骨是人体内高度矿化的器官之一,其中的坚硬组织部分实际上是骨细胞的外基质,由胶原纤维网络和羟基磷灰石(hydroxyapatite,HAP)组装而成
[1]。这些硬组织在体内发挥着重要的支撑、保护作用,与运动、生活息息相关
[2]。然而,外伤、衰老等因素相关的骨损伤问题日益严峻,受损骨组织的修复逐渐成为全球性的健康难题
[3]。当前,自体骨移植仍然是临床金标准,但此种材料受到来源局限、供骨部位损伤风险等诸多限制
[4]。因此,新型生物材料亟待开发,以期促进高质量的骨组织重建。
骨组织的形成是一个多因素协同的复杂过程,既包含钙磷矿物的化学沉积,也受到成骨细胞和破骨细胞等细胞活动的精确调控
[5]。基于上述生物学原理,利用生物材料递送骨重建所需原料,或调控骨相关干细胞活性已成为促进骨组织再生的重要策略
[6]。在骨原料的选择方面,尽管提供HAP是最直接的策略,然而此种预混晶体往往存在分散不佳、力学不匹配、降解不可控等问题,由此,无定形磷酸钙(amorphous calcium phosphate,ACP)等更具有骨适配性的前驱体化合物逐渐成为研究热点
[7]。ACP在促进骨修复方面具有优异的性能,但不稳定性是其突出缺点
[8];针对这一问题,具有高度可设计性的水凝胶材料提供了创新性解决方案;利用水凝胶负载能与钙磷离子发生互作的功能性分子,通过自矿化特性原位生成ACP成为了一种更具应用价值的思路
[9]。
六磷酸肌醇是一种富含于植物种子中的天然化合物,单个分子中含有6个磷酸基团,失去质子后形成负电性极强的聚阴离子,可以螯合Ca
2+等金属离子,具有通过自矿化制造ACP的潜力
[10-11];此外,其还具有促进干细胞成骨分化的能力
[12]。Zn
2+作为典型的促成骨金属离子,同样可以被六磷酸肌醇阴离子(inositol hexaphosphate anions,IP6
12-)螯合,二者可进一步发挥协同成骨潜能
[13]。因此,本研究旨在开发一种负载IP6
12-和Zn
2+的水凝胶,该种水凝胶可通过自矿化制造钙磷化合物,并可促进成骨分化,且具有良好的生物相容性,为开发新一代骨修复材料提供了新的策略和研究依据。
1 材料和方法
1.1 材料
甲基丙烯酰氧乙基三甲基氯化铵(methacryloyloxyethyltrimethylammonium chloride,DMC)(M102201,阿拉丁,中国);光引发剂2959(H137984,阿拉丁,中国);四臂聚乙二醇丙烯酸酯(S28943,源叶,中国);六磷酸肌醇钠(S30224,源叶,中国);氯化锌(Z0152,Sigma-Aldrich,美国);模拟体液(simulated body fluid,SBF)(G0390,索莱宝,中国);小鼠胚胎成骨细胞前体细胞(mouse embryonic osteoblast precursor,MC3T3-E1)(CL-0378,普诺赛,中国);碱性磷酸酶(alkaline phosphatase,ALP)染色试剂盒(C3206,碧云天,中国);茜素红S(alizarin red S,ARS)染液(ALIR-10001,赛业,中国);死/活细胞染色试剂盒(C2015S, 碧云天,中国);增强型CCK-8试剂盒(C0041,碧云天,中国);α培养基(PM150421,普诺赛,中国);特级胎牛血清(164210,普诺赛,中国)。
1.2 设备
365 nm手持式光源(EFL-LS-1600-365,EFL,中国);傅里叶变换红外光谱仪(Fourier transform infrared spectroscopy,FTIR)(Spectrum 3,PerkinElmer,美国);扫描电镜(scanning electron microscope,SEM)及其能量色散X射线光谱仪(energy dispersive spectroscopy,EDS)(S-4800,日立,日本);透射电镜(transmission electron microscope,TEM)及其EDS(JEM-F200,JEOL,日本);激光共聚焦显微镜(A1R plus,尼康,日本);电感耦合等离子体质谱(inductively coupled plasma-mass spectrometry,ICP-MS)(iCAP RQ,赛默飞,美国);全波长酶标仪(Multiskan SkyHigh,赛默飞,美国)。
1.3 水凝胶的制备与表征
将8.5%(w/v)DMC、2.5%(w/v)四臂聚乙二醇丙烯酸酯、0.1%(w/v)光引发剂2959充分溶解在去离子水中形成单体溶液,在365 nm光源下固化10 min形成水凝胶,记为DF0水凝胶。将DF0水凝胶冻干,利用FTIR检查并比较其与DMC的官能团。
将DF0水凝胶浸泡于1%(w/v)六磷酸肌醇钠溶液5 min以负载IP612-,制得DF1;而后将DF1在0.1 mol/L的氯化锌溶液中浸泡5 min以进一步负载Zn2+,所得水凝胶即为DF2。每次更换浸泡溶液前,使用去离子水充分清洗以去除未负载物质。将DF0、DF1、DF2冻干后,使用SEM选择水凝胶平坦区域,借助EDS元素面扫描模式确定其元素组成(放大倍数×500)。
最后,为评估水凝胶在液体环境中对IP612-及Zn2+的释放,分别称取1 g新鲜的DF0、DF1、DF2水凝胶,置于10 mL 生理盐水中,于37 ℃恒温孵箱中孵育。在特定时间点(12 h、1 d、2 d、3 d、4 d)收取上清,使用ICP-MS测定DF0组、DF1组、DF2组上清液中磷元素和锌元素的含量。
1.4 水凝胶的自矿化行为
将DF0、DF1、DF2水凝胶置于15 mL离心管,分别加入3 mL无菌SBF,在37 ℃孵箱中震荡孵育,每隔8 h换液。在1、3、6 d时收集水凝胶块,使用去离子水快速漂洗,拍摄对应时间点DF0组、DF1组、DF2组水凝胶矿化状态,而后冻干并置于SEM下观察(放大倍数×50 000)。
为鉴定水凝胶表面矿化物的成分,将矿化物与水凝胶分离:冻干的水凝胶置于离心管,加入无水乙醇,使用超声破碎15 min,通过低速离心(1 000 r/m,3 min)去除水凝胶沉淀,保留含有矿化物的上清。将上清均匀分散于铜网,在TEM下观察,并使用TEM-EDS确定DF0组、DF1组、DF2组矿化物的元素组成,使用选区电子衍射(selected area electron diffraction,SAED)确定矿化物的结晶状态。
1.5 细胞相容性实验
使用α培养基浸泡DF0、DF1、DF2水凝胶24 h以取得浸提液。取生长状态良好的MC3T3-E1细胞接种于24孔板,每孔2×104个细胞。待细胞贴壁后,加入上述浸提液;另保留一组生长状态相同的细胞,加入普通α培养基作为对照组。共培养持续48 h或96 h,随后使用死/活细胞染色试剂盒染色,并迅速置于共聚焦显微镜下观察。
进行CCK-8实验时,MC3T3-E1以3×103个/孔的密度接种于96孔板,贴壁后将普通培养基更换为材料浸提液;同样保留一组加入普通α培养基的对照组。在共培养1、3、5 d后取出孔板,在避光条件下加入增强型CCK-8试剂,而后使用酶标仪测定细胞培养孔在450 nm处的吸光度。
1.6 成骨诱导实验
使用成骨诱导培养基浸泡DF0、DF1、DF2水凝胶24 h以取得浸提液。收集MC3T3-E1细胞以α培养基重悬,按1.2×104个/孔的密度接种于12孔板。待细胞贴壁后,加入水凝胶成骨诱导培养基浸提液(实验组)或普通成骨诱导培养基(对照组),每隔2~3 d换液。
成骨诱导14 d时,使用多聚甲醛固定细胞30 min,并使用ALP染色试剂盒避光染色10 min,最后使用蒸馏水充分洗涤以终止反应。
成骨诱导21 d时,在细胞中加入多聚甲醛固定30 min,加入ARS染液室温染色10 min,而后洗去多余染液。在自然光下拍摄ALP和ARS染色结果,并使用Image J对图像进行定量分析。
1.7 统计学方法
所有实验均至少独立重复3次,数据分析借助GraphPad Prism 10.0软件进行。统计学比较使用单因素方差分析和多重比较,结果以平均值±标准差表示。
统计图中星号含义如下:*P< 0.05,**P< 0.01,***P< 0.001,****P < 0.000 1,ns=无显著性差异。
2 结 果
2.1 水凝胶的合成与表征
为制备负载六磷酸肌醇-锌的DF
2水凝胶,首先合成无负载的水凝胶DF
0。该水凝胶由DMC和四臂聚乙二醇丙烯酸酯共聚形成,呈高度透明状(
图1a)。
利用FTIR检查DMC及DF
0水凝胶中官能团(
图1b),在1 637 cm
-1处的特征峰归属于C=C,这一特征峰在DMC单体中存在,而在DF
0水凝胶中消失;位于951 cm
-1处的红外特征峰归属于─CH₂─N⁺(CH₃)₃结构,该特征峰在DMC和DF
0水凝胶中都存在
[14-15]。上述结果表明C=C在聚合反应中被打开,成功交联形成水凝胶网络,而这一过程中季铵基团未被改变。
EDS检测结果显示(
图2),相较于DF
0,DF
1和DF
2水凝胶中依次增加了P和Zn元素的信号峰,证明了IP6
12-和Zn
2+的成功负载。半定量结果显示,DF
1水凝胶中P元素质量占比为6.26%,DF
2水凝胶中P和Zn的元素质量占比分别为4.71%、9.77%。
ICP-MS检测结果显示,DF
1和DF
2组上清中的磷元素含量随着时间升高,提示了这两种水凝胶对IP6
12-的缓释;释放速度在1 d内相对较快,1 d后有所减缓(
图3a)。此外,DF
2水凝胶还能缓释Zn元素,释放规律与P元素相似(
图3b)。
2.2 水凝胶的自矿化行为
三种水凝胶在SBF中浸泡后产生了不同的现象。DF
1和DF
2开始逐渐由透明变为白色浑浊,且这种变化具有明显的时间依赖性;与之相反,DF
0水凝胶仍然保持透明(
图4)。
将各个时间点的水凝胶收集并冻干,使用SEM观察(
图5)。可见未在SBF浸泡时,三种水凝胶表面均平坦无物,在SBF浸泡后,DF
1和DF
2水凝胶表面开始出现球形的沉积物。随时间推移,沉积物数量逐渐增多,6 d时几乎完全覆盖水凝胶表面,这一现象与水凝胶逐渐变浑浊的现象相符。
2.3 水凝胶自矿化产物鉴定
DF
1和DF
2水凝胶表面沉积物被成功分散于铜网,并在TEM下观察。DF
1沉积物颗粒呈现出相对均匀的圆形,分散状态良好(
图6a);DF
2沉积物形态更加细碎,且易于聚集成形态模糊的团簇状(
图6b)。对黑色颗粒区域进行SAED,整个衍射图谱中仅有一个明亮的中心斑点,没有任何离散的衍射斑点,提示两种水凝胶表面的沉积物均为无定形物质。
使用TEM-EDS检测上述沉积物的元素组成。结果显示DF
1表面沉积物中主要含有Ca、P、O元素,Ca与P原子比为1.38,结合此前SAED结果,证实其为ACP(
图6c)
[16-17]。DF
2沉积物除了Ca、P、O元素,还有Zn元素掺杂,Ca与P、Ca与Zn原子比分别为0.44、0.42,为无定形磷酸锌钙(
图6d)。EDS谱图中显示的其他元素峰主要来自TEM制样使用的铜网、碳膜,以及残留水凝胶产生的背景。元素面分布图进一步证实了无定形磷酸锌钙的元素聚集情况(
图6e)。
2.4 水凝胶的生物相容性
使用激光共聚焦显微镜观察死/活细胞染色结果,DF
0、DF
1、DF
2组镜下均充满代表活细胞的绿色荧光,仅有零星死细胞的红色荧光(
图7a)。CCK-8法检测结果显示,加入3种水凝胶浸提液的细胞培养孔在450 nm处的OD值与对照组无显著性差异(
图7b)。上述实验表明3种水凝胶皆未影响细胞存活及增殖,未对细胞产生毒害作用。这种良好的生物相容性为后续成骨诱导实验奠定基础。
2.5 水凝胶的成骨诱导性能
将DF0、DF1、DF2水凝胶浸提液与MC3T3-E1细胞共培养,使用ARS和ALP染色法检测其成骨诱导效果。
14 d时,DF0水凝胶组的染色效果与对照相比未有变化,而DF1和DF2组ALP染色加深,其中DF2组最深,提示了成骨诱导程度的逐步提高。
21 d时,ARS的染色结果呈现出与ALP相似的趋势:DF
0水凝胶未能提高钙结节数量,DF
1组有所提高,DF
2组钙结节最多,ARS染色颜色最红。利用ImageJ软件对ALP和ARS染色结果进行半定量,统计结果与肉眼观察到的趋势一致(
图8)。
3 讨 论
DMC分子结构中含有1个碳碳双键,在交联剂和光引发剂存在的情况下极易发生自由基聚合
[18-19];而四臂聚乙二醇丙烯酸酯分子中含4个碳碳双键,在作为水凝胶单体的同时也可以有效充当交联剂,因此本研究中报道的水凝胶体系可以在365 nm光照下,在10 min内轻松地由液体固化形成DF
0水凝胶,具有极高可加工性
[20]。通过控制固化条件,这种光引发体系还有望形成膜、微球等更多形态,为其在骨膜修复、骨填充微球等更广泛的骨组织工程场景中的应用奠定了坚实基础,体现了该体系巨大的通用潜力
[21-22]。
课题组利用IP6
12⁻天然的负电特性和独特的螯合特性,构建了一种分步、可控的负载与矿化系统。IP6
12-是天然的聚负电离子,其通过静电作用与DF
0水凝胶中悬垂的带正电的季铵基团相结合,因而得以在水凝胶中实现负载,形成DF
1[23]。随后,借助IP6
12-对金属离子的螯合作用,DF
1进一步负载Zn
2+,以形成DF
2水凝胶
[24]。DF
1、DF
2水凝胶的自矿化能力也同样归因于IP6
12-的螯合作用
[25]。在DF
1水凝胶的矿化过程中,SBF中的Ca
2+首先被螯合于DF
1水凝胶表面,致使表面微环境中的Ca
2+浓度提高,从而促使Ca、P元素在水凝胶表面沉积形成ACP
[26]。DF
2水凝胶矿化过程与之类似,尽管IP6
12-已经部分螯合了Zn
2+,但由于SBF环境中Ca
2+丰富,水凝胶表面Ca的聚集仍然可以通过Ca
2+与Zn
2+之间的离子交换实现
[27],最后促进Ca、P、Zn共沉积形成无定形磷酸锌钙。
在ACP中,这种金属离子的掺杂是可被接受的,因为人体中的ACP也往往掺杂了其他离子
[28-29]。有研究表明锌掺杂的ACP除了作为成骨原料,还可发挥抗炎等额外功能
[30]。此外,由于IP6
12-对其他金属离子,如Fe
3+、Mn
2+、Mg
2+、Cu
2+等也普遍具有螯合作用
[31-33],这种广谱螯合能力预示本平台技术具有极高的可扩展性;利用六磷酸肌醇金属盐的自矿化能力,生产掺杂金属离子的ACP的思路可能成为一种通用策略
[34]。例如,通过负载Mg²⁺或Cu²⁺,该体系或可被设计为兼具促血管化或抗菌功能的下一代骨修复材料
[35-36]。
近年来,已有多种基于有机分子的自矿化水凝胶被开发用于骨修复,但本研究构建的水凝胶在矿化条件和效率上展现出独特的优势:在矿化条件方面,许多优秀的矿化体系需要施加较高浓度的钙磷溶液才能有效引发矿化
[37];相比之下,本研究的水凝胶在正常浓度的模拟体液(1×SBF)中即可实现矿化,这种条件更接近于生理环境,预示着其在实际应用中具有更佳的临床应用潜力。另外,在矿化效率方面,与依赖柠檬酸等小分子调控的自矿化水凝胶相比,基于IP6
12-的水凝胶自矿化效率更高,这一差异主要源于IP6
12-提供了远超柠檬酸的负电荷密度及钙离子螯合能力,从而能更有效地在水凝胶体系中诱导钙磷沉积
[9]。因此,本研究通过在水凝胶中引入IP6
12-这一新颖策略,克服了现有体系在矿化条件或动力学方面面临的部分挑战。
体外细胞毒性实验证实了所有水凝胶均无明显细胞毒性,这一发现与前人研究结论相符:IP6
12-作为从植物中提取的天然产物,是一种已被广泛使用的食品添加剂
[38],Zn也是人体固有的金属元素之一,二者良好的生物安全性均已得到广泛报道
[39-40]。这种良好的细胞相容性为本材料的临床转化提供了重要的安全性依据。
本研究最核心的发现在于,DF
2水凝胶兼顾了生物活性矿化与化学成骨信号的双重功能,除了通过自矿化制造成骨原料,还能主动调控细胞成骨分化行为,实现了从被动修复到主动诱导的升级
[41]。正如细胞成骨诱导实验所示,DF
1(水凝胶负载IP6
12⁻)的浸提液已能体现出一定的成骨诱导效果,而DF
2(水凝胶同时负载IP6
12⁻与Zn²⁺)的浸提液在促进成骨分化方面表现最优,其ALP活性及钙结节形成数量均显著高于DF
1组。上述结果与IP6
12⁻及Zn²⁺固有的成骨诱导活性相关。有研究表明,IP6
12-的成骨诱导作用依赖磷酸化细胞外调节蛋白激酶(ERK)等通路,其与Zn
2+的成骨诱导作用可能起到协同作用
[42-43]。
综上所述,本研究成功开发了一种基于IP612⁻与Zn²⁺互作的多功能水凝胶DF2。尽管本研究目前仍停留在体外表征与细胞水平验证阶段,但结果已充分证明该体系集光固化可加工性、可控自矿化能力与协同成骨诱导活性于一身,并且具有良好的生物相容性。这种水凝胶有望为骨修复提供新的思路,应用前景广阔。诚然,该材料在复杂体内环境中的实际修复效能尚不明确,这是本研究当前的主要局限性。因此,未来的研究工作将明确地围绕体内实验展开:一是在动物模型中验证其原位修复骨缺损的卓越疗效;二是基于本文提出的通用策略,探索该平台负载其他功能金属离子在骨组织工程中更广泛的应用;三是进一步设计、开发和体内验证基于该化合物体系的更多材料形式,从而确保该体系能在骨组织工程中发挥最佳治疗效果。