创伤后应激障碍(PTSD)是一种以恐惧记忆消退障碍、焦虑为核心症状的精神障碍
[1]。一项伞状系统评估发现,经受过自然灾害、战争等创伤事件人群的患病率高达23.95%
[2],然而目前PTSD的治疗方法仍存在中断率高、副作用大、早期预防手段不足等局限性
[3, 4]。因此,寻求安全有效的防治方法意义重大。海马是大脑中负责学习记忆以及恐惧、焦虑等情绪的重要区域,研究发现PTSD患者和动物模型的大脑中均出现海马体积变小、神经元损伤等病理改变
[5, 6]。而星形胶质细胞(AST)在海马中作为高度异质的细胞群,与神经递质传递、神经元保护等密切相关
[7],越来越多的证据表明AST参与恐惧记忆和压力相关疾病的形成和病理重塑
[8, 9]。
电针具有操作简便、价格低廉且无明显不良反应的独特优势,其对PTSD的临床疗效已得到广泛认可
[10, 11]。研究表明,电针治疗可能通过修复海马脑区的结构和神经元损伤改善PTSD
[12];此外,电针能够预防抑郁样小鼠海马AST的萎缩,调节脑卒中小鼠AST的活性
[13, 14]。“百会”“足三里”是针灸治疗PTSD的临床试验和动物实验中出现频率较高的两个穴位
[15],本课题组前期研究也显示电针“百会”“足三里”能够干预PTSD模型小鼠的恐惧记忆异常和睡眠时间减少
[16]。然而,电针对PTSD模型小鼠海马AST的影响以及电针是否通过AST发挥治疗作用,目前尚无研究报道。单次长时间应激(SPS)模型能够诱导啮齿动物表现出PTSD样行为
[17]。本研究通过观察SPS小鼠恐惧记忆消退、焦虑样行为和AST的变化,探讨电针对SPS小鼠PTSD样行为的改善作用和潜在机制。
1 材料和方法
1.1 实验动物
5~7周龄的健康雄性C57BL/6J小鼠共36只,体质量18~20 g,由杭州子源实验动物科技有限公司提供,生产许可证号:SCXK(浙)2019-0004。所有小鼠饲养于安徽中医药大学科研中心动物房,温度20~24 ℃,相对湿度45%~65%,提供自由摄食和饮水,12 h/12 h的明暗光照周期。经过7 d适应性喂养后开始实验。本实验遵循安徽中医药大学动物使用的相关伦理要求(伦理批号:AHUCM-mouse-2024164)。
1.2 主要试剂和仪器
异氟烷(深圳瑞沃德),盐酸帕罗西汀片(天津葛兰素史克),0.9%氯化钠注射液(安徽丰原药业),4%多聚甲醛固定液(广州硕谱),GFAP抗体(北京博奥森),辣根酶标记山羊抗兔、辣根酶标记山羊抗小鼠(北京中杉金桥),CX43抗体、β-actin抗体、山羊抗小鼠AF594、山羊抗小鼠FITC(成都正能),山羊血清(武汉博士德),DAPI染色液、抗荧光淬灭剂(上海碧云天),增强型化学发光液(上海天能),氯氮平-N-氧化物(CNO)、rAAV-GFAP-hM4D(Gi)-mCherry-WPREs(武汉枢密)。
一次性无菌针灸针(苏州医疗用品厂),SDZ-Ⅱ型电子针疗仪(苏州华佗),45 mm直头灌胃针(安徽白鲨),ANY-maze条件恐惧箱(Ugo Basile),SuperMaze高架十字迷宫装置(上海欣软),脑立体定位仪、小动物专用呼吸麻醉机(深圳瑞沃德),微量进样器(上海高鸽),电泳仪、电泳槽、转膜槽、曝光仪(上海天能),冷冻切片机(LEICA),激光共聚焦显微镜(OLYMPUS)。
1.3 实验分组与模型制备
1.3.1 实验分组
实验一:研究电针对SPS小鼠的恐惧记忆消退和AST的影响,分为对照组、SPS组、电针治疗(EA)组和帕罗西汀阳性药(PRX)组,6只/组。采用SPS法对SPS组、EA组和PRX组小鼠进行模型制备,造模后7 d开始干预:EA组予电针“百会”和“足三里”,PRX组予帕罗西汀溶液灌胃,对照组和SPS组予和上述2组小鼠相同条件的麻醉和抓取处理,不进行其他干预。干预10 d后进行行为学检测。
实验二:研究AST参与电针干预作用的潜在机制,分为Saline组和CNO组,6只/组。将化学遗传病毒(rAAV-GFAP-hM4D(Gi)-mCherry)通过定位注射的方法注射到各组小鼠海马CA1区,病毒表达14 d后采用SPS法对2组小鼠造模,造模后7 d进行电针干预,干预10 d后进行行为学检测,并在检测开始前30 min予CNO腹腔注射(
图1)。
1.3.2 模型制备
参照文献
[18]采用SPS法,包括连续束缚、强迫游泳、异氟烷麻醉、单次电击4个步骤进行模型制备:将小鼠放在50 mL离心管内固定2 h后,立即迫使其在装有约2/3水,水温22±2 ℃的圆柱桶中游泳20 min,其中桶高50 cm,半径12 cm。休息15 min后,迅速使小鼠暴露于5%异氟烷至失去意识,待其清醒、能够站立后继续将其麻醉,重复3次。休息15 min后,将小鼠置于电击箱内接受单次强度为2 mA的足底电击,持续2 s,最后将小鼠放回笼中。以小鼠出现警觉性增高、易激惹、毛发竖立等应激反应为造模成功。
1.4 干预方法
1.4.1 电针方法
取“百会”和双侧“足三里”,穴位定位参考《实验动物常用穴位名称与定位第3部分:小鼠》
[19]。小鼠经异氟烷(氧流量0.5 L/min,浓度2%)诱导麻醉后,剃除穴位局部被毛,俯卧位固定于操作台。穴位常规消毒后,采用0.20 mm×13 mm一次性无菌针灸针,“百会”以45°角向前斜刺2 mm,“足三里”直刺4 mm。针刺后连接SDZ-Ⅱ型电子针疗仪,电极负极连接“百会”,正极连接一侧“足三里”,次日改连对侧,双侧交替。选择疏密波,频率3 Hz/15 Hz,电流强度1 mA,留针30 min
[16, 20];EA组电针后予和PRX组相同条件的抓取处理。
1.4.2 帕罗西汀灌胃方法
将盐酸帕罗西汀片溶解于0.9%氯化钠溶液中,制备浓度2.5 g/L的帕罗西汀溶液;予小鼠帕罗西汀溶液(剂量为10 mg/kg)灌胃
[21];灌胃后予和EA组相同条件的麻醉处理。
1.5 行为学测试
1.5.1 条件恐惧实验(FCT)
使用连接ANY-maze软件的条件恐惧箱(242 mm×242 mm×300 mm),从SPS造模后第14天开始分别进行适应、训练、恐惧再暴露测试和消退测试4个阶段,每个阶段间隔24 h,共4 d(即干预结束后第1天开始恐惧再暴露测试)。适应:将小鼠置于恐惧箱5 min,使其熟悉环境。训练:将小鼠置于恐惧箱5 min,予3次(2 s/次,电流强度1 mA)的足底电击,每次间隔73 s。恐惧再暴露测试:将小鼠在同一时间重新暴露于恐惧箱,即恐惧环境中15 min(此阶段不予足底电击),仅记录小鼠凝滞时间。消退测试:将小鼠在同一时间置于恐惧箱5 min(此阶段不予足底电击),仅记录小鼠凝滞时间。“凝滞时间”的判断标准为小鼠头、尾及四肢静止不动的时间。恐惧消退指数(%)=[(恐惧再暴露0~3 min凝滞时间-恐惧消退0~3 min凝滞时间)÷恐惧再暴露0~3 min凝滞时间]×100%
[22]。每只小鼠测试结束后,均使用75%乙醇清洗设备以消除气味对实验的影响。
1.5.2 高架十字迷宫实验(EPMT)
SPS造模后第18天进行EPMT。高架十字迷宫由2个开放臂(50 mm×250 mm)、2个闭合臂(50 mm×250 mm×50 mm)和一个中心区域(50 mm×50 mm)组成,上方为连接SuperMaze软件的摄像机。将小鼠面对闭合臂放在中心区域,使其自由活动5 min,摄像机记录其运动轨迹,分析小鼠在开放臂的停留时间。进入开放臂的判定标准为小鼠4爪均进入开放臂。每只小鼠测试结束后,均使用75%乙醇清洗设备以消除气味对实验的影响。
1.6 化学遗传病毒与立体定位注射
异氟烷吸入麻醉后(氧流量0.5 L/min,浓度2%),将小鼠固定于脑立体定位仪,常规消毒后剪开颅顶皮肤,充分暴露前、后囟,调平。通过微量注射泵以0.1 μL/min的速度,将500 nL的病毒(rAAV-GFAP-hM4D(Gi)-mCherry)分别注射至双侧海马(前囟后2.3 mm,旁开1.75 mm,深1.60 mm)。每次注射后留针10 min,缓慢上提玻璃电极后缝合小鼠头部,将其放在保温毯上复温,待其苏醒后放回笼中休息。病毒转染1月后,行为学测试前30 min予CNO组小鼠2 mg/kg腹腔注射CNO以激活病毒,Saline组予等体积的生理盐水以排除CNO对行为学的影响。
1.7 Western blotting实验
实验一行为学检测结束后每组随机选取3只小鼠,5%异氟烷麻醉后迅速断头处死,取海马组织按比例加入裂解液,研磨,提取蛋白样品。制胶,上样,电泳,将蛋白转印到NC膜后,5%脱脂奶粉室温封闭2 h,PBST洗膜3次(10 min/次),一抗4 ℃孵育过夜(稀释比例:GFAP 1∶1 000、CX43 1∶1 000、β-actin 1∶1 000),PBST洗膜3次(10 min/次),二抗室温摇床孵育2 h(稀释比例:辣根过氧化物酶标记抗小鼠IgG 1∶10 000、辣根过氧化物酶标记抗兔IgG 1∶10 000),PBST洗膜3次(10 min/次)。避光条件下使用化学发光剂显影曝光,采用Image J软件进行灰度值分析,将目的蛋白的灰度值除以内参蛋白β-actin的灰度值后进行归一化处理,得到目的蛋白相对表达量。
1.8 免疫荧光染色
行为学检测结束后每组随机选取3只小鼠,经5%异氟烷麻醉后进行灌流,取脑组织于4%多聚甲醛固定,蔗糖脱水。使用冷冻切片机将脑组织制备为厚度30 μm的大脑切片,10%山羊血清室温封闭1 h,PBS清洗3次(15 min/次),加入抗GFAP抗体(1∶200),4 ℃孵育过夜。PBS清洗3次,加入山羊抗小鼠AF594、山羊抗小鼠FITC(1∶100),室温下避光孵育1.5 h,按1∶4比例加入DAPI染色液孵育30 min以标记细胞核。PBS清洗3次,使用抗荧光淬灭剂密封脑片,激光共聚焦显微镜观察观察GFAP和病毒荧光蛋白的表达。使用Image J软件进行平均荧光强度和Sholl分析。Sholl分析是一种以胶质细胞胞体为圆心画一系列同心圆后,通过神经元分支与其产生的交点个数,反映胶质细胞结构复杂程度的经典方法
[23]。
1.9 统计学分析
使用Prism 8.0软件对实验数据进行统计分析,计量资料以均数±标准差表示。数据符合正态分布,两组间比较使用t检验;数据符合正态分布且方差齐,除恐惧再暴露阶段凝滞时间和Sholl分析的数据比较使用双因素方差分析,其余数据的比较使用单因素方差分析,进一步两两比较使用Tukey-Kramer法。若数据不符合正态分布,采用秩和检验,组间比较采用独立样本Kruskal Wallis单因素秩方差分析。P<0.05为差异具有统计学意义。
2 结果
2.1 电针能改善SPS小鼠的恐惧记忆消退障碍和焦虑样行为
与对照组比较,SPS组小鼠恐惧再暴露阶段3~15 min的凝滞时间增加(
P<0.05)、消退测试阶段的凝滞时间增加(
P<0.001)、恐惧消退指数降低(
P<0.01)、进入开放臂的时间降低(
P<0.01)。与SPS组比较,EA组与PRX组小鼠恐惧再暴露阶段3~6 min的凝滞时间降低(
P<0.05)、消退测试阶段的凝滞时间降低(
P<0.001)、恐惧消退指数增加(
P<0.05)、进入开放臂的时间增加(
P<0.05),恐惧再暴露阶段6~15 min的凝滞时间呈降低趋势,但差异无统计学意义(
P>0.05,
图2)。
2.2 电针能修复SPS小鼠海马GFAP下调和AST结构损伤
与对照组比较,SPS组小鼠海马CA1区GFAP的平均荧光强度和AST的分支数量在距离胞体40~60 μm降低(
P<0.05)。与SPS组比较,EA组和PRX组海马CA1区GFAP的平均荧光强度增加(
P<0.001),AST的分支数量呈增加趋势,但差异无统计学意义(
P>0.05),EA组小鼠AST的分支数量在距离胞体50 μm增加(
P<0.05,
图3)。
2.3 电针能回调SPS小鼠海马GFAP和CX43蛋白的表达
与对照组比较,SPS组小鼠海马GFAP和CX43蛋白的表达降低(
P<0.05)。与SPS组比较,EA组和PRX组小鼠海马CX43蛋白的表达增加(
P<0.05),GFAP蛋白的表达呈增加趋势,但差异无统计学意义(
P>0.05,
图4)。
2.4 抑制海马CA1区AST能阻断电针对SPS小鼠恐惧记忆消退障碍和焦虑样行为的改善作用
免疫荧光染色结果显示,化学遗传学病毒(rAAV-GFAP-hM4D(Gi)-mCherry)的荧光蛋白mCherry(红色荧光)与AST标志蛋白GFAP(绿色荧光)高度重合,病毒主要表达在海马CA1区AST上。
行为学结果显示,与Saline组比较,CNO组小鼠恐惧再暴露阶段3~9 min和消退测试阶段的凝滞时间增加(
P<0.05),恐惧消退指数和进入开放臂的时间降低(
P<0.05,
图5)。
3 讨论
中医基础理论中虽没有PTSD这一概念,但结合其临床表现,认为PTSD属神志病,病位主要在脑,同时与心、肝、肾等脏腑经络均密切相关
[24]。“百会”是督脉要穴,又称“三阳五会”,具有聚百脉、统诸阳、安五脏、定神志之功效;而“足三里”是足阳明胃经的合穴,胃经作为多气多血之经,与脾经相表里,能够补益气血、补养心神,二者配伍可共同发挥通督调神、健脑养神的作用
[25]。因此,本研究选择电针“百会”“足三里”对PTSD模型小鼠进行干预。
帕罗西汀是国际医疗审核权威机构批准的,用于治疗成人PTSD的首选药物
[26]。研究表明帕罗西汀能够有效减轻SPS小鼠的PTSD样行为
[27]。因此,本研究将帕罗西汀作为阳性对照药以验证电针干预的有效性。通过FCT和EPMT,本研究发现模型小鼠在恐惧再暴露和消退测试阶段的凝滞时间、恐惧消退指数增加,进入开放臂的时间减少,提示模型小鼠出现恐惧记忆消退障碍和焦虑样行为,而电针干预能够逆转上述实验结果。且EA组的行为学结果与PRX组相比差异无统计学意义,说明电针“百会”“足三里”能够改善SPS小鼠的恐惧记忆消退障碍和焦虑样行为,且疗效与帕罗西汀相当。这与本课题组前期研究的结果一致
[28]。
既往研究表明,杏仁核-海马-前额叶皮层神经回路在恐惧记忆的获取、巩固及消退等不同阶段表现出显著的功能特异性,例如海马作为学习和记忆的核心区域,主要负责恐惧记忆的形成和消退
[29, 30]。本课题组近期一项研究结果显示,SPS小鼠海马脑区的反应性AST显著下降,且激活SPS小鼠海马AST能降低其恐惧记忆的获取
[31]。同时也有研究表明,SPS小鼠海马CA1区的AST出现数量降低和形态损伤
[32, 33]。因此,本研究聚焦于SPS小鼠海马CA1脑区AST的变化。然而,目前电针对SPS小鼠海马AST的影响并不明确。GFAP作为一种特异性表达于中枢神经系统AST中的中间丝状蛋白,能够维持AST结构稳定,是AST的重要标志物
[34]。本研究通过免疫荧光法,发现电针干预后SPS小鼠海马CA1区GFAP的平均荧光强度和AST的分支数量增加,提示电针“百会”“足三里”能够恢复SPS小鼠海马AST降低的数量和损伤的形态结构。此外,CX43是AST中表达的主要连接蛋白
[35],研究表明上调CX43的表达能够减轻小鼠的空间记忆和AST功能障碍
[36]。本研究通过Western blotting检测发现,电针能够显著逆转SPS小鼠海马中降低的CX43和GFAP的表达,提示电针可能通过调控AST中的CX43干预小鼠的PTSD样行为。
CNO是一种人毒蕈碱设计受体激动剂,能通过激活受体hM4Di使化学遗传病毒发挥调控作用
[37]。为深入探索AST是否参与电针干预SPS小鼠这一过程,本研究通过化学遗传技术特异性地操纵海马CA1区的AST,观察抑制AST对电针干预SPS小鼠的影响。使用CNO激活化学遗传病毒,使小鼠海马的AST受到抑制后,行为学结果显示,电针对SPS小鼠恐惧消退指数和进入开放臂的时间的改善作用均被阻断,说明电针可能通过激活海马AST改善SPS小鼠的恐惧记忆消退障碍。相关研究表明,AST能通过CX43半通道释放ATP、谷氨酸等多种神经活性物质参与PTSD的病理改变
[9],且细胞外ATP稳态失调会引起神经系统功能异常,导致焦虑、抑郁、精神分裂症等疾病
[38]。然而,本研究仅检测了海马CX43的表达,并未检测电针对海马ATP的影响。此外,AST还具备调控能量代谢、维持离子稳态、调节突触可塑性等多样化的功能
[9]。而一项临床研究发现,针灸可能通过抑制失眠患者过度激活的AST以减轻神经炎症
[39];另有研究表明,针灸治疗能够增强模型小鼠腹侧海马CA1区的突触功能,改善其焦虑样行为
[40]。本研究仅验证了海马AST参与电针干预SPS小鼠的作用机制,电针如何激活海马AST并影响AST何种功能进而发挥作用尚未明确。未来将进一步探索电针激活海马AST的潜在机制,以及电针对SPS小鼠海马AST功能的影响。
综上所述,电针“百会”“足三里”能够通过激活海马AST缓解SPS诱导的小鼠恐惧记忆消退障碍和焦虑样行为,电针的效应可能与调节海马CX43的表达有关。本研究运用化学遗传学技术探索电针对PTSD核心症状的干预作用以及潜在机制,为PTSD的临床治疗提供了新的思路。
国家自然科学基金(82404890)
安徽省临床医学研究转化专项(202304295107020105)
安徽省高等学校科学研究项目(2024AH040137)
安徽省高等学校科学研究项目(2024AH051044)
新安医学与中医药现代化研究所“揭榜挂帅”项目(2023CXMMTCM013)