骨肉瘤是最常见的原发性恶性骨肿瘤,主要发生于儿童和青少年,其年龄标准化发病率在10~19岁人群中约为6/1 000 000
[1]。直至20世纪70年代,接受手术治疗的患者生存率仍然较低。随着术前新辅助化疗、手术及术后辅助化疗的综合治疗策略的应用,骨肉瘤患者的5年生存率从20%提升至60%以上
[2-4]。然而,化疗耐药仍然是骨肉瘤患者治疗失败的主要原因之一。过去40年来,骨肉瘤患者的总体生存率未见显著提高,仍有30%~40%的患者无法从现有联合治疗中获益
[5, 6]。此外,包括顺铂、多柔比星、大剂量甲氨蝶呤和异环磷酰胺在内的经典化疗药物常引发诸多急性或慢性毒副作用,导致患者不得不终止用药
[7-9]。因此,开发具有低毒副作用的新型药物至关重要。
近年来,多种具有抗癌活性的天然植物提取物陆续被分离和鉴定。中医药及其活性成分因其多靶点作用和低毒副作用的优势,在抗肿瘤研究中显示出良好潜力
[10, 11]。重楼皂苷VII(PP7)是从重楼中提取的皂苷类化合物。重楼在中医临床中广泛应用于治疗疔疮、痈肿、咽喉肿痛、蛇虫咬伤、疼痛及惊风抽搐等症。云南重楼所含皂苷成分已被证实具有抗肿瘤、镇痛及镇静作用
[12]。多项报道表明,PP7对多发性骨髓瘤
[13]、肝细胞癌
[14]、肺癌
[15]、人口腔鳞状细胞癌
[16]以及骨肉瘤
[16]等多种恶性肿瘤均表现出抑制效果
[17]。课题组前期研究显示,PP7可通过调节U2OS细胞中H
2O
2水平,并经由JNK信号通路诱导细胞凋亡与自噬,从而发挥抗肿瘤作用
[17]。然而,目前关于PP7抑制骨肉瘤增殖的研究仍然空白,其潜在的分子机制尚不明确。基于此,本研究拟通过患者来源的异种移植(PDX)模型及体外实验,系统评估PP7在骨肉瘤中的抗肿瘤活性,并进一步结合单细胞转录组测序(scRNA-seq)与批量转录组测序(bulk RNA-seq)、分子对接等技术,筛选并验证其潜在作用靶点,旨在阐明PP7抑制骨肉瘤的具体分子机制,为PP7的临床应用及骨肉瘤治疗新策略的开发提供理论依据。
1 材料和方法
1.1 实验动物、主要试剂与仪器
重楼饮片购自北京同仁堂。PP7购自北京索拉生物科技有限公司,纯度≥98%。骨肉瘤细胞系143B、HOS、MG63、SAOS2与U2OS购自中国科学院细胞库。人成骨细胞系hFOB1.19(OB细胞)用作qRT-PCR对照。实验所用NOD/ShiLtJGpt-Prkdcem26Cd52Il2rgem26Cd22/Gpt (NCG)小鼠2只(雌性,4周龄,体质量18~20 g)及BALB/c-nu裸鼠6只(雌性,4周龄,体质量16~20 g)购自江苏集萃药康生物科技有限公司。将肿瘤大小相近的裸鼠随机分为PP7用药组和对照组,3只/组。实验程序符合动物研究伦理原则,并得到广西医科大学第一附属医院伦理委员会批准(伦理批号:2024-E248-01)。
主要试剂:DMEM/F-12(1∶1)、DMEM与MCoys 5A培养基、胎牛血清、0.025%胰蛋白酶(Gibco);4%多聚甲醛、1%结晶紫染色液、青霉素/链霉素(北京索莱宝科技有限公司);RevertAid TM First Strand cDNA Synthesis Kit(Fermentas);SYBR Green PCR试剂盒、DCFH-DA工作液(Sigma-Aldrich);CCK-8试剂(Dojindo);Transwell小室、Matrigel基质胶(Corning);引物、Sangon™ RNA TransMate转染试剂(生工生物);SOHLH1基因的siRNA(上海生工);质粒(Genechem);Lipofectamine™3000试剂(Invitrogen);伊莱瑞科脂质过氧化物(LPO)荧光检测试剂盒(Elabscience)。RNAeasy™动物RNA抽提试剂盒(上海碧云天生物技术有限公司);PCR逆转录试剂(Takara);SYBR Green(Roche);蛋白质提取试剂盒(NCM Biotech);一抗SOHLH1、二抗辣根过氧化物酶标记的山羊抗兔(Proteintech);β-Tubulin(ZEN-BIOSCIENCE)。
主要仪器:Xevo G2-XS Q-TOF质谱系统、ACQUITY UPLCTM系统(沃特世);7500实时荧光定量PCR系统(Applied Biosystems);酶标仪(BioTek);倒置荧光显微镜(Olympus);CO₂培养箱(Thermo Fisher)。
1.2 方法
1.2.1 质谱法鉴定PP7
干燥重楼药材经粉碎过50目筛后备用。取0.5 g重楼粉末,加入35 mL 95%乙醇,90 ℃回流提取30 min。提取液经水浴蒸发并浓缩至100 mg/mL,0.22 μm滤膜过滤后进样。采用超高效液相色谱串联质谱分析(UPLC-ESI-QTOF-MS/MS)技术,色谱分离在HSS T3柱(35 ℃)上进行,流速0.3 mL/min,进样量10 μL,流动相为A(水/甲酸,99.9/0.1,v/v)和B(乙腈),按既定梯度洗脱。质谱数据采集范围50~1500,正负离子模式扫描。
1.2.2 PDX模型构建与体内药效评估
本研究所有涉及人体样本的操作均获得了广西医科大学第一附属医院伦理委员会的批准(伦理批号:2024-E248-01),并严格遵循赫尔辛基宣言。研究所需的新鲜骨肉瘤组织均采集于手术中切除的标本,并立即置于冷藏保存,后续立即用于构建PDX模型,以进行体内药效学评价和后续的分子机制研究。取新鲜骨肉瘤组织,切割成3 mm×3 mm×3 mm组织块,移植于NCG小鼠右侧肋脊部皮下,将NCG小鼠置于SPF级环境中饲养,连续传代3代。将第3代的肿瘤组织块移植至BALB/c-nu裸鼠,设立实验组予PP7干预(2 mg/kg,灌胃,2 d/次,共28 d)和对照组予以等量生理盐水,3只/组。每2 d测量小鼠体质量,每周测量肿瘤体积(肿瘤体积=0.5×长×宽2)。实验终点处死小鼠,剥离肿瘤组织进行后续bulk RNA-seq分析。
1.2.3 细胞培养
hFOB1.19细胞培养于 DMEM/F-12(1∶1)培养基(含10%FBS、1%青霉素/链霉素)和骨肉瘤细胞系143B、HOS、MG63培养于DMEM培养基(含10% FBS,1%青霉素/链霉素),SAOS2与U2OS细胞培养于MCoy's 5A培养基 (SAOS2含15% FBS,U2OS含10% FBS,均含1%青霉素/链霉素)。所有细胞在37 ℃、5% CO₂培养箱中培养,使用0.025%胰蛋白酶消化传代。
1.2.4 细胞增殖、迁移与侵袭实验
采用CCK-8法检测细胞增殖:将细胞密度为5000/孔接种于96孔板,设置不同浓度PP7(0、1.25、2.5、5、10 μmol/L) 干预48 h后,每孔加入10 μL CCK-8试剂,孵育1 h,测定A450 nm。
采用Transwell实验评估迁移与侵袭能力:调整细胞密度至5×10⁵/100 μL,取100 μL悬液加入Transwell上室,下室加入600 μL含10% FBS的完全培养基作为趋化剂,于37 ℃、5% CO₂培养箱中培养48 h。侵袭实验需预先在Transwell小室铺设50 μL Matrigel基质胶,并孵育30 min形成一层膜。培养48 h后,轻轻吸走培养基,加入细胞用4%多聚甲醛在室温下固定30 min,用PBS清洗3次,然后用1%结晶紫染色液染色15 min,再次用PBS清洗3次。迁移、侵袭实验均需用棉签轻轻擦拭上室膜表面未迁移细胞,侵袭实验需加擦拭小室内基质胶膜的部分。自然风干后,在正置显微镜下观察并拍照计数。
1.2.5 Western blotting
采用Western blotting检测143B和HOS细胞中SOHLH1蛋白在PP7处理前后的表达水平。使用蛋白质提取试剂盒提取细胞总蛋白,通过SDS-PAGE进行分离,随后利用电转法将蛋白转移至聚偏二氟乙烯膜上。膜在室温封闭1 h后,与SOHLH1一抗(1∶1000)于4 ℃孵育过夜;随后在室温下与相应的HRP标记二抗(1∶5000)孵育1 h。以β‑Tubulin(1∶5000)作为内参对照。使用增强化学发光试剂(Epizyme Biotech)显影,并通过ImageJ软件对条带进行光密度定量分析。
1.2.6 细胞转染实验
根据Sangon™ RNA TransMate转染试剂说明书并通过qRT-PCR验证沉默效率,确定了针对SOHLH1基因的siRNA在细胞系中的最佳工作浓度。设计并合成了3条针对SOHLH1不同靶点的siRNA序列,并通过qRT-PCR筛选其沉默效率。质粒的过表达效率根据Lipofectamine™3000试剂和后续qRT-PCR的说明进行验证。并按照制造商的说明转染过表达质粒,瞬时转染143B和HOS细胞,转染48 h后收细胞进行后续实验,如qRT-PCR、迁移与侵袭、LPO、ROS等功能实验。
1.2.7 实时荧光定量PCR(qRT-PCR)
提取细胞总RNA并逆转录为cDNA。使用SYBR Green PCR试剂盒,在7500实时荧光定量PCR系统上进行反应。以SOHLH1为靶基因,GAPDH为内参,采用2–∆∆CT法计算基因相对表达量。
1.2.8 细胞活性氧(ROS)与脂质过氧化物(LPO)检测
将143B和HOS细胞以2×105/孔接种于24孔板,按实验设计分组干预48 h。ROS检测:加入500 μL/孔稀释后的DCFH-DA工作液,避光孵育30 min,无血清培养基清洗后于荧光显微镜下观察。LPO检测:使用Elabscience脂质过氧化物荧光法测试盒检测细胞内的LPO。按照说明书进行操作,除去培养基,用工作液洗涤细胞2~3次。加入配好的浓度为5 μmol/L的C11-BODIPY 581/591荧光探针,37 ℃避光孵育细胞45~60 min。孵育结束后用工作液洗涤细胞2~3次,以充分去除未进入细胞内的荧光探针。吸除液体后,在倒置荧光显微镜下观察细胞并采集图像。使用Image-J统计每组荧光强度。
1.2.9 Bulk RNA-seq与scRNA-seq分析
PDX肿瘤组织bulk RNA-seq:将PDX肿瘤组织消化制备成细胞悬液后提取总RNA。以1 μg总RNA为起始模板,利用逆转录酶将RNA模板转化为cDNA。在双链cDNA的3'末端添加腺苷酸尾并连接接头。使用PCR对连接接头的DNA片段进行扩增,通过Qubit荧光定量仪对构建完成的文库进行定量与质控。文库委托上海吉凯基因医学科技股份有限公司使用Illumina Novaseq 3000测序仪按制造商说明书进行测序。单细胞RNA测序数据分析:单细胞RNA测序数据引自我们前期的研究(该研究收集了6例骨肉瘤患者的肿瘤组织进行单细胞RNA测序)
[18]。所有患者均在样本获取前未接受化疗或放疗。样本经消化后通过油包水系统构建文库并测序。上游分析使用Cell Ranger软件完成,相关数据已上传至基因表达综合数据库(GEO),登录号为GSE162454。同时从GEO数据库选取GSE169396单细胞数据作为正常对照队列。使“seurat”R包整合2个数据集并剔除低质量细胞,筛选标准为:nFeature_RNA>300且nFeature_RNA<4500,线粒体基因百分比<10%。为减少不同操作者、时间及仪器引起的实验误差,采用“harmony”包对质控后数据进行批次效应校正。对处理后的数据应用主成分分析进行线性降维,通过“ElbowPlot”确定后续分析所用的主成分维度。重点采用t-SNE与UMAP算法探索并可视化全体细胞的聚类分类。随后选择ALPL、RUNX2和IBSP作为成骨样细胞的标记基因定义细胞亚群。最终识别正常队列与骨肉瘤队列成骨细胞中的差异基因,并将其作为骨肉瘤的潜在作用靶点。差异基因筛选阈值为校正
P<0.05。上述所有统计分析和数据可视化均采用R4.1.0软件完成。
1.2.10 分子对接
选择SOHLH1与PP7进行分子对接。从PubChem数据库获取PP7的3D结构,从AlphaFold数据库获取SOHLH1蛋白结构。使用PyMOL和AutoDock Tools1.5.7处理蛋白(去除配体、水分子,加氢),通过OpenBabel处理配体,均保存为pdbqt格式。采用QuickVina-W方法进行分子对接
[19],使用PyMOL和PLIP在线工具进行结果可视化(
https://plip-tool.biotec.tu-dresden.de)。
1.2.11 统计学分析
使用GraphPad Prism8.0软件进行数据分析。实验数据以均数±标准差表示,组间比较采用单因素方差分析,以P<0.05为差异有统计学意义。
2 结果
2.1 重楼药材的质谱分析结果
重楼提取物的UPLC-ESI-QTOF-MS/MS分析结果如
图1所示。在正、负离子模式下分别获得了具有鉴定意义的基峰离子图谱(
图1A、B)当保留时间为38.38 min时检测到PP7(
图1A)。基于MassLynx V4.2软件及人类代谢组数据库5.0对色谱图进行一级和二级分析,最终鉴定出23种成分(表
1、
2)。其中,PP7被确定为正离子模式下重楼的主要成分之一,其分子式为C
51H
84O
22,相对分子质量为1049.1990(
图1C)。
2.2 PP7体内抑制骨肉瘤生长
在PDX模型中,与对照组相比,PP7给药组的骨肉瘤体积与质量均减小(
P<0.05,
图2)。
2.3 PP7体外抑制骨肉瘤细胞增殖、侵袭与迁移
CCK-8法检测结果显示,与0 μmol/L组相比,1.25 μmol/L和2.5 μmol/L的PP7处理对143B及HOS细胞的增殖无影响;而当浓度升至5 μmol/L和10 μmol/L时,细胞增殖被抑制(
P<0.05,
图3A、B),并确定5 μmol/L为后续功能实验的适宜浓度。Transwell实验显示,5 μmol/L PP7处理可降低143B和HOS细胞的迁移数量(
P<0.001)与侵袭数量(
P<0.05,
图3C~F)。
2.4 PP7可能通过SOHLH1发挥抗骨肉瘤作用
对6例骨肉瘤患样本(29 278个细胞)与4例正常对照样本(24 625个细胞)的单细胞进行聚类,共识别出13个细胞亚群;其中,高表达成骨标志基因ALPL、RUNX2与IBSP的细胞簇被注释为成骨样细胞(
图4A、B)。比较肿瘤与正常组织中的成骨样细胞,鉴定出2442个差异表达基因;对PP7处理组与对照组的PDX模型的bulk RNA-seq数据进行比较,识别出414个上调的差异表达基因。两者取交集后,筛选出11个PP7的潜在作用靶点(
图4C)。其中,SOHLH1在PP7给药组中上调最显著(log2FoldChange=2.487,
图4D)。
qRT-PCR结果显示,SOHLH1在多种骨肉瘤细胞系中普遍低表达(
P<0.01,
图4E)。Western blotting结果表明,PP7处理可上调143B与HOS细胞中SOHLH1的蛋白表达水平(
P<0.05,
图4F)。分子对接模拟显示,PP7与SOHLH1蛋白的结合能为-6.9 kcal/mol(
图4G)。
2.5 SOHLH1对骨肉瘤细胞迁移与侵袭的影响
qRT-PCR验证结果显示,在143B细胞中,si-SOHLH1-496的沉默效率最高(
P<0.001,
图5A);在HOS细胞中,si-SOHLH1-374的沉默效率最佳(
P<0.001,
图5B)。随后,Transwell实验结果显示,在143B细胞中,与对照组相比,过表达SOHLH1(oe-SOHLH1)组的迁移与侵袭细胞数量减少(
P<0.01),而敲低SOHLH1(si-SOHLH1)组的迁移与侵袭细胞数量则增加(
P<0.01,
图5C~E)。在HOS细胞中观察到一致的趋势:oe-SOHLH1组的迁移(
P<0.001)与侵袭(
P<0.01)细胞数量减少,而si-SOHLH1组的迁移与侵袭细胞数量增加(
P<0.01,
图5F~H)。
2.6 PP7通过上调SOHLH1抑制骨肉瘤细胞的迁移与侵袭能力
qRT-PCR分析显示,与对照组相比,经5 μmol/L PP7处理后,143B和HOS中SOHLH1的表达水平升高(
P<0.01,
图6A、B)。功能拯救实验结果表明,PP7均使143B细胞的迁移与侵袭数量减少(均
P<0.01)。si-SOHLH1则增加了其迁移数(
P<0.05)和侵袭数(
P<0.01);当沉默SOHLH1基础上加药物干预(PP7+si-SOHLH1组),迁移(
P<0.01)和侵袭(
P<0.05)的细胞数较PP7组回升(
图6C、D)。在HOS细胞中同样观察到一致的趋势:PP7减少细胞迁移(
P<0.001)与侵袭(
P<0.01)的数量,而si-SOHLH1则增加迁移(
P<0.05)和侵袭的细胞数(
P<0.01)。PP7+si-SOHLH1组迁移(
P<0.01)和侵袭(
P<0.05)的细胞数较PP7组回升(
图6E、F)。
2.7 PP7可能通过上调SOHLH1诱导骨肉瘤细胞铁死亡
在143B细胞中,与对照组相比,si-SOHLH降低了ROS与LPO的水平(
P<0.05),而PP7处理则升高了这些指标(
P<0.05)。在PP7处理的同时敲低SOHLH1(PP7+si-SOHLH1组),PP7所诱导的ROS与LPO被逆转升高(
P<0.01,
图7A~D)。在HOS细胞中观察到相似的趋势:si-SOHLH1降低了ROS(
P<0.01)与LPO水平(
P<0.05),PP7组较对照组ROS与LPO水平升高(
P<0.05),而PP7+si-SOHLH1组的ROS(
P<0.01)与LPO水平(
P<0.05)较PP7组降低(
图7E~H)。
3 讨论
骨肉瘤作为最常见的原发性恶性骨肿瘤,其高侵袭性与转移率是导致患者预后不佳的主要原因,因此亟需开发新的治疗策略。近年来,中医药凭借其多靶点、低毒副作用的独特优势,已成为新型抗肿瘤药物研发的重要宝库。PP7是从中药重楼中分离的一种活性甾体皂苷,既往研究表明PP7为重楼的主要药理成分之一
[20],其在逆转化疗耐药及抑制多种肿瘤进展方面展现出巨大潜力
[21-23]。同时,前期研究发现,PP7可通过调控JNK通路诱导骨肉瘤细胞凋亡与自噬
[17]。除上述机制外,近期研究还揭示,PP7能够通过诱导胃癌和非小细胞肺癌中肿瘤细胞的铁死亡,进而抑制肿瘤细胞的迁移和侵袭
[24, 25],提示铁死亡可能是其发挥抗肿瘤效应的另一重要途径。然而,PP7能否在骨肉瘤中诱导铁死亡,其关键分子靶点是什么,以及其在体内的深层抗瘤机制,目前尚不明确。
本研究采用了PDX模型的构建,该模型因其能高度保留原发肿瘤的异质性与微环境特征,被视为评估药物疗效的“金标准”
[26, 27]。本研究结果明确显示,PP7处理能显著抑制骨肉瘤PDX模型的肿瘤生长,为PP7的体内有效性提供了直接证据。在证实PP7的体内疗效后,通过整合scRNA-seq、bulk RNA-seq与分子对接技术,SOHLH1被鉴定为PP7作用于骨肉瘤的关键潜在靶点。SOHLH1位于9号染色体的q臂上。在生理状态下,SOHLH1对精子发生、卵子发生和卵泡发生至关重要
[28, 29]。目前关于SOHLH1在肿瘤中的研究较少。既往研究显示,SOHLH1可通过抑制Wnt/β-catenin信号通路降低星形细胞瘤细胞的恶性和进展
[30],与本研究中SOHLH1抑制骨肉瘤侵袭迁移的结果一致,提示SOHLH1可能在不同类型肿瘤中均发挥抑癌基因的作用。功能回复实验进一步表明,PP7的干预能够有效逆转由SOHLH1沉默所导致的骨肉瘤细胞侵袭与迁移能力增强,这证实了PP7的作用依赖于SOHLH1。本研究还发现,PP7可能通过上调SOHLH1导致骨肉瘤细胞中ROS和LPO的积累而诱导铁死亡。
铁死亡是一种由铁超载驱动的新型程序性细胞死亡,其特征是Fenton反应产生大量活性氧和脂质过氧化物,最终导致细胞膜损伤
[31],在多种全身性疾病中发挥重要作用
[32, 33]。与自噬和细胞凋亡不同,铁死亡是一种依赖铁和ROS的细胞死亡
[34]。研究表明,化疗药物联合铁死亡诱导剂对其抗肿瘤活性具有显著的协同作用,优于单独化疗
[34]。诱导铁死亡能够有效抑制骨肉瘤细胞的恶性进展
[35, 36]。本研究显示,PP7干预骨肉瘤细胞后,ROS和LPO含量明显增加,这提示PP7可能通过诱导骨肉瘤细胞发生铁死亡,进而发挥其抗肿瘤作用。本研究存在以下局限性:首先,由于经费限制,本研究仅探讨了单一有效浓度,剂量效应关系有待阐明。其次,药物与分子的直接结合机制有待通过更精密的实验(如细胞热位移分析实验、表面离子共振实验等)进行验证。最后,铁死亡相关蛋白及铁离子浓度的变化,是未来研究中需要补充的关键实验证据。
综上所述,本研究首次揭示了重楼活性成分PP7能够通过上调SOHLH1的表达来抑制骨肉瘤的进展。本研究提出了PP7可能通过SOHLH1介导铁死亡这一新机制,为骨肉瘤的治疗提供了新的潜在靶点和策略。