膝骨性关节炎(KOA)是一种常见的退行性关节疾病
[1] ,其主要特征是随着年龄增长导致的关节软骨受损和潜在的骨结构改变。炎症因子在骨关节炎(OA)的病理过程中发挥关键作用。关节滑膜炎症和释放的炎症性细胞因子(如IL-1β、TNF-α)可加速软骨降解并抑制软骨生成
[2, 3]。炎症反应还可能导致关节液变化、增加骨转换和引起关节囊炎
[4],目前抑制炎症反应是KOA治疗的经典方法。
核转录因子κB(NF-κB)作为关键的炎症调控枢纽,在OA的病理进程中发挥重要调控作用。该通路通过调控炎症介质表达、细胞外基质代谢及软骨细胞凋亡等生物学过程,参与OA的发病机制构建
[5,6]。临床研究显示,OA患者关节滑液中NF-κB活性升高,且与其软骨破坏程度呈正相关
[7]。值得注意的是,在肿瘤微环境研究中发现,NF-κB信号通路激活可通过上调基质金属蛋白酶13(MMP13)的表达水平,促进肿瘤细胞的侵袭转移
[8]。鉴于MMP13作为软骨特异性胶原酶,在OA软骨降解过程中具有关键作用,推测NF-κB/MMP13轴可能成为OA治疗的潜在靶点。然而,目前关于NF-κB信号通路调控MMP13表达在KOA中的具体作用机制,以及该调控轴在关节局部微环境中的表达特征,仍需通过体内外实验进一步验证。
中医药治疗KOA历史悠久,其中一种有效成分桃叶珊瑚苷是一种黄酮类化合物,是中药杜仲、车前草、地黄的主要活性成分,具有抗炎和炎症调控的作用
[9,10]。研究表明,桃叶珊瑚苷能抑制炎症相关酶活性,如环氧化酶(COX)、白介素、单核细胞趋化因子-1、肿瘤坏死因子以及C反应蛋白等,并调节炎症相关细胞因子,如肿瘤坏死因子-α(TNF-α)和干扰素-γ(IFN-γ),从而减少细胞损伤和炎症反应
[11-13] 。桃叶珊瑚苷减轻软骨细胞的凋亡并在小鼠模型中有抑制骨关节炎的作用
。研究表明,在IL-β1诱导大鼠关节软骨细胞炎症的模型中,桃叶珊瑚苷能抑制NF-kB信号通路的激活
[14] 。尽管如此,现有桃叶珊瑚苷治疗骨关节炎的分子机制研究仍不完善。本研究旨在探索桃叶珊瑚苷对NF-Kb/MMP13信号轴的调控作用,进而为KOA的治疗提供一种新方法。
1 材料和方法
1.1 材料
1.1.1 实验动物
SPF级C57BL/6J小鼠60只,12周龄,体质量25~30 g,购自广州中医药大学实验动物中心,实验动物许可证:SYXK(粤)2018-0001。小鼠饲养在广州中医药大学SPF级实验动物中心,室温22~25 ℃,湿度40%~50%,该实验通过广州中医药大学伦理审批(伦理批号:20230331001)。
1.1.2 药物与试剂
桃叶珊瑚苷,DMEM培养基(上海达特希尔生物科技有限公司);FBS,TB Green Premix EX taqTM II,PremerScriptTM RT Master MIX EX (Takara);SOX9抗体,P65抗体,TNF-α抗体,GAPDH抗体(abcam);COL2抗体,MMP13抗体(Thermo Fisher Scientific); pP65抗体(cell signaling);重组小鼠IL-1β,DMEM 培养基,FBS(Gibco)。
1.1.3 仪器
Multiskan FC型酶标仪(Thermo Fisher Scientific);实时荧光PCR(Real-time PCR)仪,Power Pac TMD asic型高压电泳仪(Bio-Rad),3D HISTECH DX12数字病理切片扫描系统(山东斯瑞缔医疗科技有限公司);Gel Doc EZ型全自动凝胶成像系统、Allegra X-30R型离心机(Beckman);微型CT扫描分析系统(Micro-CT,Brucker)。
1.2 方法
1.2.1 小鼠分组与给药
取60只SPF级C57BL/6J小鼠(8周龄,体质量20~25 g),采用随机数字表法分为6组(
n=10):假手术组,模型组,阳性药物组(氨基葡萄糖,150 mg/kg),桃叶珊瑚苷低剂量组(2 mg/kg)、中剂量组(4 mg/kg)、高剂量组(8 mg/kg)。参照文献
[
15] 方法行前交叉韧带(ACL)离断术建立膝关节骨性关节炎模型。术后第1天开始,阳性对照组腹腔注射氨基葡萄糖溶液,桃叶珊瑚苷各组按对应剂量腹腔注射给药,假手术组和模型组给予等体积生理盐水。所有小鼠给药1次/周,连续干预8周。末次给药24 h后取材,行番红-固绿染色及免疫组化检测,并使用μCT检测软骨下骨骨体积分数的变化情况(BV/TV)。
1.2.2 Western blotting检测软骨相关蛋白表达
取各组小鼠膝关节软骨组织,提取总蛋白并定量。采用10% SDS-PAGE 凝胶电泳分离蛋白(30 μg/孔),转膜后5%脱脂奶粉封闭1 h,分别加入NF-κB p65(1∶1000)、IκBα(1∶1000)、MMP-13(1∶800)、Collagen II(1∶500)一抗,4 ℃孵育过夜。次日TBST洗膜后加入HRP标记二抗(1∶2000),室温孵育1 h,ECL化学发光法显影,ImageJ软件分析条带灰度值,以β-actin为内参计算相对表达量。
1.2.3 免疫组化染色
取石蜡包埋膝关节组织切片(4 μm),60 ℃烤箱烘烤2 h后脱蜡水化。采用柠檬酸抗原修复液(pH 6.0)高压修复5 min,3% H2O2室温封闭15 min。滴加5%山羊血清封闭30 min,加入MMP-13(1∶100)、Collagen II(1∶200)一抗,4 ℃孵育过夜。PBS冲洗后滴加辣根过氧化物酶标记二抗(1∶200),室温孵育30 min,DAB显色5 min,苏木素复染,梯度酒精脱水,中性树胶封片。每张切片随机选取5个高倍视野(×200),Image-Pro Plus 6.0软件分析阳性表达面积百分比。
1.2.4 IL-1β诱导的软骨细胞模型的建立与干预
取原代小鼠软骨细胞,以1×105/孔接种于6孔板。待细胞融合至80%时,更换为含10 ng/mL IL-1β的DMEM培养基,培养24 h建立退变模型。模型组继续培养,桃叶珊瑚苷各组分别加入终浓度为5、10、20 μmol/L的药物,阳性对照组加入0.1 mmol/L氨基葡萄糖,正常对照组仅用基础培养基培养。继续培养72 h后,行阿利新蓝染色及番红O染色。
1.2.5 RT-PCR 检测基因表达
采用TRIzol试剂提取各组软骨细胞总 RNA,经NanoDrop 2000检测纯度后,使用PrimeScript RT试剂盒合成cDNA。以18S rRNA为内参,应用TB Green Premix Ex Taq II进行qPCR反应。反应条件:95 ℃预变性30 s,95 ℃ 5 s,60 ℃ 30 s,共40个循环。采用2
-ΔΔCt法计算MMP-13、ADAMTS-5、Collagen II、Aggrecan 基因相对表达量,引物由生工生物工程(上海)股份有限公司设计并合成。引物序列见
表1。
1.3 统计学分析
采用IBM SPSS Statistics 24.0进行统计分析,正态分布的计量资料以均数±标准差表示,非正态分布资料以中位数(四分位间距)描述;对于满足正态分布和方差齐性检验的计量资料,两组比较采用两独立样本t检验,多组比较采用单因素方差分析;不满足正态分布或者方差齐性检验的资料,多组比较采用Cruskal-Wallis秩和检验,两组比较采用非参数Mann-Whitney U检验。P<0.05时认为差异有统计学意义。
2 结果
2.1 桃叶珊瑚苷减轻KOA软骨损伤
HE染色结果显示,模型组软骨表面不平整,软骨下骨结构模糊,软骨厚度较假手术组减少;使用氨基葡萄糖干预后,骨厚度较模型组增加;桃叶珊瑚苷干预后,关节软骨随药物浓度升高逐渐改善,高剂量组软骨厚度较模型组增加(
图 1A)。番红-固绿染色结果显示,模型组软骨基质表层染色减弱、部分区域染色缺失,桃叶珊瑚苷各剂量组呈剂量依赖性增强(
图1B)。
μCT检测显示,模型组软骨下骨BV/TV明显下降,阳性药物干预后骨小梁结构明显改善,干预后软骨下骨BV/TV值与模型组相比升高(
P<0.001),桃叶珊瑚苷处理后软骨下骨BV/TV值均有改善,中剂量和高剂量组骨密度较模型组增加(
P<0.05,
P<0.001,
图 2)。高剂量桃叶珊瑚苷组改善软骨下骨BV/TV的效果与阳性药物相当,差异无统计学意义。
免疫组化结果显示,与模型组相比,桃叶珊瑚苷干预后,p65阳性细胞阳性细胞百分比评分在阳性药物及桃叶珊瑚苷处理后表达量减低(
P<0.05),高浓度组与阳性药物组差异无统计学意义。TNF-α表达趋势与p65一致,经阳性对照药物及桃叶珊瑚苷处理后,TNF-α阳性细胞阳性细胞百分比评分在阳性药物及桃叶珊瑚苷处理后表达量减低(
P<0.05),中、高浓度组与阳性药物组相比差异均无统计学意义(
图3)。
2.2 桃叶珊瑚苷调控NF-κB信号通路机制
Western blotting检测显示,与对照组相比,桃叶珊瑚苷能抑制NF-KB信号通路相关蛋白pP65及炎症相关蛋白IL-1的表达,并抑制MMP13的表达。桃叶珊瑚苷处理增加了软骨相关蛋白COL2和SOX9的表达(
P<0.05,
图4)。
2.3 桃叶珊瑚苷促进软骨细胞修复
阿利新蓝-番红O染色显示,IL-1β诱导的软骨细胞模型中,桃叶珊瑚苷干预后阿利新蓝及番红O染色对应的
A值升高,与对照组的差异有统计学意义(
P<0.001),与氨基葡萄糖组的差异无统计学意义(
图5A、B)。RT-PCR热图及PCR结果显示,与对照组相比,随着桃叶珊瑚苷浓度的增加,SOX9和COL2表达增强(
P<0.001),同时TNF-α表达下降(
P<0.05)(
图5C、D)。与模型组相比,SOX9、COL2的基因表达在桃叶珊瑚苷组中表达增加,而TNF-α基因表达降低。
3 讨论
KOA作为一种慢性退行性关节疾病,其病理进程与炎症反应的持续激活密切相关。滑膜炎症不仅是关节损伤的继发结果,更是驱动疾病进展的关键因素
[16]。IL-1β、TNF-α等促炎细胞因子通过NF-κB通路介导滑膜成纤维细胞异常活化,促进MMPs分泌并诱导软骨细胞凋亡,形成“炎症-降解”的恶性循环
[17]。本研究发现桃叶珊瑚苷能够抑制NF-κB信号通路相关蛋白p-P65及炎症相关蛋白IL-β1的表达,进而抑制MMP13的表达,同时促进COL2及SOX9的表达,以此对KOA模型起到治疗作用。这一结果表明桃叶珊瑚苷作为中药单体多靶点复合作用的显著优势。与以往研究不同的是,本研究不仅证实了其抗炎作用,还发现它是一种天然的MMP13抑制剂。桃叶珊瑚苷可作用于这个关键靶点,从软骨保护层面发挥治疗作用。
尽管桃叶珊瑚苷作为一种具有潜在药理作用的物质,已有研究表明其具有抗炎和保护软骨细胞的作用
[18],但目前大多研究局限于体外实验,缺乏对其在体内作用分子机制的深入探究。本研究的重要优势之一在于进行了相对完整的体内实验,通过HE及番红-固绿染色发现,在小鼠骨关节炎模型中,桃叶珊瑚苷处理组关节软骨厚度增加,且高浓度组效果最为显著,显示了桃叶珊瑚苷在体内对骨性关节炎的抑制作用以及对膝关节软骨的保护作用。
TNF-α作为一种促炎细胞因子,在许多炎症性疾病包括骨关节炎中表达增加。既往研究表明,减少TNF-α的表达有助于降低关节炎的炎症反应
[19]。P65是经典炎症通路NF-κB信号通路中的关键转录因子,其活化会导致炎症相关基因的大量表达
[20]。本研究通过IHC染色发现,在小鼠骨关节炎模型中,桃叶珊瑚苷处理后降低了关节处TNF-α和P65蛋白的表达。这进一步证实了桃叶珊瑚苷能通过抑制炎症相关蛋白的表达来抑制骨关节炎的发展。炎症反应在骨关节炎的发病机制中起着核心作用,持续的炎症刺激会导致软骨细胞的损伤和凋亡,加速软骨基质的降解
[21]。桃叶珊瑚苷对TNF-α和P65蛋白表达的抑制,可能是其发挥抗炎作用的重要机制之一。
本研究发现桃叶珊瑚苷可以抑制NF-κB/MMP13信号轴,进而促进SOX9及COL2的表达,起到抗炎、促进软骨修复的作用。在肿瘤相关研究中,NF‑κB/MMP13信号轴与肿瘤的侵袭性相关
[22]。本研究首次在小鼠KOA的模型中发现了MMP13与NF-κB信号通路的相关性,并证实了桃叶珊瑚苷对此信号轴的抑制作用。SOX9是软骨生成的关键转录因子,COL2是主要的软骨胶原蛋白,其表达上调有利于关节软骨的修复
[23, 24];而MMP13在软骨退化中起关键作用,抑制其表达有助于减缓软骨的降解
[25]。NF-κB信号通路的活化在骨关节炎的发病机制中扮演重要角色,其激活会导致炎症相关基因的表达增加
[26],引发炎症细胞的浸润和促进炎症反应的发生,同时还参与了软骨的破坏过程
[27]。通过抑制NF-κB的活化来减轻骨关节炎的病理过程是一种经典的实验方法
[28, 29]。本研究一方面证实了桃叶珊瑚苷能下调炎症相关指标,如IL-β1和TNF-α的表达,与之前的研究具有一定的一致性;另一方面,本研究发现桃叶珊瑚苷还能抑制MMP13的表达进而促进SOX9和COL2的表达,增加软骨下骨骨体积分数,进一步证明了桃叶珊瑚苷可以参与调控关节软骨基质的代谢,通过抑制软骨基质降解、促进关节软骨形成从而起到修复关节软骨损伤的作用。
综上所述,桃叶珊瑚苷通过多种机制对骨关节炎产生治疗作用。首先,它通过抑制NF-κB信号通路,从而起到抗炎作用,能抑制TNF-α和IL-β1等关键的促炎因子的表达,直接降低炎症反应。其次,它还能促进成软骨相关蛋白SOX9及COL2的表达,抑制软骨降解相关蛋白MMP13的表达,改善软骨下骨的骨体积分数,从而发挥促进关节软骨修复的作用。因此,桃叶珊瑚苷具有抗炎、促进软骨修复的作用,有望成为一种治疗KOA的有效单体。