非酒精性脂肪性肝病(non‑alcoholic fatty liver disease,NAFLD),即在排除了过度饮酒及其他确切的肝脏损害因素之后,肝细胞呈现出弥漫性、大泡性、脂肪变性的一种临床症状
[1‑3],是目前全球范围内最常见的慢性肝病,其具体发病机制较为复杂,其中“二次打击”学说被广泛接受
[4,5]。目前,针对NAFLD主要的治疗手段聚焦于饮食管控与运动强化两方面;在药物治疗领域,胰岛素增敏剂和他汀类药物是较为常用的药物类型
[6‑8]。然而,这些药物在使用过程中存在一定的局限性,不能达到理想的治疗效果。因此,寻找新型的低毒高效抗NAFLD药物具有迫切的现实意义。
白头翁是毛莨科植物白头翁
Pulsatilla chinensis (Bge.) Regel的干燥根,具有清热解毒、凉血止痢的功效
[9,10]。白头翁皂苷B4(anemoside B4,AB4)是从白头翁中提取的主要活性成分,具有抗炎、抗肿瘤、免疫调节和抗血管生成等作用
[11‑14]。相关研究显示,AB4能促使脓毒症大鼠血清里的天冬氨酸氨基转移酶(aspartate aminotransferase, AST)及丙氨酸氨基转移酶(alanine aminotransferase, ALT)水平明显降低,还能大幅降低肝脏过氧化物酶的活性,进而改善脓毒症大鼠的肝脏状态
[15]。AB4对于高脂饮食所引发的
ApoE‑/‑ 基因敲除小鼠的动脉粥样硬化同样具有疗效。深入探究其治疗作用背后的内在机理,发现其与降低脂质在机体组织中的浸润程度,以及缓解炎症反应的程度有着密切联系
[16]。此外,AB4对急性肝损伤有一定的治疗效果
[17],但其具体机制尚不明确。本研究采用高脂饮食诱导的方式构建NAFLD小鼠模型,其核心目标在于深入探究AB4针对NAFLD的治疗效能以及潜在的作用机制,以期为后续新型抗NAFLD药物的研发提供坚实的理论基础,从而为NAFLD的临床治疗提供更多的药物选择和治疗策略。
1 材料与方法
1.1 材料与仪器
雄性C57BL/6J小鼠购自江苏华创信诺公司[SCXK(苏)2020‑0009],于江苏医药职业学院SPF实验动物房进行饲养,实验期间允许小鼠自由饮水和进食。本实验获得江苏医药职业学院动物伦理委员会批准(编号:2020011)。
AB4(上海爱必信生物科技有限公司);H&E染色液(Solarbio 公司);总RNA提取试剂(Trizol Thermofisher公司);RNA逆转录合成cDNA试剂盒(Thermofisher公司);PCR试剂盒(Roche公司);PCR引物(博士德生物工程有限公司);白细胞介素‑6(interleukin‑6,IL‑6)抗体(CST公司);腺苷酸活化蛋白激酶(adenosine 5'‑monophosphate‑activated protein kinase,AMPK) Alpha Monoclonal Antibody、乙酰辅酶A羧化酶(acetyl CoA carboxylase,ACC) Monoclonal Antibody、肉碱棕榈酰转移酶(carnitine palmitoyltransferase 1A,CPT1A) Monoclonal Antibody(武汉三鹰生物有限公司)。
酶标仪(美国Bio Tek公司);脱色摇床(其林贝尔仪器制造有限公司);涡旋仪(上海泱浩仪器有限公司)。
1.2 实验动物分组与干预
实验小鼠给予60%高脂饲料喂养建立肥胖模型。24只小鼠适应性喂养1周后,随机分为4组(n=6):Control组、Model组、AB4低剂量组(AB4‑10 mg/kg)和AB4高剂量组(AB4‑20 mg/kg)。实验小鼠给予60%高脂饲料喂养建立肥胖模型,Control小鼠给予10%脂肪供能,通过灌胃给药8周,Control组和Model组给予相同体积的生理盐水。在实验期间,小鼠可自由饮水和进食饲料。
1.3 葡萄糖耐量实验
在禁食12 h后,对各组小鼠进行腹腔注射20%葡萄糖溶液,注射体积按小鼠体质量(g)×10 μL计算,并在30、60、90、120 min测量小鼠的血糖水平。
1.4 胰岛素耐量实验
在禁食2 h后,对各组小鼠进行腹腔注射0.1 U/mL胰岛素溶液,注射体积按小鼠体质量(g)×10 μL计算,并在30、60、90、120 min时测定其血糖水平。
1.5 小鼠称重以及组织样本采集
在实验过程中,每周记录1次小鼠的体质量。连续喂养8周后,眼眶采血后在异氟烷麻醉下处死小鼠,随后收集肝组织。
1.6 组织病理学分析
将固定24 h的肝组织取出进行石蜡包埋,并切成厚度为5 μm的切片,随后对切片进行染色,最后在光学显微镜下观察并拍摄图像。
1.7 血脂相关指标测定
将采集的各组小鼠外周血采用全自动生化分析仪测定总胆固醇(total cholesterol,TC)、三酰甘油(triglycerides,TG)、低密度脂蛋白胆固醇(low‑density lipoprotein cholesterol,LDL‑C)、高密度脂蛋白胆固醇(high‑density lipoprotein cholesterol,HDL‑C)的含量。
1.8 氧化应激水平检测
采用ELISA测定小鼠血清中的超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)、丙二醛(malondialdehyde,MDA)、谷胱甘肽过氧化物酶(glutathione peroxidase,GSH‑Px)水平。按照试剂盒说明书的操作步骤,检测血清中上述指标的具体水平。
1.9 免疫荧光
将肝组织石蜡切片经脱蜡和梯度酒精脱水处理后,用PBS冲洗5 min,重复3次,随后进行免疫荧光染色。首先,在室温下使用3% BSA封闭切片30 min,然后在切片上滴加稀释比例为1∶100的IL‑6抗体,并置于湿盒中,4 ℃下过夜孵育。次日,回收一抗,再用PBS冲洗5 min,重复3次。之后在每张切片上滴加二抗,并在室温下孵育1 h,移去二抗,再用PBS冲洗5 min,重复3次。接着滴加DAPI孵育5 min,用PBS冲洗5 min,重复3次,晾干切片后,使用防荧光淬灭剂进行封片,最后立即在荧光显微镜下观察。
1.10 qRT‑PCR检测肝组织中相关因子转录水平的表达
使用Trizol试剂从肝脏中提取RNA,随后利用逆转录试剂盒将RNA逆转录为cDNA。以
GAPDH作为内参基因,应用2
-△△CT方法计算目标基因的mRNA相对表达量。实验步骤依据试剂盒说明书进行操作,基因引物序列见
表1。
1.11 Western blot检测肝脏组织中相关蛋白水平的表达
使用RIPA裂解液在冰上对肝脏组织进行匀浆,以提取总蛋白。蛋白定量后,取30 μg总蛋白进行SDS‑PAGE电泳,转膜并封闭,然后将一抗在4 ℃摇床上孵育过夜。随后用TBST洗膜,加入二抗在常温下孵育1 h。再用TBST洗膜后,加入ECL显色液对蛋白条带进行显影并拍照。最后,分析条带的灰度值,并以β‑actin作为内参计算各目的条带的相对表达量。
1.12 统计学处理
采用GraphPad Prism 9.0软件进行统计分析。计量资料以表示,对于符合正态分布且方差齐性的检验数据,采用两独立样本均数的t检验比较2组之间的差异,P<0.05为差异具有统计学意义。
2 结果
2.1 AB4对小鼠体质量的影响
C57BL/J小鼠经适应性喂养1周后进行分组。随机分成4组后再按照试验设计分别给予正常或高脂饲料或联合药物后喂养8周。随着喂养时间的延长,各组小鼠的体质量逐渐增加(
图1A)。Model组小鼠的体质量明显高于Control组(
P<0.01);与Model相比,AB4‑10 mg/kg组及AB4‑20 mg/kg组小鼠体质量呈降低趋势,差异具有统计学意义(
P<0.01)(
图1B)。上述结果表明AB4能降低高脂喂养小鼠的体质量。
2.2 AB4对小鼠葡萄糖耐量和胰岛素耐量的影响
腹腔注射葡萄糖溶液后,各组的血糖水平在30 min内达到峰值然后开始下降。此外,在每个时间点Model组小鼠血糖值明显高于Control组(
P<0.01),说明喂养高脂饲料的小鼠糖耐量发生异常;而与Model组小鼠相比,AB4‑10 mg/kg组及AB4‑20 mg/kg组小鼠血糖浓度明显降低,并且曲线下面积也明显低于Model组(
P<0.01),表明AB4能改善喂养高脂饲料小鼠糖耐量异常情况,见
图2A。
腹腔注射胰岛素后,各组的血糖水平在30 min内到达最低然后开始上升。另外,在每个时间点Model组小鼠血糖值明显高于Control组(
P<0.01),说明喂养高脂饲料的小鼠发生胰岛素抵抗现象;而与Model组小鼠相比,AB4‑10 mg/kg组及AB4‑20 mg/kg组小鼠血糖浓度明显降低,并且曲线下面积也明显低于Model组(
P<0.01),表明AB4能提高小鼠胰岛素敏感性,从而改善胰岛素抵抗情况,见
图2B。
2.3 AB4对小鼠血生化指标的影响
分析各组小鼠血清TC、TG、LDL‑C和HDL‑C的水平发现,与Control组相比,Model组小鼠TC、TG和LDL‑C水平明显升高(
P<0.01),而HDL‑C水平明显降低(
P<0.01);与Model相比,在给予20 mg/kg AB4后,小鼠TC、TG和LDL‑C水平明显降低(
P<0.01),而HDL‑C水平明显升高(
P<0.01)。实验结果表明AB4能改善小鼠的血脂水平升高的症状,见
图3A~D。
2.4 AB4对小鼠肝组织形态及脂质累积的影响
H&E染色结果显示Model组小鼠的肝脏受损明显,而在低剂量和高剂量AB4组中,肝损伤有所缓解。油红O染色结果显示Model组小鼠的肝脂肪蓄积较Control组明显增加,而AB4低剂量和高剂量组肝脏脂肪的堆积明显减少。这些结果表明,AB4可以改善高脂饮食小鼠的肝损伤和脂肪堆积,见
图4。
2.5 AB4对小鼠肝组织代谢性炎症的影响
通过免疫荧光检测各组小鼠肝组织中IL‑6表达情况。与Control组相比,Model组肝组织中IL‑6的表达明显升高;AB4处理组中的IL‑6的表达较Model组明显降低。上述实验结果表明AB4能减少高脂喂养小鼠肝脏炎症因子IL‑6的表达,见
图5。
2.6 AB4对小鼠肝脏组织AMPK、ACC、CPT1A的mRNA表达的影响
通过qRT‑PCR分析肝脏组织中
AMPK、
ACC、
CPT1A的表达。与Control组相比,Model组小鼠肝脏中的
AMPK、
ACC、
CPT1A的mRNA相对表达量降低,差异具有统计学意义 (
P<0.01)。与Model组相比,AB4‑20 mg/kg组小鼠肝脏组织中
AMPK、
ACC、
CPT1A的mRNA相对表达量明显升高(
P<0.05),见
图6A~C。
2.7 AB4对小鼠肝脏组织AMPK、ACC、CPT1A蛋白表达的影响
进一步通过Western blot分析肝脏组织中AMPK、ACC、CPT1A蛋白的表达。与Control组相比,Model组小鼠肝脏中的p‑AMPK、p‑ACC、CPT1A蛋白的相对表达量降低,差异具有统计学意义(
P<0.05)。此外,与Model组相比,AB4‑20 mg/kg组小鼠肝脏组织中p‑AMPK、p‑ACC、CPT1A蛋白的相对表达量明显升高(
P<0.05),见
图7A~D。
2.8 AB4对小鼠氧化应激水平的影响
与Control组相比,Model组小鼠血清SOD活性水平及GSH‑Px含量明显降低(
P<0.05),MDA含量明显升高(
P<0.01)。与Model组相比,AB4‑20 mg/kg组小鼠血清中SOD活性水平及GSH‑Px含量明显升高(
P<0.05),且MDA含量明显降低(
P<0.01)。上述实验结果表明AB4可有效改善小鼠氧化应激的水平,见
图8A~C。
3 讨论
NAFLD属于临床常见的慢性肝脏疾病类型,存在向非酒精性脂肪性肝炎转变的可能性。一旦发展为非酒精性脂肪性肝炎,病情便有继续恶化的风险,可能引发肝纤维化、肝硬化甚至肝细胞癌等严重后果,对肝脏健康构成严重威胁
[18,19]。线粒体功能障碍、内质网应激和细胞因子等多种因素共同诱导NAFLD的发生
[20]。研究表明,调控脂质和能量代谢可能成为治疗NAFLD的重要突破口
[21]。课题组前期研究发现,AB4具有明显的降脂作用,能有效减少NAFLD小鼠肝脏脂肪蓄积。然而,其具体作用机制尚不明确。已有研究表明,AMPK在肝脏脂质代谢进程中占据关键地位,当前已成为NAFLD预防与治疗的核心靶点
[22],其在肝脏中能借助调控下游的ACC以及CPT1A通路参与脂肪酸的氧化分解
[23,24]。因此,本研究基于AMPK/ACC/CPT1A信号通路,从氧化应激调控的角度探讨AB4治疗NAFLD的潜在机制。
肝脏是胰岛素发挥作用的重要器官之一,其对血糖的调节依赖于对胰岛素的敏感性。本次实验结果显示,高脂饲料诱导的NAFLD小鼠体内出现胰岛素抵抗,肝脏对胰岛素的敏感性下降,导致肝脏对葡萄糖的摄取和利用减少。通过AB4干预,不仅可以改善高脂饲料喂养小鼠的糖耐量异常情况,还能提高小鼠的胰岛素敏感性,从而缓解胰岛素抵抗。
研究表明,肝细胞中脂质积累异常和脂肪变性是NAFLD进展过程中的主要特征
[25]。本实验采用高脂饲料构建NAFLD小鼠模型,通过H&E染色和油红O染色发现,模型组小鼠的肝脏出现明显的脂肪变性、炎症和气球样变等病理变化。此外,模型组小鼠的TC、TG和LDL‑C水平明显升高,HDL‑C水平明显降低,提示模型组小鼠出现了肝功能损伤、肝脏脂肪蓄积、脂肪变性及脂代谢异常。经AB4干预后,低、高剂量组小鼠的肝脏结构和肝细胞明显恢复,同时肝脏脂肪变性明显改善,TC、TG和LDL‑C水平明显降低,HDL‑C水平明显升高。这表明高脂饲料诱导的NAFLD小鼠在AB4治疗下,病理状况得到明显改善。AB4能有效治疗NAFLD小鼠的肝功能损伤,明显减轻肝脏脂肪蓄积,改善脂代谢异常,从而减缓NAFLD病变的发展。免疫荧光结果也提示AB4能在一定程度上减少NAFLD模型小鼠肝脏炎症因子IL‑6的表达,进一步改善NAFLD的病程发展。
AMPK是调节细胞和整体代谢及治疗多种代谢性疾病的核心
[26]。肝脏AMPK活性受损被认为是肝脂肪变性的重要因素,抑制AMPK可刺激合成代谢途径如脂质合成,并抑制分解代谢途径
[27]。肝脏脂肪酸的主要消耗途径是线粒体β氧化,CPT系统在这一过程中发挥重要作用。在机体的代谢系统中,CPT1扮演着限速酶的关键角色,其主要作用是对游离脂肪酸进行转运工作。CPT1存在A、B、C 3种同工型,其中CPT1A呈现出在肝脏特异性表达的特点
[28]。相关研究发现,上调CPT1A的表达水平后,小鼠的NAFLD状况能得到有效的改善,这为进一步探究NAFLD的治疗策略提供了重要的方向和依据
[29]。激活AMPK能使下游ACC磷酸化并失活,从而促进CPT1A介导的脂肪酸线粒体β氧化,减少TG的合成
[30]。
本实验研究结果显示,NAFLD小鼠肝脏中AMPK、ACC、CPT1A的mRNA和蛋白表达降低,提示在NAFLD情况下,小鼠的AMPK、ACC、CPT1A表达受限。经AB4干预后,小鼠肝脏中AMPK、ACC、CPT1A的mRNA和蛋白表达上调,从而表明AB4可能通过上调AMPK、ACC、CPT1A的表达增强NAFLD小鼠的抗氧化应激水平。
基础研究表明,氧化应激是NAFLD进展过程中的重要危险因素之一
[31]。NAFLD的发生往往与氧化应激现象紧密相连,这种氧化应激状态还会进一步加剧肝脏中脂质的堆积情况
[32]。其中,SOD、MDA、GSH的含量出现异常,是导致氧化系统失去平衡的关键因素。SOD与GSH‑Px作为人体内部具有强大抗氧化效能的活性物质,能有效清除体内的自由基以及超氧化物,从而缓解氧化应激所带来的不良影响。在NAFLD患者中,由于体内氧自由基代谢紊乱,血清中MDA水平升高。MDA是用于衡量机体脂质过氧化程度的关键指标之一;当氧化应激情况出现时,其会推动脂质过氧化物的生成过程,这一过程会使SOD和GSH的水平下降,最终引起肝脏组织出现病理性的改变
[33]。
为进一步探讨AB4通过增强NAFLD小鼠的抗氧化应激水平从而改善小鼠NAFLD,本研究分别检测各组NAFLD小鼠血清中SOD、MDA、GSH的水平,结果显示NAFLD小鼠血清中SOD活性和GSH‑Px含量明显降低,而MDA含量明显升高。经AB4干预后,低、高剂量组小鼠的血清SOD活性和GSH‑Px含量明显升高,MDA含量明显降低。以上研究结果提示AB4干预能调节NAFLD小鼠的抗氧化系统平衡。
综上所述,本实验采用AB4干预高脂饲料诱导的NAFLD模型小鼠,通过检测葡萄糖耐量、胰岛素耐量、TC、TG、LDL‑C、H‑DLC以及氧化应激SOD、MDA、GSH‑Px的表达水平,证实AB4可调节NAFLD小鼠血糖水平、血脂水平,保护肝功能,并改善肝脏脂质沉积,其潜在的作用机制可能是通过激活AMPK介导的ACC/CPT1A的信号通路,调控肝脏脂肪酸代谢和抗氧化应激,达到对NAFLD的治疗效果。本研究发现AB4在NAFLD的治疗中具有潜在价值,为白头翁的开发、利用及推广提供了理论依据。
作者贡献度说明:
蒋鸣:完成实验与指标检测、数据分析、检索文献、撰写论文;田冲冲:设计实验、论文修改、最后校审。
所有作者声明不存在利益冲突关系。