较于对照组,ABI2上调组的胃癌细胞表现出更强的迁移和侵袭能力,而ABI2下调组的迁移和侵袭能力则下降(
图6G~L,
P<0.05)。免疫印迹结果表明,ABI2上调组胃癌细胞的Vimentin,N-cadherin蛋白表达升高,E-cadherin蛋白表达水平下降,而ABI2下调组的蛋白表达情况与上调组相反(
图6E、F,
P<0.05)。
2.7 ABI2在体内实验中促进胃癌细胞增殖和上皮间充质转化
裸鼠皮下成瘤结果表明,ABI2上调组的肿瘤体积显著高于对照组,ABI2下调组的肿瘤体积显著低于对照组(
图7A~C,
P<0.05)。同时,免疫印迹结果表明,ABI2上调组胃癌瘤体组织的Vimentin,N-cadherin蛋白表达升高,E-cadherin蛋白表达水平下降,而ABI2下调组的蛋白表达情况与上调组相反(
图7D、E,
P<0.05)。
2.8 ABI2对胃癌细胞恶性生物学行为的影响可能与Wnt通路相关
体内外实验的免疫印迹结果显示,Wnt信号通路关键信号分子Wnt2和β-catenin在ABI2上调组中的表达水平显著升高,而在ABI2下调组中则显著降低(
图8,
P<0.05)。
3 讨论
胃癌是一种高发病率和高死亡率的恶性肿瘤
[1]。尽管其发病率较高,但由于早期胃癌病程隐匿,缺乏鉴别指征,大多数患者在明确诊断时已发展到中晚期,从而预后不佳
[15]。因此,寻找和确定新的分子靶点对于胃癌的诊断和预后至关重要。ABI2是一种SH3结构域结合蛋白
[16],其可通过SH3结构域与ABL1和ABL2相互作用来影响细胞信号的传导
[6, 17],进而参与调节细胞增殖、凋亡和细胞骨架动力学等过程
[5-7, 9, 18]。既往报道显示,ABI2在推动细胞运动和形态变化
[7, 11, 13],以及细胞迁移和细胞黏附过程中也发挥重要作用
[10-12, 14, 19]。并且已有文献报道证实ABI2在前列腺癌和肝癌中的表达异常增高,且影响肿瘤细胞的迁移和侵袭能力
[13],提示其可能成为胃癌诊断和评估预后的新分子靶点
[13, 14]。
TIMER2.0、GEPIA数据库分析显示,相较于癌旁组织,胃癌组织中ABI2基因处于高表达水平,且KM Plotter数据库的分析结果表明ABI2高表达与患者的不良生存结果相关。此外,本院120例胃癌患者病理组织免疫组化结果显示胃癌组织中的ABI2表达水平显著高于癌旁非肿瘤组织。随后我们对本院胃癌患者临床数据与ABI2表达水平之间的关系进行了分析,发现胃癌组织中ABI2表达水平与CEA水平、CA19-9水平、病理分级、T分期和N分期相关,并且ABI2表达水平与外周血CEA和CA19-9水平表现为正相关。进一步对本院120例胃癌患者的术后生存情况进行分析发现,胃癌组织中ABI2高表达的患者术后5年生存率明显低于低表达组,且Cox单因素和多因素分析表明ABI2表达水平是胃癌患者的独立预后因素。以上数据表明,ABI2在胃癌细胞中表现为高表达,并参与了胃癌的恶性进展,影响患者预后。然而,ABI2在胃癌中的作用途径和机制尚不明确。
通过KEGG和GO富集分析,我们发现ABI2在胃癌中的作用可能与Wnt信号通路有关,GO富集分析结果显示ABI2与胃癌细胞内活动纤毛和Wnt蛋白结合有相关性。既往研究显示,Wnt信号通路参与基因表达、细胞行为、细胞粘附和细胞极性的控制
[20],对于组织再生和细胞分化等过程起着关键作用
[21-26]。该通路以Wnt蛋白为信号分子,通过细胞表面受体和细胞内信号转导分子传递信号
[21, 22, 24, 25, 27]。有研究发现,Wnt信号通路在结肠癌中常常被过度激活,使β-catenin降解减缓并在核周积累,随后转运入细胞核并与LEF/TCF转录因子家族相互作用,促进下游多个癌基因的表达,导致结肠癌的恶性转化和复发
[22, 28-34]。此外,有文献报道Wnt信号通路过度激活可以诱导肿瘤细胞表现出干细胞样特征,使其具有自我更新、增殖和多向分化能力
[21, 24, 25]。这种干细胞特征的表达有助于肿瘤的生成和转移
[35]。以上研究成果提示ABI2可能通过调控胃癌细胞的Wnt信号通路,进而增强胃癌细胞的增殖、迁移和侵袭能力。为了验证这种假设,我们采用慢病毒转染构建ABI2低表达和高表达胃癌细胞系,并构建裸鼠移植瘤模型,进行体内外实验。体外实验的CCK8结果显示,上调ABI2表达水平可以促进胃癌细胞增殖,同时划痕实验和Transwell实验结果表明,ABI2上调的胃癌细胞具有更强的迁移和侵袭能力。裸鼠皮下成瘤的结果也表明,上调ABI2可以增强胃癌细胞的增殖能力。在对体内外实验标本进行免疫印迹检测显示,上调ABI2可以促进胃癌细胞的上皮间充质转化进程以及促进Wnt信号通路关键蛋白Wnt2和β-catenin的表达
[36]。因此,ABI2高表达可以促进胃癌细胞的增殖、迁移和侵袭,且其作用机制可能与调控Wnt信号通路有关。
本研究发现ABI2在胃癌组织中处于高表达水平,并证实ABI2高表达与胃癌进展及患者不良预后相关,为ABI2作为胃癌诊治新的分子靶点提供了重要实验依据。并通过体外研究发现胃癌细胞增殖、迁移和侵袭能力的增强与ABI2调控Wnt信号通路有关,因此有望通过对Wnt信号通路的干预,实现对胃癌更有效的临床诊治。
综上所述,本研究证明ABI2在胃癌组织中高表达,并参与疾病的恶性进展及患者不良预后,其机制可能与调控Wnt信号来影响胃癌细胞增殖、迁移和侵袭有关。