结直肠癌为胃肠道中的常见肿瘤,其病死率为9.3%,仅次于肺癌
[1]。约有20%的结直肠癌患者在诊断时已发生远处转移,且5年生存率低于20%
[2, 3]。其中肝脏是结直肠癌最常见的远处转移部位,肝转移也是导致结直肠癌患者死亡最重要的原因
[4],也是临床治疗的难点和热点。目前关于结直肠癌肝转移的原因尚未明确。
RGL1是一种RAS效应蛋白,属于Ral特异性鸟嘌呤核苷酸交换因子(RalGEF)家族,能通过刺激核苷酸交换激活Ras样GTP酶,调控RAS信号通路下游的细胞行为
[5]。Ras样GTP酶被认为与肿瘤生长
[6, 7]、转移密切相关
[8, 9],是目前研究的热点。然而,目前关于RGL1与肿瘤的研究极少,仅在乳腺癌
[10]、髓母细胞瘤
[11]中报道,且研究聚焦于相关性分析及相关的Ras信号通路。关于RGL1与结直肠癌转移的关系尚未见报道。
肿瘤转移是多因素影响的结果,Rho GTP酶家族被认为与肿瘤转移密切相关
[12]。CDC42与RAC1属于Rho GTP酶家族,通过GTP/GDP循环切换激活状态,调控细胞骨架动态、细胞极性、迁移和胞吞等作用
[13-15]。Rho GTP酶家族的活性受到多种上游调控因子的控制,其中鸟苷酸交换因子(GEFs)是最直接的上游激活者
[16]。关于RalGEF是否能调控Rho GTP酶暂无报道,尚未明确。本研究将重点关注RGL1是否通过CDC42与RAC1来影响肿瘤转移,探究RGL1在结直肠癌转移中的作用和机制,以期为RGL1参与结直肠癌转移的分子机制提供有关证据,为临床治疗提供新的靶点。
1 材料和方法
1.1 材料
1.1.1 细胞
人结直肠正常上皮细胞NCM460和人结直肠癌细胞株HT29、DLD1、RKO、CACO2、HCT116、SW480、SW620、LOVO、HCT15等购自中国科学院上海细胞库。
1.1.2 试剂
RGL1慢病毒过表达系统由上海吉凯基因构建并包装,针对RGL1的小干扰RNAs(siRNAs)由苏州吉玛基因完成,qPCR引物由北京擎科生物科技股份有限公司合成。1640培养基、胎牛血清(Gibco),蛋白提取试剂盒(碧云天生物),FAK、F-actin、Paxillin、RhoGDIa、CDC42、CDC42GTP、RAC1、RAC1GTP、RhoA、RhoAGTP(CST),RGL1抗体(Thermo Fisher Scientific,ABclonal),β-actin抗体、GAPDH、兔二抗(abcam),LipofectaminTMRNAiMAX转染试剂、Trizol裂解液(Thermo Fisher Scientific),逆转录试剂盒、Real-Time PCR试剂盒(Takara),Transwell小室(Corning Incorporated)。
1.1.3 动物
6~8周龄雄性裸鼠,体质量约20 g,由广东省动物中心提供,并饲养于珠江医院实验动物中心。体内实验通过南方医科大学珠江医院医学伦理委员会审批(伦理批号:2022-KY-307-01)。
1.1.4 临床样本
收集珠江医院2020年1月~2022年12月伴有转移的结直肠癌(25例)和不伴转移的结直肠癌(25例)的原发灶肿瘤组织样品。所有样本均由2位以上有经验的病理医师确诊为结直肠癌。
1.2 方法
1.2.1 细胞培养
用含10%胎牛血清和1%抗青霉素抗链霉素的1640培养基培养结直肠癌细胞株,并置于含有5%CO2、37 ℃恒温培养箱内培养,待细胞密度达到80%,进行常规传代和后续实验。1~2 d进行一次换液。
1.2.2 RGL1过表达及敲低RGL1的结直肠癌细胞株构建
共构建4株稳定表达细胞株,分别为HCT116 veh与HCT116 RGL1+、SW480 shNC与SW480 shRGL1。合成RGL1过表达慢病毒及shRGL1慢病毒(上海吉凯公司),按照病毒转染说明书进行转染:将细胞以1×105/孔铺于24孔板内,使细胞在慢病毒转染时数量达到2×105/孔。待细胞达到对数生长期后,含6 μg/mL polybrene的新鲜培养基替换原有培养基,并加入适当病毒液,孵育24 h后用新鲜的完全培养基替换含有病毒液的培养基。为筛选稳定转染RGL1的细胞克隆,在病毒转染的第3天开始加入嘌呤霉素,持续嘌呤霉素暴露2周后,收集部分细胞,提取总蛋白质,利用Western blotting法检测RGL1的过表达情况。
1.2.3 Western blotting
按照蛋白试剂盒说明书操作提取蛋白,BCA法测定蛋白浓度,加入5×loading buffer,95 ℃金属浴变性10 min,-80 ℃保存。取20 μg蛋白,行10%SDS-PAGE电泳。电泳完毕后,将PAGE胶上的蛋白移至PVDF膜上。4%BSA室温封闭1 h。RGL1(1∶1000)、β-actin(1∶5000)、RhoGDIa(1∶1000)、CDC42(1∶1000)、RAC1(1∶1000)、RhoA(1∶1000)、GAPDH(1∶5000)一抗4 ℃过夜孵育。次日,洗膜后加入HRP标记的二抗(1∶5000),显影采用ECL化学发光试剂盒。
1.2.4 qPCR
采用Trizol法提取总RNA,使用分光光度计(Nanodrop,Thermo)进行RNA浓度测定及质量评估。取1 μg总RNA使用逆转录试剂盒逆转录为cDNA,使用SYBR Green Master Mix进行qPCR检测。引物由北京擎科生物科技股份有限公司合成。RGL1的上游引物为GCAAGATGGCTAGGGGTTGAA,下游引物为TGCCAGCTTTTATGGTCCTGA;GAPDH的上游引物为:ATTCCATGGCACCGTCAAGGC-TGA;下游引物为:TTCTCCATGGTGGTGAAGAC-GCCA。
1.2.5 HE染色
4%多聚甲醛固定组织样品,于脱水机内进行梯度酒精脱水、二甲苯透明、浸腊,最后包埋。采用Leica RM2235切片机将组织切成2.5 μm厚的薄片,60 ℃烘箱烘烤3 h。经二甲苯及梯度酒精脱蜡至水,苏木素-伊红染色,梯度酒精至二甲苯透明,中性树脂封片。显微镜下质检,扫片机扫片保存。随机选取5个400倍视野进行图片采集。
1.2.6 免疫组织化学
前期步骤同HE染色,经二甲苯及梯度酒精脱蜡至水后,高压锅抗原修复,阻断内源性过氧化物酶,室温封闭。RGL1(1∶100)一抗4 ℃过夜孵育,二抗(1∶2000)室温孵育1 h,DAB显色,苏木素复染,1%盐酸酒精分化,梯度酒精至二甲苯透明,中性树脂封片。显微镜下质检,扫片机扫片保存。随机选取5个400倍视野进行图片采集。
1.2.7 Transwell迁移实验
先在下室加入600 μL完全培养基。细胞消化离心后,用完全培养基重悬,吸取100 μL 3×104细胞悬液加入上室内。用镊子轻移,使下室培养基刚好没过上室底部。将Transwell孔板放于37 ℃培养箱内培养24 h。弃去培养基,用PBS清洗小室2遍,4%多聚甲醛固定30 min。弃去多聚甲醛,稍微风干小室,1%结晶紫染色10 min。用PBS清洗数遍直至背景干净,用棉签轻轻擦拭,自然晾干。使用显微镜拍摄小室底部迁移细胞,直径上取4个视野。使用Image J软件进行统计学分析。
1.2.8 Transwell侵袭实验
实验前从-20 ℃冰箱中取出Matrigel基质胶,放于4 ℃冰箱过夜融化固态Matrigel基质胶为液态。使用提前预冷的实验器材,在低温条件下用无血清培养基按照1∶8的比例稀释Matrigel基质胶。在Transwell小室中加入60 μL稀释后的基质胶,在37 ℃放置1.5 h使基质胶凝固成薄胶。下室加入600 μL完全培养基,上室加入100 μL 3×104个细胞悬液。用镊子轻移,使下室培养基刚好没过上室底部。将Transwell孔板放于37 ℃培养箱内培养48 h。后续步骤同Transwell迁移实验。
1.2.9 动物实验(盲肠原位种植肝转移模型)
使用6~8周龄裸鼠,体质量约20 g,随机分为shNC组、shRGL1组。1%戊巴比妥钠麻醉小鼠(8 μL/g剂量腹腔注射)。于裸鼠左下腹竖直切开1~2 cm的腹膜,于盲肠浆膜层注射1×106不同分组的肿瘤细胞,缝合,待小鼠复苏。8周后收集原位肿瘤和肝脏组织进行后续实验。
1.2.10 细胞-基质黏附检测实验
用PBS配制20 μg/mL纤连蛋白胶(Fn胶),按500 μL/孔加入24孔培养板内。将培养板放置4 ℃过夜。用PBS洗3次后,再用1% BSA 在37 ℃封闭1 h。用RPMI1640培养基洗2遍,调整细胞浓度为1×105/mL,按照500 μL/孔加入经包被的细胞培养板内。低速离心培养板2 min,使细胞沉降于培养板底部,在CO2培养箱中静止放置30 min,吸弃未粘附的细胞,用PBS洗3次。4%多聚甲醛室温固定15 min,PBS洗3次。使用显微镜拍摄,直径上取4个视野。使用Image J软件进行统计学分析。
1.2.11 细胞免疫荧光实验
收集细胞后用PBS冲洗细胞3次,4%甲醛固定细胞10 min,PBS冲洗细胞3次。1% Triton X-100于室温渗透细胞20 min,PBS冲洗细胞3次。用10%正常山羊血清于室温阻断1 h,一抗4 ℃孵育过夜,荧光二抗室温孵育1 h,用PBS冲洗细胞3次,滴加DAPI于共聚焦显微镜下观察。
1.2.12 免疫共沉淀实验
用IP特异性RIPA缓冲液(Beyotime)提取蛋白质。将同一种的一抗或IgG(1 μg抗体∶1 mg细胞蛋白)加入蛋白悬液中,4 ℃孵育过夜。次日,取20 μL蛋白A/G磁珠(HY-K0202MCEUSA)结合120 min,用RIPA缓冲液洗涤3次,加入2×上样缓冲液变性。最后进行SDS-PAGE Western blotting。
1.3 统计学分析
使用SPSS 26.0统计软件及Graphpad Prism10进行数据分析及处理。计量资料符合正态分布以均数±标准差表示,组间比较采用t检验或单因素方差分析。计数资料用频数表示,组间比较采用卡方检验。以P<0.05为差异有统计学意义。所有实验均独立重复3次。
2 结果
2.1 RGL1在伴有转移的结直肠癌原发灶中高表达
结直肠癌GEO数据库(GSE39582和GSE87211)分析显示,伴有转移的结直肠癌原发灶中RGL1表达水平上调,差异具有统计学意义(
P<0.05,
图1A)。qPCR实验显示,RGL1在伴有转移的结直肠组织中的表达更高(
P<0.05,
图1B);免疫组化实验显示,在蛋白水平伴有转移的结直肠癌的RGL1表达较高,差异具有统计学意义(
P<0.05,
图1C)。
2.2 构建RGL1过表达细胞株和敲低细胞株
RGL1在正常肠上皮细胞NCM460和9种结直肠癌细胞中的蛋白表达量(
图2A),选择原位细胞株HCT116细胞构建过表达稳转株。与对照组(veh)相比,过表达RGL1组(RGL1+)表现出良好的过表达效果(
图2B);选择SW480细胞构建基因敲低,与shNC相比,敲低RGL1组(shRGL1)表现出敲低效果(
图2C)。
2.3 RGL1高表达促进结直肠癌的转移与侵袭
Transwell实验结果显示,RGL1过表达促进肿瘤细胞转移,敲低RGL1抑制肿瘤细胞转移,差异具有统计学意义(
P<0.05,
图3A);RGL1过表达促进肿瘤细胞侵袭,敲低RGL1肿瘤细胞侵袭能力减弱,差异具有统计学意义(
P<0.05,
图3B)。为体内验证RGL1与结直肠癌转移的关系,构建裸鼠盲肠原位种植肝转移模型,实验结果显示,相较于对照组,敲低RGL1原位肿瘤更小(
图3C),裸鼠生存期延长,差异具有统计学意义(
P<0.05,
图3D),且肝转移的发生率下降(
图3E)。
2.4 RGL1高表达促进运动型黏着斑组装
结直肠癌GEO数据库富集分析显示,RGL1高表达促进结直肠癌多种信号通路的激活,其中GSE39582、GSE83889、GSE87211芯片数据集提示RGL1高表达促进结直肠癌细胞黏着斑相关基因的富集(
图4A)。细胞-基质黏附检测结果显示,过表达RGL1可以加速结直肠癌细胞黏着斑的组装(
P<0.05,
图4B),敲低RGL1细胞黏着斑的组装减缓(
P<0.05,
图4C)。免疫荧光实验显示,过表达RGL1的细胞中局部黏着斑激酶(FAK)以及桩蛋白呈现分散的“星点状”信号,随机分布于基底膜中,RGL1促进了运动型黏着斑的形成(
图4D);敲低RGL1的细胞中FAK和桩蛋白分布呈现规则的斑块状或纤维状聚集,信号强度高且均匀,此时细胞主要存在非运动型黏着斑(
图4E)。
2.5 RGL1可以激活CDC42/RAC1复合体
免疫共沉淀实验检测Rho GTP酶家族中的3个关键蛋白,结果显示过表达RGL1或敲低RGL1不影响这些信号蛋白的表达水平(
图5A),也不影响RhoA在激活态与RGL1的结合(
图5B),但提高了CDC42、RAC1在激活状态与RGL1的结合(
图5C、D)。
3 讨论
本研究通过分析GEO数据库和临床标本初步证实了RGL1在伴有转移的结直肠癌原发灶中高表达,表明RGL1在结直肠癌中发挥促肿瘤转移的功能。进一步的通过体内、体外功能实验证明了RGL1能促进结直肠癌的侵袭和转移;对RGL1促进肿瘤转移的机制探讨显示,RGL1可以激活CDC42/RAC1复合体,重排结直肠癌细胞中的FAK和桩蛋白分布,加速运动型黏着斑组装,从而增强肿瘤的迁移和侵袭能力,导致结直肠癌发生转移。
本研究首次发现RGL1与结直肠癌转移的关系。以往关于RGL1的研究多集中于淋巴细胞炎症相关途径的新靶点,如在动脉粥样硬化中C0X2缺失会降低RGL1的表达
[17]、系统性红斑狼疮的发病机制中RGL1是ac
4C的潜在修饰靶点
[18]、RGL1可以作为接受肝移植患者的乙型肝炎感染预后的标志物
[19]等。目前关于RGL1与肿瘤的研究极少,且其促癌或抑癌作用在不同癌肿存在差异。比如,在乳腺癌中发现激活Ras-RGL1/2-RalB-exocyst-WRC通路可促进乳腺癌转移
[10];但是在Group3型髓母细胞瘤中RGL1下调与转移相关,原因未知
[11]。RGL1在肿瘤发生发展中的作用和相关机制目前尚不明确。与RGL1同家族的RGL2曾被报道能促胰腺癌生长和侵袭
[20],RGL2与RGL3能促进非小细胞肺癌的锚定非依赖性生长
[21]。所以我们前期猜测RGL1也有促肿瘤转移的可能性,而结直肠癌在我国发病率高,远处转移是其最晚期的表现,临床标准治疗方案为根治性手术切除和化疗,但是手术仅适用于10%~20%的患者,且5年生存率仍然很低
[22]。寻找并确定RGL1作为新的分子靶点对于结直肠癌转移的防治非常必要。
Rho GTP酶家族在肿瘤转移中发挥重要作用,其中CDC42和RAC已被证实是多种肿瘤转移的驱动因素,如肝癌
[23]、肺癌
[24]、乳腺癌
[25]、结直肠癌
[24] 等。Cdc42调控丝状伪足形成,探测微环境并引导定向迁移
[27];Rac1诱导板状伪足形成,增强细胞前沿推进能力
[28],这些均与黏着斑的组装密切相关。CDC42和RAC1的上游调控网络很复杂,目前研究主要认为核心是通过GEFs响应生长因子
[29]、整合素
[30]、GPCR
[31]等信号,协同GTP酶激活蛋白(GAPs)
[32]和鸟苷酸解离抑制因子(GDIs)
[[33]维持动态平衡。RalGEF属于GEF家族,它是一类特异性激活Ral GTP(RalA/RalB)的鸟苷酸交换因子
[34]。暂无研究表明RalGEF家族可以影响Rho GTP家族发挥作用。本研究创新性地提出RGL1可以激活CDC42/RAC1复合体促进黏着斑组装从而促进肿瘤转移,这是首次从Rho GTP酶的角度解释RGL1促肿瘤转移的机制,但本研究没有深入探索RGL1激活CDC42/RAC1复合体的具体机制,猜测可能是Ral通路和Rho通路下游分子的交叉调控的结果,有待后续进一步实验验证。
综上所述,本研究证实了RGL1是结直肠癌转移中潜在防治分子靶点,并提出RGL1新的作用机制,为进一步临床上治疗结直肠癌转移提供了研究基础和新思路。